Рост карпа: Чтобы вырастить карпа, надо 3 года и 4 кг корма. Как выращивают рыбу в Любани

Содержание

Рост

Карп достигает иногда огромных размеров, а благодаря своей осторожности, как ни одна из других карповых рыб, и глубокой старости.

  • Самый большой из современных Л.П. Сабанееву сазанов имел 55 кг. Этот гигант, по свидетельству С.Н.Алфераки, был пойман на крючья в 80 километрах от Таганрога, на Кривой косе.
  • В начале восьмидесятых годов прошлого века, в р.Воронеже, Лебедянского уезда, попался в невод, по словам очевидцев, передававших об этом факте известному московскому охотнику и рыболову А.А.Беэру, громадный и вместе с тем необыкновенно уродливый сазан. Oн вытянул 68 кг, но имел вид метрового обрубка почти 70 сантиметровой ширины.
  • Озерные, тем более прудовые карпы Западной Европы вряд ли могут достигать таких больших размеров, как настоящие речные и морские сазаны Юго-Восточной Европы. Наибольшие карпы, известные из зарубежной литературы, не превышают 44 кг и происходят из Цюрихского озера в Швейцарии. Знаменитый карп (из Одера), о котором, со слов Блоха, говорится во всех иностранных сочинениях о рыбах, весил всего 28 кг и пойман был еще в 1711 году.
  • 16-килограммовые и 24-килограммовые сазаны встречались в конце XIX века во многих больших и малых реках южной России и не составляли диковинки. Сейчас, поимка сазана таких размеров настоящее событие, а карпа со сходными показателями можно поймать лишь в специальных, платных водоёмах. А ведь всего лет 150 назад, по свидетельству Палласа, в Каспии встречались сазаны до 1,5 м длиной.

Само собою разумеется, что такие огромные рыбы должны были прожить много лет. Действительно, имеются достоверные сведения о прудовых карпах, достигших не только столетнего, но даже двухсотлетнего возраста.

  • Карпы прудов Поншартрена имели, по свидетельству Бюффона, 150 лет, а Шарлотенбургским (близ Берлина) было более 200.

Достигают ли сазаны такой глубокой старости — сказать затруднительно, но, вероятно, и у нас и в России в некоторых водоёмах найдутся еще столетние исполины.

В данный момент Вы читаете статью «Рост карпа«. Вас также могут заинтересовать другие статьи на тему «Карп» в Энциклопедии рыбалки.

3 Питание карпа в прудах

2. Питание карпа в прудах

В условиях современных высокоинтенсивных прудовых хозяйств кормление рыб организовывается таким образом, чтобы в их рационах присутствовала естественная пища.

Обеспечение молоди годовиков карпа, имеющих свободный доступ к комбикорму, животными организмами повышает их аппетит, активизирует переваривание и усвоение комбикорма, снижая затраты корма. В результате увеличивается рост рыб и накопление в их теле запасов белка и энергии. Поэтому успешное кормление карпа искусственными кормами возможно при условии, что они обязательно будут дополняться животными организмами естественной кормовой базы прудов.

2.1. Краткие сведения о естественной пище

Естественная пища карпа, выращиваемого в прудах, состоит из животных, обитающих в грунтах (зообентос) и в толще воды (зоопланктон) организмов, заселяющих подводную или погруженные в воду части высшей растительности (зарослевая фауна или перифитон), детрита, остатков высших растений и их семян.

Зообентос прудов, как правило, представлен в основном личинками насекомых, развивающихся в водной среде и покидающих ее во взрослом состоянии. К ним относятся личинки комаров Chironomus, Glyptotendipes, Cricotopus, называемые в быту «мотылем». В число обычных представителей входят черви (олигохеты Tubifex Limnodrilus), моллюски (Limnaea, Pisidium), личинки стрекоз, взрослые формы и личинки жуков Dytiscus и т. д.

Бентосные организмы обитают в поверхностном слое грунта прудов толщиной 10-20 см. Днем они держатся на больших глубинах, чем ночью, зимой — глубже, чем летом. Некоторые из них способны переживать зиму при спуске воды, спасаясь от промерзания глубоко в грунте.

Рекомендуемые файлы

Зарослевая фауна поселяется на подводных частях стеблей и листьев высших растений — макрофитов (тростников, рогоза, осоки, рдестов, роголистников и т. д.) там, где образуется налет водорослей. Она состоит из личинок комаров и других насекомых, моллюсков, губок, мшанок.

Из зоопланктона кормовое значение для молоди карпа имеют простейшие, коловратки, личинки и мелкие формы ракообразных. По мере роста молоди в ее питании начинают преобладать крупные формы ветвистоусых рачков (Cladocera), такие, как дафнии, цериодафнии, моины, босмины и представители веслоногих (Соpeрoda), например, циклопы, а также малощетинковые черви.

Цикл развития этих животных зависит от температуры воды и может колебаться от нескольких дней до двух недель в зависимости от вида. Поэтому в течение вегетационного периода сменяется большое число поколений. При этом для прудов Республики Беларусь характерна следующая сезонная смена видов ветвистоусых рачков: весной преимущественно развивается Moina, Scapholeberis и Simocephalus, а позже Daphnia и Bosmina. Летом фауна ветвистоусых обедняется и они могут исчезать из прудов.

В пище подросшего и крупного карпа могут встречаться личинки или мелкая молодь других видов рыб, если их численность в пруду велика. Во второй половине лета, когда обедняется и выедается зоопланктон и зообентос, карп охотно подбирает семена водных растений.

Поиск пищи карп ведет с помощью зрения, обоняния и осязания. Немаловажное значение имеет и вкус пищи. По привлекательности для молоди карпа (массой 10- 15 г) различные компоненты естественной кормовой базы можно расположить в следующей последовательности: зообентос и зарослевая фауна; крупные формы зоопланктона; семена растений; личинки других видов рыб и подвижные насекомые с жестким внешним покровом.

Кроме того, среди различных видов пищи карп выбирает те, которые подходят ему по размерам и достаточно легко доступны. Последнее зависит от концентрации организмов в водоеме.

В интенсивно эксплуатируемых прудах с применением минеральных и органических удобрений крупные двухлетки карпов помимо комбикормов могут активно поедать разложившиеся остатки прошлогодней растительности, органические удобрения (например, перегной), детрит, экскременты рыб, оседающие на дно прудов. Это особенно проявляется в июле-сентябре, когда карп достигает массы 400-500 г. Органические остатки и детрит (с населяющей их микрофлорой) служат в этот период основным источником витаминов и других биологически активных веществ, дефицит которых всегда ощущается в комбикормах и особенно в зернах злаков.

Запасы естественной пищи в прудах претерпевают большие сезонные изменения в процессе выращивания рыб и имеют ряд особенностей в зависимости от категории прудов.

В прудах, заливаемых весной, с момента их заполнения создаются благоприятные условия для развития естественной кормовой базы. Начинается интенсивное развитие зеленых водорослей, появляются первые генерации зоопланктона (в основном Moina). Ближе к поверхности грунта перемещаются перезимовавшие личинки насекомых и черви. Особенно быстрое развитие естественной кормовой базы наблюдается при достижении температуры воды 14-15°С и дальнейшем ее повышении. Обычно это происходит во второй половине мая — начале июня. При низких температурах этот процесс замедляется и время развития отдельных генераций может составлять несколько недель.

Запасы естественной пищи в этих прудах достигают максимальной биомассы в июне. В июле активно питающиеся при повышенных температурах рыбы интенсивно выедают естественную кормовую базу. В это же время периодически происходит вылет личинок хирономид. В августе запасы естественной пищи достигают минимума и количество животных организмов в питании карпов снижается до десятых и сотых долей процента. Основным естественным компонентом рационов становится значительно менее питательный детрит. В сентябре при снижении температуры и понижении поисковой активности рыб, запасы животной пищи начинают несколько возрастать и их роль в питании усиливается.

В выростных прудах, которые заливаются поздней весной или в начале лета, ход развития естественной кормовой базы в общих чертах однотипен с вышеописанным, но в связи с более высокой температурой все процессы ускоряются. Пик развития животных приходится на 10-15-й день после заполнения прудов водой. Запасы естественной пищи резко сокращаются к концу июля, а в середине августа, если не ведется систематическое удобрение прудов, может возникнуть ее резкий дефицит, сопровождаемый торможением роста рыб.

Для обеспечения в этих условиях интенсивного роста карпа широко применяются концентрированные комбикорма. Путем подбора рецептур по их питательным свойствам и регуляции количества задаваемого комбикорма удается достичь высокой рыбопродуктивности при хороших экономических результатах.

В качестве основы для подбора рецептур комбикормов, их нормирования и способов скармливания разновозрастным группам карпов на протяжении вегетационного периода могут служить сведения об интенсивности питания рыб, а также о соотношении в их рационах естественной пищи и комбикорма.

2.2. Характеристика интенсивности питания карпов в прудах

У сеголетков в начальный период кормления наивысшее количество потребляемой пищи отмечается пpи температуре воды 22-26°С и массе рыб 1-5 г. В этих случаях суточный рацион, представленный естественной пищей и комбикормом, обычно составляет 10-12 %. По мере роста рыб рационы постепенно снижаются. В июне-первой половине июля они составляют 8-6 %, во второй половине июля: 4-2, августе-сентябре: 3-1 %.

У двухлетков тенденция динамики несколько иная. В весенний период после зимовки рационы составляют 1-3 % от массы рыб, далее в первой половине лета (конец июня-июль) они вырастают до максимума — 6-8 % и затем снижаются во второй половине августа до 4-2 %, в сентябре до 2-1 %.

Сезонная динамика соотношения комбикорма и естественной пищи в рационах имеет устойчивый характер в различных условиях питания и кормления рыб. У сеголетков в начале кормления (от одной-трех декад) доля естественной пищи составляет 80-60%, комбикорма — колеблется от 20 до 40%. В последующие четыре-пять декад (вторая половина июля и август) при выедании естественной пищи количество комбикорма возрастает до 60-80%, а в осенний период вновь снижается до 50-60 %.

Изменения происходят и в составе естественней пищи. Если вначале преобладают животные организмы, то со второй половины июля заметное место в рационах начинает занимать детрит и только в сентябре вновь появляется в небольших количествах зоопланктон и бентос.

У двухлетков в начальный период кормления (обычно в мае-начале июня) удельный вес комбикорма в рационах может достигать 50%, во второй половине июня-августе-70-90 %, в осенний период — 60-70 %. Начиная со второй половины июля в составе естественной пищи прочно преобладает детрит.

Как видно, по мере роста сеголетков и двухлетков и увеличения их массы к концу вегетационного периода относительное количество потребляемой ими пищи снижается. Это обусловлено более интенсивным обменом веществ у молодых организмов, сопровождающимся повышенной скоростью роста, которая требует относительно большей обеспеченности организма питательными веществами.

Одновременно на растущую в прудах молодь оказывает воздействие и ряд других факторов, способных изменять интенсивность обменных процессов в организме. К ним прежде всего относится температура воды, повышение или понижение которой вызывает усиление или торможение обмена веществ, аппетита и роста рыб.

В математической форме эта связь имеет вид: для сеголетков карпа массой до 5 г R = 0,02·10-2 ·Т2,66 ·М-0,16; для сеголетков массой более 5 г R = 2,19·10-2 · Т1,92 · М-0,14; для двухлетков R= 1,71 ·10-2 ·Т0,75 ·М0,07, где R — суточный рацион, % сухого вещества пищи от массы рыб; Т — температура, °С; М — средняя масса рыб, г.

Следует отметить, что повышение температуры вызывает увеличение интенсивности питания рыб до определенного предела, свыше которого наступает угнетение. У молоди карпов в прудах количество поедаемой пищи обычно возрастает до 27—28 %, у старших возрастов — до 26-27 %. Последнее в основном связано с понижением насыщения воды прудов кислородом при возрастающей потребности в кислороде рыб.

Известно, что кислород необходим организму для осуществления обмена веществ, утилизации поступающей пищи и обеспечения процессов роста.

Представление о зависимости между ростом рыб, пищевым рационом и потреблением кислорода можно получить из рис. 1. Потребление кислорода карпами массой 50 г при температуре 23 °С резко возрастает при увеличении рациона только до 5-б % от массы рыб в день, а скорость роста до рациона 5 %. Это дает основание сделать вывод, что пища эффективно используется в организме рыб, если ее поступление в организм не превышает 5 % от его массы. Далее энергия и пластический материал используются только на переработку поступающих избытков пищи.

В период применения комбикормов количество потребляемой карпами пищи имеет прямую связь с динамикой содержания кислорода в воде.

Максимальная активность питания карпа наблюдается обычно в 1-16 ч, т. е. в период максимального повышения концентрации кислорода в воде в результате фотосинтетической деятельности фитопланктона; минимальная — с 21 до 8 ч утра, когда кислород интенсивно расходуется микроорганизмами на разложение органических осадков и на дыхание всех гидробионтов.

В условиях прудового рыбоводства при существующем дефиците воды и отсутствии в водоемах проточности кислородный режим во многом определяется рациональностью применяемой технологии кормления. Дефицит кислорода в середине лета обычно возникает при внесении в пруд более 100-120 кг комбикорма на 1 га площади из-за накопления несъеденных его остатков, экскрементов рыб, отмершего фито- и зоопланктона и угнетения процессов самоочищения водоемов в результате накопления избытка органики.

Обычное в рыбоводной практике стремление стимулировать рост рыб увеличением норм кормления приводит к обратным результатам: недостаток кислорода угнетает обменные процессы и приводит к потере аппетита, активность питания рыб падает еще более, их физиологическое состояние ухудшается, а продуктивное действие комбикормов резко снижается.

Внесение избыточного количества комбикорма в пруды не приводит к адекватному увеличению его потребления, а недостаточного — несколько ограничивает. Увеличение кратности раздачи способствовует лучшему поеданию комбикорма, но только в вариантах минимальных и оптимальных норм в первой половине выращивания.

Установлено, что увеличение потребления комбикорма при повышении норм кормления стимулирует рост рыб только в определенных пределах. Выше них скорость роста либо не изменяется, либо наблюдается ее уменьшение.

Рис 1. Зависимость между пищевым рационом и скоростью роста (а) и потреблением кислорода (б) для карпа массой 50 г при температуре 23ºС (по Е. Huisman, 1984).

 

Если учесть, что определенная часть комбикорма при современном способе гранулирования неизбежно рассеивается в воде пруда и теряется в процессе самого акта питания рыб, то в начальный период кормления сеголетков (июнь — июль) верхняя граница норм комбикорма не должна превышать 12-10 % от массы рыб, в основной период (июль — август) — 7- 5, в осенний — 3-1 %.

Для двухлетков наилучший продуктивный эффект в апреле — мае при подъеме температуры от 10 до 20 °С оказывают нормы в пределах 1-4 %, в июне — июле при температуре 20-26 °С-4-7 %, в августе при температуре 18-22 °С-3-5 %, 14-16 °С-2,0-2,5 %, в сентябре и октябре 2-1 % от массы рыб.

2.3. Суточный и сезонный ритмы питания

Несмотря на то что карп относится к рыбам с непрерывным характером питания и способен питаться круглые сутки, в прудах, особенно при интенсивном кормлении комбикормами, его пищевая активность периодически изменяется в течение суток. Эта регулярная смена аппетита, отражающая изменения пищевых потребностей карпа, обусловлена в основном циклически повторяющимися изменениями климатических условий, а также кислородного и температурного режима воды при чередовании дня и ночи (рис. 2).. Причем, если при наличии пищи минимум и максимум питания с некоторым запаздыванием следует за наименьшей и наибольшей концентрацией кислорода в воде, то абсолютное количество съедаемой пищи определяется температурой. Другим важнейшим по значению условием является наличие пищи и ее доступность для рыб. В высокоинтенсивных хозяйствах оно обеспечивается внесением комбикормов и естественной кормовой базой прудов, уровень развития которой, в свою очередь, определяется совокупным действием мелиоративных мероприятии, удобрением, вселенном кормовых организмов.

У сеголетков в начальный период выращивания, когда кислородный режим прудов обычно бывает нормальным, а естественная кормовая база хорошо развита и комбикорма вносятся в небольших количествах, суточный ритм питания относительно равномерен.

По мере выедания подросшей рыбой естественной пищи и повышения доли комбикорма в рационах ритм питания начинает в определенной степени зависеть от времени поступления комбикорма и частоты его раздачи. Свое влияние начинает оказывать и кислородный режим, колебания которого определяются фотосинтетической деятельностью фитопланктона и накапливающейся органикой. Как правило, максимальная наполненность кишечников рыб наблюдается через 3-4 ч после первого кормления, далее кроисходит небольшой спад и при вторичном внесении отмечается новый подъем, но уже меньший по величине. Ночью и к утру наполненность кишечников резко уменьшается. В дневные часы в питании преобладает комбикорм, в ночные и утренние — естественная пища.

Рис. 2.Типовая суточная динамика кислорода в прудовой воде (по В. Акимову, 1990)

 

I -май; 2-июнь; 3-июль; 4-ашуст; 5-сеитябрь.

Рис. 3. Типовое содержание кислорода в воде выросгных прудов (по В. Акимову, 1990).

При значительном увеличении массы рыб и возрастании количества вносимого в пруды комбикорма (следовательно и его доли в рационе), что обычно наблюдается в последней декаде июля и в августе, ритмика питания рыб становится еще более зависимой от кислородного режима. Концентрация кислорода изменяется в большом диапазоне — от перенасыщения в дневные до дефицита в утренние часы. Это и определяет аппетит рыб в различное время суток. В кишечниках преобладает комбикорм, на долю естественных компонентов приходится незначительная часть. От частоты раздачи комбикорма зависят абсолютные значения максимума и минимума насыщенности. При одноразовом кормлении они более резко выражены и большие по величине. При трехразовом — наблюдается сглаживание пиков, они снижаются на 30-40%. Таким образом, организм карпа приспосабливается к изменяющимся условиям питания. В результате этого величина суточных рационов остается стабильной, т. е. карпы поедают столько пищи, сколько необходимо им для удовлетворения энергетических потребностей.

Следует обратить внимание, что при внесении одной и той же порции корма за один раз активное поедание его продолжается в течение 2-4 ч, два раза-6-8 ч, три раза-10-16 ч. По истечении этого времени доступность несъеденной части комбикорма ухудшается, что происходит из-за его рассеивания по пруду благодаря малой прочности гранул, распыления в процессе питания рыб, ветрового перемешивания и заиливания.

Подтверждением сказанного может служить суточная динамика качественного состава содержимого кишечника. Его основной компонент в это время помимо комбикорма — детрит. Причем у двухлетков он часто перемешан с илом или грунтом, остатками перегнивших макрофитов. Подобная картина служит признаком недостаточной обеспеченности рыб комбикормом и требует вмешательства рыбовода для изменения режима внесения комбикорма или его нормирования.

В осенний период (сентябрь — октябрь) при снижении температуры, уменьшении количества вносимого комбикорма насыщение воды кислородом повышается и его суточные колебания становятся менее выраженными, соответственно ритм питания рыб становится относительно равномерным. Кишечник почти полностью заполнен комбикормом.

У двухлетков суточная ритмика питания аналогична; но несколько сдвинута во времени. Период относительной равномерности питания обычно приходится на апрель — конец июня; период сильной зависимости от кислородного режима, частоты и количества вносимого комбикорма охватывает июль — август, в сентябре — октябре эта зависимость резко ослабевает.

2.4. Насыщение и восстановление аппетита

Приведенные выше сведения об ограничении доступности комбикорма для рыб 4-8 ч соответственно при одно- и двухразовом кормлении ставят перед рыбоводом-практиком ряд следующих вопросов: 1) какое количество комбикорма могут съедать карпы при одно-и многократном кормлении; 2) в течение какого времени они насыщаются; 3) когда вновь появляется аппетит; 4) как влияет на эти процессы изменение температуры? Знать ответы на эти вопросы необходимо при определении величины разовой порции комбикорма, промежутка между кормлениями и оптимального числа кормлений в сутки. Это позволяет избежать перерасхода комбикормов и добиться их рационального использования рыбами.

Вместе с этой лекцией читают «4 Московская Держава (1480-1700)».

А. Ю. Киселевым (1985) проведены исследования на сеголетках в диапазоне масс 3-12 г и двухлетках карпа при температурах 15, 20 и 25 °С и нормальном кислородном режиме. За период насыщения условно было принято время, в течение которого интенсивность питания рыб снижалась в два раза. Оказалось, что между временем насыщения и температурой воды существует обратная связь, а насыщающей порцией — прямая Масса рыб влияния не оказала.

Полученные данные показывают, что время насыщения при 25°С составляет 50 мин, за этот период было съедено 2,4-2,8 % комбикорма от массы рыб, при 20°С-60 мин, насыщающая порция — 2,0-2,4%, при 15 °С-1,5 ч, насыщающая порция — 1 -1,5 %.

Восстановление аппетита происходит в основном за 2, реже за 3 ч и слабо зависит от температуры воды и массы рыб.

При увеличении частоты раздачи корма с 1 до 8 раз (через каждые 2-2,5 ч) при 20 °С сеголетки съедали его за первые два кормления по 1 -1,2 % от массы рыб. При последующих кормлениях поедаемые порции то сокращались в 2 раза, то вновь почти приближались к первым. В целом, если за сутки рыбы поедали 6-6,2 %, то на первые два кормления приходилось 1/3, на четыре — 2/3 суточного рациона. При 25°С рыбы за первое кормление съедали по 1,5-1,6 %, второе — по 1,1 -1,2, третье, четвертое, пятое — около 1 %. Суточный рацион составил 8,0-7,4 %, на первые два кормления приходилось около 1/3, на четыре — 2/3 рациона.

Данные, полученные в этих опытах с учетом неизбежных потерь комбикормов в воде при современных способах изготовления, дали основание рекомендовать для практики величины разовых доз и кратности кормления карпа в зависимости от температуры.

Карп, сазан. Выращивание карпа, выращивание сазана. Зарыбление водоема карпом и сазаном.

Главная / Зарыбление, виды рыб / Рыба для прудовых хозяйств / Карп, сазан
Сазан
– крупная быстрорастущая рыба, достигающая массы более 30 кг. Тело покрыто крупной плотно сидящей темно-желто-золотистой чешуей. Рот нижний, сильно выдвижной, с образованием хоботка. В углах рта две пары коротких усиков. Спинной и анальный плавники имеют по одному жесткому зазубренному лучу. Имеется два подвида: европейский и амурский.

 

Во второй половине 20 века сазан успешно акклиматизировался в верховьях Оби. Материалом для зарыбления Новосибирского водохранилища использовался как европейские, так и амурские популяции сазана. Кроме того, свой вклад внесли карпы, попадающие в речную сеть из рыбоводных хозяйств. Нерест начинается при температуре воды 13-15 °С, однако наиболее интенсивно происходит при температуре 18-20 °С. Икра откладывается на мягкую растительность на небольшой глубине. Молодь потребляет зоопланктон, потом переходит на бентос. Взрослые рыбы всеядны, сазан может потреблять как животную, так и растительную пищу. Скорость роста зависит в основном от температуры воды и обеспеченности пищей. При благоприятных условиях на первом году жизни может достигать массы 300 г, на втором – 1 кг и более. Наибольшая интенсивность питания и скорость роста наблюдается при температуре воды 25-29°С. При температуре воды ниже 8-10°С практически перестает питаться.

 

Карп – одомашненная форма сазана, созданная для выращивания в прудах с целью получения максимального количества ценного мяса. Родоначальником современного карпа, распространённого на территории Западной Европы и стран СНГ, является дунайский сазан.

 

Быстрый рост карпа, способность использовать как растительные, так и животные корма, высокая плодовитость издавна были отмечены человеком и послужили тому, что он стал основным объектом прудового рыбоводства во многих странах.

Карп – безжелудочная рыба, приём пищи у него идёт мелкими дозами, благодаря чему процесс пищеварения в кишечнике ускоряется. Кишечник карпа освобождается несколько раз в сутки. Естественная пища усваивается на 60-95%. Благодаря особенностям пищеварения при нормальной температуре и кислородном режиме он быстро растёт, в результате чего продуктивность прудов резко повышается.

 

В Алтайский край карп впервые был завезен в 1932 г. из Капитоновского рыбопитомника Оренбургской области. Целенаправленная селекционная работа по созданию районированной породы началась с 1967 г. В 1994 г. порода «алтайский зеркальный карп» была внесена в Реестр селекционных достижений Российской Федерации. Авторы породы Иванова З.А. и Морузи И.В.

 

Алтайский зеркальный карп – порода созданная для природных и экологических условий Западной Сибири, характеризующихся коротким летом и суровой продолжительной зимой.

Большинство рыбоводных хозяйств Алтайского края работают с этой породой или используют ее для скрещивания с сазаном и другими породами карпа.

 

Нерест карпа: период, условия, особенности

Кто ни разу не выходил на карповую рыбалку, тот не знает, что такое истинный азарт. Ловля карпа – это не просто хобби, это особое мировоззрение, своеобразный рыбацкий дзен, доступный истинным знатокам. Поймать Его Капризное Величество сложно, а без знания его повадок и образа жизни – и вовсе невозможно. Поэтому сегодня мы поговорим о нересте карпа, ведь в этот особый период его поведение существенно меняется, что не может не заинтересовать рыболова.

Икромет, а также предшествующий и последующий периоды – особое время в жизни любой рыбы. Кардинальным образом меняются ее привычки, гастрономические предпочтения, места обитания. Да, во время нереста вводятся определенные ограничения на ловлю рыбы, но рыбачить можно и без нарушений. Сегодня мы поговорим о том, как ведет себя карп в период размножения и как организовать карпфишинг без нарушения закона.

Преднерестовый период карпа

Карп начинает проявлять вялую активность со сходом льда: зимой он сонлив и неподвижен, практически не питается, посему, как правило, и не попадается на крючок. Сразу после ледохода карп продолжает пребывать в полусонном состоянии вплоть до потепления. Первую активность, продолжающуюся в течение недели-двух, он начинает проявлять с повышением

температуры воды до 8-10оС, постепенно наращивая аппетит. В период перед икрометом карп отдает предпочтение пище животного происхождения.

Эта приманка обеспечивает богатый улов даже при плохом клеве!

Подробнее

Продуктивная ловля карпа перед икрометом возможна только при близком знакомстве с условиями конкретного водоема. Здесь важно угадать время преднерестового жора и предложить рыбе наиболее лакомую приманку. Рекомендуется использовать некрупные бойлы нейтральной плавучести, а крючки маскировать червем и опарышем.

В прикормку, помимо растительных компонентов, добавляют животные (нарезку калифорнийского червя, опарыша, кормового мотыля), причем делают это непосредственно перед прикормом. Хорошо использовать доставку прикормочной смеси или бойлов в растворимых ПВА-сетках. При этом нужно точно угадать, где находится карп, так как в период перед нерестом он реагирует только на близко расположенную пищу.

Наибольшую эффективность демонстрируют снасти, оснащенные кормушками типа пружины или метода. Донные снасти забрасываются по заглублению свалов, от верхней до нижней бровки. Для ловли поплавочной удочкой достаточно перспективными остаются участки за прибрежными зарослями.

Карп достигает половой зрелости приблизительно к 3-4 годам, причем самки обычно оказываются быстрее готовыми к размножению, нежели самцы. Время созревания может смещаться в ту или иную сторону в зависимости от кормовой базы водоема: при обилии пищи оно наступает быстрее. Достигнув 25-30 см в длину, карп готов к размножению.

Время наступления икромета варьируется в зависимости от региона и погодных условий. В средней полосе России оно приходится приблизительно на конец апреля-май, но может захватить даже июнь.

Маркером начала периода размножения является повышение температуры до 18-19оС. Отсюда закономерно следствие: в прудах и прочих водоемах со стоячей водой нужная температура достигается быстрее, и карп мечет икру раньше, чем в реках. Впрочем, в реки он попадает достаточно редко, все же это окультуренная рыба, разводящаяся искусственно. В реках и прочих преобладает его дикий родич, сазан, похожий на него как внешне, так и по поведению.

Длительность периода размножения в конкретном водоеме растягивается приблизительно на месяц, и это при благоприятных погодных условиях. При снижении температуры нерест затухает, возобновляясь с потеплением. Бывалые рыболовы знают, что особи с икрой периодически попадаются на крючок в течение всего лета.

Нерестовый запрет

Ежегодно во время массового нереста рыбы, и карпа в том числе, по всей стране вводятся ограничения лова. Это не тотальный запрет, при определенных условиях рыбалка не запрещена, и об этом стоит поговорить подробно:

  • Период ограничений зависит от региона. Ежегодно выпускаются бюллетени, где четко прописаны сроки нерестового запрета для каждого региона.
  • Разрешена только рыбалка с берега. Использование лодки для ловли рыбы строжайше запрещено – это понятно. Нарушением является даже просто наличие на борту рыболовных снастей. Еще один момент: именно с берега, а не стоя в воде у берега! Вы можете переходить реку вброд или заходить в воду только при том условии, что имеющиеся с собой снасти зачехлены.
  • Можно ловить только в светлое время суток. Ночная рыбалка запрещена в любом виде: ловить можно только днем.
  • Разрешены исключительно пассивные снасти с одним крючком. Понятно, что можно удить карпа поплавочной удочкой или добывать его на фидер с одним крючком. Теоретически можно использовать даже спиннинговое удилище, но без проведения проводок. Донки, с амортизаторами или без оных, под запретом: поводков с крючками явно больше чем один.
  • На нерестилищах вводится полный запрет на любую рыбалку. Перечень особо охраняемых нерестилищ приводится все в тех же вышеупомянутых бюллетенях. Хозяева и арендаторы платных водоемов устанавливают собственные правила ловли в этот период, иногда – вразрез с законодательством.

Карп ежегодно нерестится на новых местах, тщательно выбирая их в соответствии со своими взыскательными вкусами. Они могут совпадать с прошлогодними, но это, скорее, случайность, нежели закономерность, как у того же сазана.

Как говорилось выше, карп является преимущественно прудовой рыбой. Там для нереста он выбирает хорошо прогретые на солнце отмели с максимально чистой водой и обилием растительности. Это закономерно: для правильного развития икринок необходима теплая вода, в достаточной мере насыщенная кислородом. Аналогичным образом ведет себя и озерный карп: отмель, заросли, теплая вода.

В реках карп обитает редко, но если он там есть, то чаще всего перенимает повадки сазана. Для нереста этот представитель ихтиофауны выбирает преимущественно тихие заводи с медленным течением, иногда выходя в поймы рек. Иногда его можно увидеть даже на заливных лугах, но это преимущественно молодые особи, мечущие икру в первый-второй раз. Крупный карп и сазан русло реки покидает крайне редко.

Повадки карпа во время нереста

Сначала на нерест приходят молодые особи, едва достигшие половой зрелости, потом рыба покрупнее, затем самые старые и мудрые трофейные экземпляры, откладывающие львиную долю икры. В этот период карп питается слабо, полностью нацелившись на размножение.

Главенствующую роль в выборе места играют самки, самцы их лишь сопровождают и привлекают внимание прекрасных, хоть и покрытых чешуей дам, к собственным персонам громким плеском. В это время чешуя самцов покрывается своеобразными уплотнениями – так называемыми «жемчужинами», доказывающими их готовность к продолжению рода.

Самки активно барражируют по избранной акватории, выискивая самые укромные, на их взгляд, места. Они выпрыгивают из воды и плюхаются брюхом, разбивая внутреннюю оболочку и высвобождая икру. Хвостовой плавник способствует распределению икры по укромным уголкам донного рельефа и водной растительности. Самцы тут же выпускают облака молок, оплодотворяя икринки в радиусе нескольких метров. Периоды активного икрометания стартуют с рассветом и продолжаются до полудня, полностью стихая до завтрашнего дня. Самка выметывает не всю икру единовременно, а порционно, за несколько раз.

Нерест карпа – весьма зрелищный процесс, сопровождающийся громким плеском, характерным свистом и эффектными прыжками. Но наблюдать за ним лучше издали, дабы не отвлекать рыбу от процесса продолжения рода.

Рост молоди

Икра карпа преимущественно закрепляется на водной растительности. Она светлого оттенка с характерными желтыми точками. Родители за потомством не ухаживают, что снижает процент выживаемости потомства. Икра интенсивно развивается при температуре воды свыше 20оС (а лучше – еще более высокой). При благоприятном температурном режиме личинки выходят из икринок уже на 3-5 сутки, но при похолодании этот процесс может растянуться на неделю и более.

Первой пищей малька является желток и питательная взвесь, которая находится в воде. Далее его добычей становится зоо- и фитопланктон покрупнее, затем он переходит на рацион взрослого карпа. Как говорилось выше, половой зрелости эта рыба достигает в возрасте 3-4 лет.

Самка карпа во время нереста откладывает несколько сот тысяч икринок, причем только из каждой десятой проклюнется малек. И только каждый десятый малек доживет до возраста половой зрелости. Причин этому масса: перепады температур, падения уровня воды, желание другой рыбы полакомиться икрой и молодью карпа. Впрочем, за целостность популяции опасаться не стоит: помним, что карп разводится искусственно и является объектом не только любительского, но и промыслового лова.

Посленерестовый период

Любая рыба, в том числе и карп, тратит много сил и энергии на продолжение рода. Сразу после нереста он ленив, изможден и малоактивен. В течение первой недели после икромета его вообще мало что интересует, так что рыбалка оказывается малоперспективной: можно добыть лишь мелких особей, которых процесс размножения еще не затронул. Но постепенно рыба восстанавливает пищевые привычки и вновь начинает активно питаться.

Первый отнерестившийся, отдохнувший и готовый к активной жизни карп появляется в водоемах средней полосы России в начале-середине июня. Это молодые особи, пришедшие на икромет в числе первых. Затем к ним постепенно присоединяются все более крупные экземпляры и начинается посленерестовый жор, столь благодатный для рыболова. В это время карп переходит преимущественно на растительное меню и ловить его можно по обычным правилам.

Надеемся, что наша информационная статья поможет вам больше узнать о повадках этой капризной и непредсказуемой рыбы и ловить ее продуктивно, но без нарушения закона. А сложный характер карпа, делает его добычу еще более увлекательным и адреналиновым хобби!

Рыболовы удивляются, почему у меня клюет, а у них нет? Только для вас раскрываю секрет: все дело в чудо-приманке!

Подробнее

Каталог рыб

• Белорусское название — краснапёрка, чырвонапёрка; местные — краснопёрка, красноглазка, чырвонапёрка, на Днепре — черноха или чермнуха (от чермный — красный), на Соже — чернолюга.

• Относится к рыбам семейства карповых (Cyprinidae) отряда карпообразных (Cypriniformes).

• Обитает в пресных водах Европы, до Урала и бассейна Аральского моря. Отсутствует в Сибири, в Крыму, но повсеместна на Кавказе. В Беларуси обитает во многих реках и озёрах, многочисленна в пойменных водоёмах.

• Краснопёрка — одна из красивейших рыб нашей ихтиофауны: окраска её яркая, спинка тёмно-коричневая или тёмно-зелёная, бока желтовато-золотистые, с более интенсивно окрашенными каёмками по краям чешуек, глаза оранжевые, с ярко-красным пятном в верхней части, спинной и грудные плавники у основания тёмные, но на вершине могут быть красными, все остальные плавники ярко-красные. Взрослые всегда окрашены ярче молодых особей.

• В естественных условиях образует помеси с плотвой, уклеёй, чаще с густерой и лещом. Морфологические признаки помесей занимают промежуточное положение между исходными формами.

• Всегда ведёт оседлый образ жизни, постоянно держится у густых зарослей травы и совершенно избегает открытых пространств и течения. Предпочитает заливы и старицы рек, проточные озёра и другие тихие места с зарослями водных растений. В тёплые солнечные дни поднимается к поверхности или выходит в тихие затоны. Ведёт дневной образ жизни, ночью же бывает неподвижной. Лишь поздней осенью краснопёрки скапливаются в глубоких местах и залегают там на ямы на всю зиму.

• Половозрелой становится в 3-4 года, при длине тела около 10 см. Нерест начинается довольно поздно, при температуре воды около 15—18°С. Икрометание порционное, происходит в мае — июне, обычно в три приёма.

• Краснопёрка растёт очень медленно и относится к малоценным рыбам. Лишь отдельные особи могут достигать длины 36 см и массы 2 кг. Основная же масса вылавливается массой 100-200 г и менее, обычны в уловах экземпляры длиной 20-23 см и массой до 300 г. линейный прирост даже в первые годы не превышает 3-4 см, масса в 2-летнем возрасте около 10 г, в 3-летнем — 20 г, в 4-летнем — около 45 г, и лишь в 6-летнем возрасте масса становится более 100 г.

• Молодь краснопёрки питается мелкими планктонными организмами, взрослые потребляют молодые побеги водных растений и водоросли. Животные корма имеют второстепенное значение, хотя насекомые и их личинки обнаруживаются в кишечниках довольно часто: она собирает их со стеблей и листьев водных растений.

• В небольшом количестве вылавливается вместе с плотвой. Отдельно статистикой не учитывается. Ввиду замедленного темпа роста и невысокого качества мяса краснопёрка не может считаться перспективной рыбой при организации рационального рыбного хозяйства. Представляет некоторый интерес как объект любительского рыболовства.

• В озёрах краснопёрку ловят после полного таяния льда, а в реках — после спада воды. Особенно хорошо она ловится перед нерестом и спустя три дня после него. Ловится всегда в травах, в «окошках». Крупная краснопёрка хорошо берётся в прогалинах камыша и тростника в тихих местах. Клёв её верный. При ловле на червя ведёт поплавок, как окунь. На удочке ходит очень бойко, гораздо упорнее плотвы. Поднятая из воды, сильно трепещется и чаще срывается, чем плотва. Вытаскивать её надо осторожно. Крупные экземпляры рекомендуется не вытаскивать сразу, а поводить несколько кругов, не пуская при этом в траву, а затем, подведя к берегу, подхватить сачком.

• Что касается приёмов ужения и насадки, то они те же, что и при ловле плотвы. Только снасть должна быть немного прочнее, а крючки лучше применять на номер больше, чем при ловле плотвы.

• По живучести краснопёрка значительно превосходит плотву. Поэтому мелкие и средние краснопёрки хороши в качестве живца на щуку. Только ставить их надо подальше от травы, иначе они обязательно запутаются в ней.

Рыба карп. Как, когда и где ловить карпа?

Как утверждают, еще в средние века его широко разводили. Это привело к появлению нескольких «пород», которые отличаются друг от друга строением тела и чешуей. Тело карпа бывает горбатым или вытянутым. У зеркального карпа чешуи мало, но она очень крупная, а у рамчатого карпа чешуи вообще нет.

Быстрота его роста зависит, как и у всех рыб, исключительно от обилия корма. Для рыболовов, ловящих нехищных рыб, карп является самой интересной рыбой. Во-первых, он достигает веса до 15 кг. Во-вторых, требуется немало умения, опыта и терпения, чтобы заполучить его на крючок. В-третьих, при вываживании он оказывает столь упорное, ожесточенное и энергичное сопротивление, что борьба нередко оканчивается в его пользу.

Лучший период клева. Ловят карпа начиная с мая, когда вода прогревается до 10 градусов, и до осени (до сентября, иногда и до октября).

Благоприятные для ловли факторы: примутненная вода с умеренно поднимающимся уровнем, теплая душная пасмурная погода, слабый юго-западный или юго-восточный ветер при понижающемся атмосферном давлении (особенно рано утром и вечером — до восхода и после заката солнца), а также за 12 — 24 часа перед изменением погоды к лучшему.

Любимая приманка. Червь-навозник, тесто, пареная перловка, горох, пшеничные зерна. Хорошей наживкой считается сальник (личинка навозного жука), опарыш. В течение дня нужно периодически менять приманку. Насадки растительного происхождения необходимо сдабривать различными вкусовыми и ароматическими веществами. Полезно к местам лова приваживать рыбу. В качестве подкормки можно использовать крутую пшенную кашу и пареную перловку. Подкормку небольшими порциями следует подбрасывать перед ужением и в период затухания клева.

Средства любительского лова. Длинное удилище с прочной снастью, при ловле с лодки — бамбуковое удилище с катушкой, кружки. Ужение карпа требует маскировки, осторожных действий. У воды лучше не вставать во весь рост.

Места обитания. Карп живет в озерах, прудах, глинистых карьерах. Водятся в зарослях камыша, углублениях, ямах, под нависшими деревьями и кустами. Днем уходят подальше от берега, вечером держатся на мелководье. Местонахождение карпа иной раз определяют по поднимающимся к поверхности пузырьками.

 Другие статьи о рыбе Карп

Карп

Карп

Карп (cyprinids, семейство карповых cyprinidae, отряд карпообразные cypriniformes)

Карп – является относится к семейству карповых (Cyprinidae) из отряда карпообразных (Cypriniformes).

Существует две основные разновидности карпа: речной и прудовой. Речной карп имеет название – сазан. Прудовой карп отличается от речного более темной окраской. Прудовые карпы толще, выносливее и плодовитее речного. Речные карпы сильнее, растут быстрее, отличаются хитростью. Карпы достигают огромных размеров и доживают до глубокой старости, как ни одна другая карповая рыба.

Существует разновидность прудовых карпов – зеркальный карп, рамчатый украинский карп, среднерусский (или белорусский) карп. Зеркальный карп имеет крупную и неправильно расположенную чешую. Также бывают зеркальные карпы без чешуи. Рамчатый украинский карп вообще полностью лишен чешуи. Среднерусский или белорусский карп имеет высокую скоростью роста, богатое потомство, легко переносит недостаток кислорода в воде и устойчив к заболеваниям.

Выведена помесь карпа с карасем. Этот гибрид занимает середину между двумя видами, что проявляется в разнообразных формах рыбы. Существует ропшинский карп – это гибрид карпа с зимостойким амурским сазаном, который приспособлен к суровым условиям северных и северо-западных районов. Встречаются особи с золотистой окраской.

Это одна из основных и распространенных рыб в прудах России. Такая популярность карпа связана с рядом ценных биологических особенностей и хозяйственно полезных качеств, которыми обладает карп. Мясо этой рыбы высокого качества, а хорошим вкусовым качествам он превосходит многие пресноводные рыбы. Мясо прудового карпа отличается особой мягкостью и нежностью, низким уровнем жирности (всего 5,6 г на 100 г). Прудовой карп популярен благодаря хорошему вкусу и доступной цене.

Карп – крупная рыба. Встречаются особи массой 25 кг длиной более 1 м в возрасте 15 – 20 лет. Возможности роста у карпа велики. Уже на первом году жизни он может достигать массы до 1,0 кг, на втором году – до 2,0 кг. Может жить до 30 лет. Естественная рыбопродуктивность карпа в прудах составляет до 2 ц/га.

Карп имеет хорошие вкусовые качества. В нем содержится белков до 16%, жиров – до 15%.

СОДЕРЖАНИЕ И МЕСТА ОБИТАНИЯ КАРПА

Карп неприхотлив к условиям содержания, легко приспосабливается к изменениям гидрохимического режима, кормовой базы и других факторов.

Это теплолюбивая рыба. Благоприятные температурные условия для питания, роста и размножения карпа 18 -30 С. Оптимальная температура воды 22—27°С, кислорода 5 – 7 мг/л. При таких условиях и обильном кормлении прирост составляет 5 – 7 г в сутки. Зимой карп почти ничего не ест. В этот период ему достаточно 4 – 5 мг/л кислорода. При концентрации кислорода 0,3 – 0,5 мг/л зимой и 0,5 мг/л летом он гибнет.

В прудах, озерах держатся преимущественно вблизи водной растительности.

Зимует карп в глубоких ямах главных протоков, под ярами и обрывами и на глубоких местах рек. Зимующие карпы покрываются «сленом» (слоем затвердевшей слизи, предохраняющим от холода). Из оцепенения карп выходит в марте-апреле, в прудах и озерах даже позже. Поэтому считается, что до цветения сирени и после созревания рябины карпа ловится крайне плохо.

Карп до трехлетнего возраста живет по плесам и заливам, выбирая места, которые изобилуют камышом. Здесь он и зимует. А весной выходит на разливы ради обильного корма на займище и по причине сильного течения в русле реки во время половодья.

ПИТАНИЕ И ВЫРАЩИВАНИЕ КАРПА

Пища карпов разнообразная – зоопланктон и фауна дна, от мелких рачков (дафнии, циклопы) до червей. А также рачьим мясом, мясом моллюсков, личинок комаров и других насекомых, мотылем, рачками-бокоплавами, мелкими моллюсками, личинками стрекоз и семенами водных растений. Карп охотно поедает и хорошо усваивает дополнительно корма как растительного, так и животного про происхождения. Поэтому карп хорошо усваивает зерноотходы, жмыхи, комбикорма, молодыми водорослями, кукурузой, горохом, пшеницей, овсом, рожью и др. Карп питается почти без перерыва, так как относится к безжелудочным рыбам. Его называют «всеядным водяным», и приравнивают к свинье по неприхотливости в выборе пищи, быстрому росту и жирению.

Карп может поедать ростки камыша. Иногда карпы собираются в небольшие стаи. Время от времени в хорошую погоду выпрыгивают из воды. Имея мускулистое тело с широким хвостом, карпы выпрыгивают из воды до метра в высоту и могут перепрыгнуть через верхнюю подбору невода.

Половозрелость наступает в 4 – 5 лет и зависит от температурного режима водоема. Икру карп откладывает на траву в разных на мелких участках водоема.

На преднерестовый жор карпа в мелких водоемах можно рассчитывать в период массового цветения вишен. После его активность постепенно возрастает и достигает апогея, когда цветет калина, рожь. С началом нереста клев приостанавливается.
Нерест и размножение карпа

НЕРЕСТ И РАЗВЕДЕНИЕ КАРПА

Карп – плодовит, быстро растет. Нерест совершается преимущественно в конце мая – начале июня. На отмелях, в зарослях прошлогодней осоки бурлит взмученная карпами вода. Так шумно нерестится только эта рыба. Нерест обычно проходит при температуре воды больше 17 – 20 °С, в тихую солнечную безветренную погоду. На 1 кг массы самка откладывает около 180 тыс. икринок, которые развиваются до 5 суток. Личинка за 4 – 5 дней превращается в малька.

Продолжительность эмбрионального развития зависит от температуры воды и равна 3 – 6 суток. На второй-третий день после выклева личинки переходят на активное питание. Важную роль в этот период играет естественная пища. Личинки первые дни питаются зоопланктоном, а потом поедают более крупную пищу. Пищей им служат личинки хирономид, олигохеты, моллюски.

Мальков- годовиков из нерестовых прудов пересаживают в выростные водоемы, где они растут до осени. К этому времени карп достигает товарной массы. Стандартная их масса должна быть к осени не менее 20 – 30 г. После зимовки их пересаживают в нагульные пруды для выращивания товарной рыбы и содержат до 2 лет, на чем обычно и заканчивается производственный цикл.

Для выращивания карпа предпочтительнее неглубокие, хорошо прогреваемые, непроточные и слабопроточные водоемы, с умеренно развитой мягкой водной растительностью.

Более 70% пресноводных рыб, выращиваемых и производимых в рыбных хозяйствах, относятся к семейству карповых. Разведение карпа осуществляется в специальных карповых прудах. Карп может культивироваться как отдельно в монокультуре, так и вместе с сопутствующими видами (толстолобик, белый амур, линь, сом, судак, щука).

В зависимости от вида питания и применения ихтиологических и агротехнических мер различают три системы разведения карпа:

  • экстенсивная – разведение карпа на базе натурального корма (зоопланктон и фауна дна)
  • полуинтенсивная (или полуэкстенсивная) – использование как натуральных кормов, развитие которых стимулируется различными агротехническими мероприятиями, так и подкормка углеводными добавками (пшеница, ячмень, кукуруза и т.д.)
  • интенсивная – применение комплексных кормов (комбикормы) с более высоким содержанием белков (от 30% до 40% белков)и используется в основном в садковых комплексах.

ЛОВЛЯ И РЫБАЛКА НА КАРПА

Карпа предпочитает глубокие и широкие участки водоемов, с мягким глинистым или умеренно илистым дном. B летние месяцы карп держится на глубине от 2 до 5 м, в начале осени на глубине примерно 10 м. Карпы предпочитают ямы с глинистым дном. Такие ямы бывают под обрывами и крутоярами на изгибах рек.

Летом, когда вода прогрета, карп часто выходит на мелководье. Ему нравятся участки водоемов с малым течением или со стоячей водой: протоки, пруды, водохранилища, озера, разливы, затопленные луга и поля. Но наиболее успешная ловля карпа происходит в заросших водоемах со слегка мутной водой, которые карп любит больше всего.

Летом карп поднимается к поверхности воды, поскольку любит тепло. Ловить его в это время можно на приманку, плавающую у поверхности воды. Успешная ловля карпа происходит, когда дует легкий ветерок и на поверхности воды появляется небольшая рябь. В сильный ветер рыбалка практически бесполезна.

Карп очень осторожный и пугливый. Поэтому на берегу надо сохранять тишину. Карпы – рыбы стайные и, если карпа вспугнуть резким звуком, то место прикормки покидает вся стая.

Перед тем как начать рыбалку на карпа, нужно исследовать дно: измерить глубины на водоеме с помощью маркера. В поисках пищи карп движется вблизи границы донных склонов. Если не использовать маркера, место обитания карпа можно определить таким образом: перед тем как карп отправляется на кормежку, рыба шумно выбрасываются на поверхность, над своими обиталищами, донными ямами.

Карпа обязательно нужно прикормить (привадить), потому что эта рыба ловится только на прикормленных (приваженных) местах. Быстро привыкает ко всякому новому корму. Поэтому прикармливать карпа надо тем, на что собираетесь ловить. Желательно успеть прикормить до темноты.

Чем прикармливают карпа? Самая лучшая прикормка это гранулы специального рыбного комбикорма. А вообще, карп одинаково предпочитает растительный и животный корм. Это может быть разные варианты зерновой смеси (варят вместе кукурузу, горох, перловку), а также жмыхи, шрот, зерно, мучные отходы. Можно использовать консервированную кукурузу. Перловку варят отдельно, потому что быстро разваривается. Используют прикормку, с добавлением какао и жареным толченым арахисом.

Весной и в начале лета в качестве наживки карп любит красные насадки – навозного червя и мотыль. С наступлением жары летом, можно также использовать белые насадки: опарыш и растительные насадки. Последние годы стало популярно ловить карпа на бойлы. Бойлы – это варенные мучные клецки с различными добавками. Бойлы одинаково пригодны для прикормки и для насадки. Их можно купить или сварить самому.

Прикормка разбрасывается вокруг предполагаемого места ловли в радиусе 3-4 метра. Прикормку формируют в виде шариков диаметром 5-6 см. Прикормка должна быть вязкой, чтобы при забросе она не разбивалась о воду. Бойлы в прикормку добавлять обязательно, чтобы приучить к ним рыбу. Забрасывают прикормку рукой или рогаткой.

Карп выходит кормиться с вечера, продолжает всю ночь и до 7-8 часов утра.

Карп был и останется хозяином водоема и ценным трофеем для рыбака!

общих фактов о карпе — как быстро растет карп?

(Последнее обновление: 12 апреля 2021 г.) У карпа

есть много полезных фактов. Обычный карп может прожить до 20 лет. Типичный карп проводит в неволе 47 лет своей пенсии. Вот несколько интересных фактов о карпах.

Общие факты о карпе

Средний размер карпа составляет от 40 до 80 см (от 15,75 до 31,5 дюйма) в длину и вес от 2 до 14 кг (от 4,5 до 31 фунта).

General Carp был доставлен в США в 1831 году.В конце 19 века они были широко распространены правительством по всей стране в качестве продуктов питания и рыбы, но в настоящее время их редко употребляют в Соединенных Штатах, где их обычно считают свининой.

Кои — это одомашненный подвид карпа, который селекционно разводился по цвету. В японской культуре кои относятся с любовью и считаются благоприятными. Они популярны в других регионах мира как рыбы внешнего пруда.

Хлеб и жареный карп — часть естественных рождественских праздников в Словакии и Чешской Республике в Польше

Самый крупный карп-рекордсмен был пойман 25 мая на промысле Итанг-ла-Сус во Франции пальцем по имени Колин Смит и весил 45.59 кг (100,5 фунтов).

Выделяются три подвида с несколько разными масштабами. C. carpio communis (чешуйчатый карп) имеет обычную центрирующую чешуйку, C. carpio specularis (зеркальный карп), крупномасштабную чешую с обнаженными другими частями тела и C. carpio quiescus (кожный карп) на спине и несколько или нет на плотной коже. Без шкалы.

Карп обыкновенный в дикой природе обычно тоньше, чем размер домашнего животного, длина тела простирается до длины тела, красной мякоти и передней части.

Карп обыкновенный, или европейский карп (Cyprinus carpio) — самая недавняя пресноводная рыба.

Карп произрастает в Европе, но был широко интродуцирован и теперь доступен во всем мире, за исключением полярной и северной Азии.

Это большие и маленькие искусственные и населенные естественные водоемы и бассейны в медленных или быстро движущихся ручьях. Они предпочитают более крупные и медленные тела с мягкой осадочной водой, но они терпеливые и выносливые рыбы, которые распространяются в различных водных средах обитания.

Карп — третий по распространенности вид в мире, и его история как культивируемой рыбы восходит к римскому периоду.

Карп распространен повсеместно. Они питаются вегетарианской диетой из водных растений, но предпочитают питаться насекомыми, ракообразными (включая зоопланктон), раками и бентосными червями.

Обычно они водятся небольшими косяками, хотя более крупные карпы часто ведут одинокий образ жизни.

Другие рекомендуемые статьи

Китай по-прежнему является крупнейшим коммерческим производителем карпа, на долю которого приходится около 70% производства карпа.

Римляне занимались земледелием, и культивирование этого пруда продолжалось в монастырях Европы и по сей день. В Китае, Корее и Японии карпа выращивали в начале периода Ява (ок. 300 г. до н.э. — 300 г. до н.э.).

КАК РОСТ КАРПА НА РЫБНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ | Совет

Мальки карпа начинаются очень маленькими и невероятно хрупкими. В дикой природе очень немногие выживают за несколько дней.

В этот ранний период их жизни наблюдается самый высокий уровень смертности: в первые несколько недель выживает менее одной из тысячи рыб.

С точки зрения экономического рыбоводства этот уровень смертности слишком высок, поэтому необходимо вмешаться в процесс выращивания мальков и обеспечить молодым рыбкам жизненно важную защиту, чтобы обеспечить их выживание большему количеству из них.

В прошлом месяце в «Waterlife» я подробно описал, как собирают и оплодотворяют яйцо карпа. После вылупления из яйца у мальков есть собственный желток, на который они могут жить два или три дня.

Затем нужно начать есть.

Молодь карпа в возрасте нескольких дней настолько неразвита, что не может переваривать гранулированный корм.

Этих первокормленных мальков необходимо кормить живым кормом, на ферме их кормят крошечными креветкообразными существами, называемыми артемиями.

Это тоже всего день или около того, и их размер меньше 0,5 мм, что идеально подходит для еды карпа.

Эти крошечные креветки выводятся в больших количествах из сушеных яиц и затем скармливаются малькам карпа.

Однако артемия стоит очень дорого, поэтому ее можно использовать только в течение нескольких дней, чтобы дать молодым рыбкам хорошее начало.

По истечении этого времени мальков карпа высаживают в только что затопленные пруды рыбоводной фермы. В этих прудах появятся крошечные планктонные животные, которые станут идеальной пищей для мальков карпа.

Попадая в пруд, недавно заготавливаемый карп начинает пылесосить этих крошечных животных и быстро растет.

И снова, вмешиваясь на ранних стадиях роста рыбы и обеспечивая молодым рыбкам запас нужного корма, рыбоводы могут значительно повысить выживаемость молодых карпов.

Всего через несколько недель быстрорастущая рыба станет достаточно большой, чтобы насладиться новым изменением диеты, поскольку она сможет начать есть крошечные гранулы, что еще больше ускорит ее рост.

Эти гранулы содержат белок, который еще больше способствует росту и выживаемости детей.

Одним из важных факторов при кормлении этих маленьких рыбок является то, что у них нет желудков для хранения и переваривания пищи, это означает, что они предпочитают, чтобы их корм постоянно капался в течение дня.

Автоматические кормораздатчики часто используются в прудах для кормления мальков.

Хотите верьте, хотите нет, но эксперименты доказали, что если рыбу кормить одинаковым количеством пищи, распределенной в течение дня, а не двумя большими приемами пищи, они фактически вырастут примерно на 20% лучше.

В летний период в теплой воде рыба быстро растет. В прудах часто бывает много рыбы, и вес поголовья может быстро увеличиваться по мере роста рыбы.

Опять же, это может создать проблему, так как уровень кислорода, доступного рыбе, может быть снижен из-за чистого веса карпа, живущего там, особенно в ночное время.

Чтобы обеспечить максимальную выживаемость, уровень кислорода в прудах тщательно контролируется, и используются аэраторы, чтобы поддерживать в прудах достаточное количество кислорода.

С наступлением зимы специально выращенный молодой карп будет расти намного меньше, но он уже достаточно хорошо вырос в защищенной среде рыбоводного хозяйства, чтобы пережить холода.

В то время года, когда уровень естественной смертности мальков рыбы снова достигает пика, выращенный на ферме карп будет достаточно большим, чтобы выжить, пока не вернется более теплая погода.

Следующей весной этот однолетний карп классифицируется как «рыба категории C1».

Максимальный потенциал роста карпа редко достигается в открытых прудах, даже с дополнительным кормом и хорошим качеством воды.

Только в более теплых странах, чем здесь, или если карп выращивается в помещении с подогревом и постоянным поддержанием воды, они достигают своего максимального потенциала.

В ходе испытаний в Sparsholt College нам удалось вырастить карпа до 20 фунтов менее чем за два года, скармливая его хорошей пищей при высоких температурах!

  1. Только что вылупившиеся мальки карпа с прикрепленным к ним желточным мешком, наполненным питательными веществами.Это поддерживает их жизнь в течение двух или трех дней
  1. После того, как желток израсходован, мальки начинают формировать плавательный пузырь (прозрачный пузырь) и приобретать форму, более напоминающую рыбу
  1. Глаза развиваются вместе с крохотным ртом, который позволяет им есть — эти детеныши карпа известны как первые кормушки
  1. Это снимок крошечной артемии, сделанный под микроскопом. Эти крошечные креветки скармливаются первому кормлению карпа, когда они не могут есть гранулы
  1. Быстрорастущего карпа переводят в недавно затопленный пруд рыбоводной фермы, где будет процветать планктонная жизнь
  1. В пруду будет разводиться большое количество рыбы.В воду помещается аэратор, чтобы убедиться, что в ней достаточно растворенного кислорода
  1. На этом крупном плане показана типичная планктонная жизнь, которой молодой карп наедается в недавно зацветших прудах
  1. Этот крошечный планктон можно увидеть только в микроскоп, что делает его идеальным для кормления маленького карпа
  1. Рыбы быстро растут на такой питательной корме, которая помогает им пережить зиму. Это годовалый карп C1 весом 1 год.5 унций — 2 унции

Полногеномный анализ роста на двух стадиях роста нового быстрорастущего штамма карпа обыкновенного (Cyprinus carpio L.)

  • 1.

    Tsai, H.Y. et al. . Полногеномная ассоциация и геномное прогнозирование признаков роста у выращиваемой молоди атлантического лосося с использованием массива SNP с высокой плотностью. BMC Genomics . 16 , (2015).

  • 2.

    Гутьеррес, А.П., Яньес, Дж. М., Фукуи, С., Свифт, Б. и Дэвидсон, В.С. Полногеномное ассоциативное исследование (GWAS) для определения скорости роста и возраста полового созревания атлантического лосося (Salmo salar) . PLoS One. 10 , e0119730 – e0119730 (2015).

    PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

  • 3.

    Gonzalez-Pena, D. et al. . Полногеномное исследование ассоциации для определения локусов, которые влияют на выход филе, тушу и массу тела у радужной форели (Oncorhynchus mykiss). Фронт. Genet. 7 , 203 (2016).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 4.

    Geng, X. et al., . Полногеномное ассоциативное исследование выявляет несколько регионов, связанных с размером головы у сома. G3 (Bethesda). 6 , 3389–3398 (2016).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 5.

    Chen, L. et al. . Генетическое картирование признаков, связанных с размером головы, у карпа (Cyprinus carpio). Фронт. Genet. 9 , 448 (2018).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 6.

    Корте, А. и Фарлоу, А. Преимущества и ограничения анализа признаков с помощью GWAS: обзор. Растительные методы. 9 , 29 (2013).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 7.

    Сюй Дж. и др. . Разработка и оценка первого массива SNP с высокой пропускной способностью для карпа обыкновенного (Cyprinus carpio). BMC Genomics. 15 , 307 (2014).

    PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

  • 8.

    Ван, С., Мейер, Э., Маккей, Дж. К. и Матц, М. В. 2b-RAD: простой и гибкий метод полногеномного генотипирования. Нат. Методы. 9 , 808–810 (2012).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 9.

    Пекораро, К. и др. . Методологическая оценка метода генотипирования 2b-RAD для определения структуры популяции желтоперого тунца (Thunnus albacares). Мар. Геномика. 25 , 43–48 (2016).

    PubMed Статья Google ученый

  • 10.

    Seetharam, A. S. & Stuart, G. W. Филогения всего генома для 21 вида дрозофилы с использованием предсказанных фрагментов 2b-RAD. PeerJ. 1 , e226 (2013).

    PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

  • 11.

    Fu, B., Liu, H., Yu, X. & Tong, J. Генетическая карта высокой плотности и картирование QTL, связанное с ростом, у пестрого карпа (Hypophthalmichthys nobilis). Sci. Отчет 6 , 28679 (2016).

    CAS PubMed PubMed Central Статья ОБЪЯВЛЕНИЯ Google ученый

  • 12.

    Palaiokostas, C. et al . Картирование и проверка основной области, определяющей пол, у нильской тилапии (Oreochromis niloticus L.) с использованием секвенирования RAD. PLoS One. 8 , e68389 (2013).

    CAS PubMed PubMed Central Статья ОБЪЯВЛЕНИЯ Google ученый

  • 13.

    Казаль, К. М. В. Глобальная документация по интродукции рыбы: растущий кризис и рекомендации к действию. Biol.Вторжения. 8 , 3–11 (2006).

    Артикул Google ученый

  • 14.

    ФАО. Ежегодник ФАО: статистика рыболовства и аквакультуры . (Продовольственная и сельскохозяйственная организация Объединенных Наций, 2015 г.).

  • 15.

    AFFAB. Ежегодник статистики рыболовства Китая . Управление рыболовства и рыболовства Министерства сельского хозяйства. (Китайская сельскохозяйственная пресса, китайская сельскохозяйственная пресса, 2017 г.).

  • 16.

    Su, SY, Zhang, CF, Dong, ZJ, Xu, P. & Yuan, XH Прирост размножения карпа Хуанхэ ( Cyprinus carpio hacmalopterus Temminck et Schlegel ) нового штамма G3- Эффект выше углеводная диета на рост и профиль жирных кислот нового штамма карпа хуанхэ. J. Yangzhou Univ. 39 , 63–66 (2018).

    Google ученый

  • 17.

    Chengfeng, Z., Shengyan, S., Jian, Z., Wenbin, Z. & Zaijie, D. Анализ роста карпа Хуанхэ на двух стадиях роста. Acta Hydrobiol. Грех . 722–727 (2013).

  • 18.

    Su, S. et al . Комбинированный анализ QTL и сканирования генома с помощью 2b-RAD позволяет идентифицировать генетические маркеры роста в новой быстрорастущей штамме карпа. Границы генетики. 9 , 592 (2018).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 19.

    Сюй, П. и др. . Последовательность генома и генетическое разнообразие карпа Cyprinus carpio. Нат. Genet. 46 , 1212–1219 (2014).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 20.

    Нг, К. Т., Мендоза, Дж. Л., Гарсия, К. К. и Олдстон, М. Б. Передача сигналов интерферона альфа и бета типа 1: пассаж для различных биологических результатов. Cell. 164 (3), 349–352 (2016).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 21.

    Liu, T., Jiang, W., Han, D. & Yu, L. ДНКJC25 подавляется при гепатоцеллюлярной карциноме и представляет собой новый ген-супрессор опухоли. Онкол. Lett. 4 (6), 1274–1280 (2012).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 22.

    Гуха, П. и др. . IPMK опосредует активацию передачи сигналов ULK и регуляцию транскрипции аутофагии, связанную с воспалением и регенерацией печени. Cell. Отчет 26 (10), 2692–2703.e7 (2019).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 23.

    Skon-Hegg, C. и др. . LACC1 регулирует TNF и IL-17 на мышиных моделях артрита и воспаления. J. Immunol. 202 (1), 183–193 (2019).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 24.

    Contu, L., Carare, R.O. И Хоукс, С.А. Нокаут аполипопротеина A-I снижает паренхиматозную и сосудистую патологию β-амилоида в модели болезни Альцгеймера на мышах Tg2576. Neuropathol. Прил. Нейробиол . (2019).

  • 25.

    Lobbardi, R. et al. . TOX регулирует рост, репарацию ДНК и геномную нестабильность при остром лимфобластном лейкозе Т-клеток. Рак. Discov. 7 , 1336–1353 (2017).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 26.

    Янг, Х. и др. . Свиньи с нокаутом CD163 полностью устойчивы к высокопатогенному вирусу репродуктивного и респираторного синдрома свиней. Antiviral Res. 151 , 63–70 (2018).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 27.

    Куманого, А. и др. . Неизбыточная роль Sema4A в иммунной системе: дефектное праймирование Т-клеток и регуляция Th2 / Th3 у мышей с дефицитом Sema4A. Иммунитет. 22 (3), 305–316 (2005).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 28.

    Spiegel, S., Maczis, M. A., Maceyka, M. & Milstien, S. Новое понимание функций транспортера сфингозин-1-фосфата SPNS2. Дж.Липид. Res. 60 (3), 484–489 (2019).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 29.

    Де ла Серна, И. Л., Карлсон, К. А., Имбальзано, А. Н. Комплексы SWI / SNF млекопитающих способствуют опосредованной MyoD дифференцировке мышц. Nat.Genet. 27 , 187–190 (2001).

    PubMed Статья CAS Google ученый

  • 30.

    Таннебергер, К. и др. . Структурная и функциональная характеристика рекрутирования мембраны APC ингибитора Wnt 1 (Amer1). J Biol Chem. 286 (22), 19204–19214 (2011).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 31.

    Сакамото, К., Веде, Б. Л., Редлер, П. Д., Триплетт, А. А. и Вагнер, К. У. Генерация мышей с условным нокаутом киназы Янус 1 (JAK1). Бытие. 54 (11), 582–588 (2016).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 32.

    Ван, Р. Дж. и др. . Влияние NudCD1 на пролиферацию, миграцию и инвазию клеток карциномы почек. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 22 (3), 671–677 (2018).

    PubMed Google ученый

  • 33.

    Васильева, А. и др. . Белок контрольной точки повреждения ДНК RAD9A необходим для самцов мейоза у мышей. J. Cell. Sci. 126 (Pt 17), 3927–3938 (2013).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 34.

    Wang, F. et al. . Дефицит гормоночувствительной липазы изменяет экспрессию генов и содержание холестерина в семенниках мышей. Репродукция. 153 (2), 175–185 (2017).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 35.

    Hu, A. et al. . PIP4K2A регулирует внутриклеточный транспорт холестерина посредством модуляции гомеостаза PI (4,5) P2. J. Lipid. Res. 59 (3), 507–514 (2018).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 36.

    Kuehnle, K. и др. . Зависимое от возраста увеличение десмостерола восстанавливает образование DRM и мембранные функции у мышей DHCR24 — / — без холестерина. Neurochem. Res. 34 (6), 1167–1182 (2009).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 37.

    Saharan, M. et al. . Усиленная долговременная потенциация in vivo в зубчатой ​​извилине мышей с дефицитом NELL2. Нейроотчет 15 (3), 417–420 (2004).

    Артикул Google ученый

  • 38.

    Dean, B.J., Erdogan, B., Gamse, J. T. & Wu, S. Y. Dbx1b определяет дорсальный хабенулярный родительский домен в эпиталамусе рыбок данио. Neural. Dev. 9 , 20 (2014).

    PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

  • 39.

    Диас, Э. SynDIG1 регуляция созревания возбуждающих синапсов. J. Physiol. 590 (1), 33–38 (2012).

    PubMed Статья CAS PubMed Central Google ученый

  • 40.

    Sistig, T. et al. . Mtss1 способствует созреванию и поддержанию нейронов мозжечка за счет эффектов, специфичных для вариантов сплайсинга. Мозг. Struct. Функц. 222 (6), 2787–2805 (2017).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 41.

    Бергер К., Хелмпробст Ф., Чапутон П., Лиллесаар С. и Стиглохер С. Экспрессия мРНК Sept8a и sept8b у развивающихся и взрослых рыбок данио. паттернов экспрессии генов. 25–26 , 8–21 (2017).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 42.

    Борн, Г. и др. . Генетическое нацеливание NRXN2 на мышей раскрывает роль в возбуждающей функции кортикальных синапсов и социальном поведении. Фронт.Синаптический. Neurosci. 7 , 3 (2015).

    MathSciNet PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

  • 43.

    Maeta, K. et al. . Комплексный поведенческий анализ мышей, дефицитных по Rapgef2 и Rapgef6, подсемейству факторов обмена гуаниновых нуклеотидов для малых GTPases Rap, обладающих Ras / Rap-ассоциированным доменом. Мол. Головной мозг. 11 (1), 27 (2018).

    PubMed PubMed Central Статья CAS Google ученый

  • 44.

    Ghosh, A. S. et al. . DLK вызывает дегенерацию нейронов в процессе развития посредством селективной регуляции проапоптотической активности JNK. J. Cell. Биол. 194 (5), 751–64 (2011).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 45.

    Камбиаги, Т.Д. и др. . Эволюционно консервативный IMPACT нарушает различные реакции на стресс, которые требуют GCN1 для активации киназы eIF2 GCN2. Biochem Biophys Res Commun. 443 (2), 592–597 (2014).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 46.

    Maul, S. et al. Генетика устойчивости: последствия полногеномных ассоциативных исследований и генов-кандидатов системы стрессовой реакции при посттравматическом стрессовом расстройстве и депрессии. Am. J. Med. Genet. Б. Нейропсихиатр. Genet . (2019).

  • 47.

    Cizmecioglu, O., Warnke, S., Arnold, M., Duensing, S. & Hoffmann, I. Регулируемая дупликация центриоли Plk2 зависит от ее локализации в центриолях и функционального домена полобокса. Cell. Цикл. 7 , 3548–3555 (2008).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 48.

    Visscher, P. M., Браун, М. А., Маккарти, М. И. и Янг, Дж. Пять лет открытия GWAS. Am. J. Hum. Genet. 90 , 7–24 (2012).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 49.

    Годдард М. Э. и Хейс Б. Дж. Картирование генов сложных признаков у домашних животных и их использование в программах разведения. Нат. Преподобный Жене. 10 , 381–391 (2009).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 50.

    Матукумалли, Л. К. и др. . Разработка и характеристика анализа генотипирования SNP высокой плотности для крупного рогатого скота. PLoS One. 4 , e5350 (2009).

    PubMed PubMed Central Статья ОБЪЯВЛЕНИЯ CAS Google ученый

  • 51.

    Gidskehaug, L., Kent, M., Hayes, B.J. & Lien, S. Вызов генотипа и картирование мультисайтовых вариантов с использованием массива SNP iSelect для атлантического лосося. Биоинформатика. 27 , 303–310 (2011).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 52.

    Peng, W. et al. Карта сцепления сверхвысокой плотности и QTL-карта для половых и связанных с ростом признаков карпа (Cyprinus carpio) . Научный сотрудник . 6 , (2016).

  • 53.

    Маух, Д. Х. и др. . Синаптогенез в ЦНС стимулируется холестерином, происходящим из глии. Наука. 294 , 1354–1357 (2001).

    CAS PubMed Статья ОБЪЯВЛЕНИЯ Google ученый

  • 54.

    Gomes, I. et al. . GPR171 представляет собой гипоталамический рецептор, связанный с G-белком, для BigLEN, нейропептида, участвующего в кормлении. Proc. Natl. Акад. Sci. США 110 , 16211–16216 (2013).

    CAS PubMed Статья ОБЪЯВЛЕНИЯ Google ученый

  • 55.

    Бакос Дж., Заткова М., Бакова З. и Остатникова Д. Роль гипоталамических нейропептидов в нейрогене и нейритогенезе. Neual. пластичность. 2016 , 3276383 (2016).

    Google ученый

  • 56.

    Brunner, L. et al. . Лептин — физиологически важный регулятор приема пищи. Внутр. J. Obes. Relat. Метаб. Разногласия. 21 , 1152 (1997).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 57.

    Мураока, О. и др. . Лептин-индуцированная трансактивация промотора гена NPY, опосредованная JAK1, JAK2 и STAT3, в линиях нервных клеток. Neurochem. Int. 42 (7), 591–601 (2003).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 58.

    Чаффи, Н. и др. . Молекулярная биология клетки. 4-е изд. Ann. Бот. 91 , 401 (2003).

    PubMed Central Статья PubMed Google ученый

  • 59.

    Аршамбо, В. и Гловер, Д. М. Поло-подобные киназы: сохранение и расхождение в их функциях и регуляции. Нат. Rev. Mol. Cell Biol. 10 , 265–275 (2009).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 60.

    Ма, С., Чаррон, Дж. И Эриксон, Р. Л. Роль Plk2 (Snk) в развитии мышей и пролиферации клеток. Мол. Клетка. Биол. 23 , 6936–6943 (2003).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 61.

    Park, W. B. et al. . Полиморфизм rs196952262 гена AGPAT5 связан с качеством мяса у беркширских свиней. Корейский. J. Food. Sci. An. 37 , 926 (2017).

    Google ученый

  • 62.

    Wei, X., Zhang, J., Sun, X., Zhao, F. & Zhang, J.Корреляционный анализ между полиморфизмом гена AGPAT5 и показателями качества мяса у КРС немецкой симментальской породы. Привет. Anim. Sci. Вет. Med. 9 , 12 (2013).

    Google ученый

  • 63.

    Клер, С. Л., Белисл, С. Л., Хаймс, Ф. Б. Л., Ли, З. и Паркс, Б. 1892-P: Печеночный Agpat5 регулирует инсулин плазмы при ожирении. Диабет. 68 , 1892-п (2019).

    Артикул Google ученый

  • 64.

    Agarwal, A.K. et al., . AGPAT2 является мутированным при врожденной генерализованной липодистрофии, связанной с хромосомой 9q34. Нат. Genet. 31 , 21–23 (2002).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 65.

    Ван, К. Х. и Ли, С. Ф. Генетические эффекты и взаимодействие генотипа x окружающей среды для связанных с ростом признаков карпа обыкновенного, Cyprinus carpio L. Аквакультура. 272 , 267–272 (2007).

    Артикул Google ученый

  • 66.

    Ponzoni, R. W., Hamzah, A., Tan, S. & Kamaruzzaman, N. Генетические параметры и реакция на селекцию на живую массу штамма Nile tilapia GIFT ( Oreochromis niloticus ). Аквакультура. 247 , 203–210 (2005).

    Артикул Google ученый

  • 67.

    Велисек Ю., Свободова З., Пяцкова, В., Грох, Л., Непейчалова, Л. Влияние анестезии гвоздичным маслом на карпа (Cyprinus carpio L.). Vet Med. 50 , 269–275 (2005).

    Артикул Google ученый

  • 68.

    Катчен, Дж., Гогенлоэ, П. А., Бэшэм, С., Аморес, А. и Креско, У. А. Стеки: набор инструментов анализа для популяционной геномики. Мол. Ecol. 22 , 3124–3140 (2013).

    PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 69.

    Jiao, W. et al . Связывание с высоким разрешением и картирование локусов количественных признаков при помощи секвенирования генома: создание интегративной геномной основы для двустворчатого моллюска. DNA Res. 21 , 85–101 (2014).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 70.

    Zhang, J., Kobert, K., Flouri, T. & Stamatakis, A. PEAR: быстрое и точное слияние Illumina Paired-End reAd reAd. Биоинформатика. 30 , 614–620 (2014).

    CAS PubMed Статья Google ученый

  • 71.

    Li, R. et al. . SOAP2: улучшенный сверхбыстрый инструмент для согласования краткого чтения. Биоинформатика. 25 , 1966–1967 (2009).

    CAS PubMed Статья PubMed Central Google ученый

  • 72.

    Fu, X. и др. . RADtyping: интегрированный пакет для точного De Novo кодоминантного и доминантного генотипирования RAD при картировании популяций. PloS. Один. 8 , e79960 (2013).

    PubMed PubMed Central Статья ОБЪЯВЛЕНИЯ Google ученый

  • 73.

    Purcell, S. et al. . PLINK: набор инструментов для полногеномного анализа ассоциаций и популяционного анализа сцепления. Am. J. Hum. Genet. 81 , 559–575 (2007).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 74.

    Канг, Х. М. и др. . Компонентная модель дисперсии для учета структуры выборки в полногеномных ассоциативных исследованиях. Нат. Genet. 42 , 348–354 (2010).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 75.

    Turner, S.D.Qqman: пакет R для визуализации результатов GWAS с использованием графиков QQ и манхэттена. BioRxiv.005165

  • 76.

    Cingolani, P. et al . Программа для аннотирования и прогнозирования эффектов однонуклеотидных полиморфизмов SnpEff. Fly. 6 , 80–92 (2012).

    CAS PubMed PubMed Central Статья Google ученый

  • 77.

    Шин, Дж. Х. и др. .Международный консорциум HapMap. Карта гаплотипов генома человека. Природа. 437 , 1299–1320 (2005).

    Артикул CAS Google ученый

  • Границы | Точность геномной оценки скорости роста молоди карпа (Cyprinus carpio) с использованием генотипирования путем секвенирования

    Введение

    Карпы имеют самый высокий мировой объем производства из всей аквакультурной рыбы (FAO, 2015) и разводятся в самых разных средах и производственных системах (Balon, 1995).Как и в случае с большинством видов аквакультуры, лишь небольшая часть выращиваемого карпа получена в результате программ селективного разведения на основе семьи, а скрещивание частично инбредных линий обычно применяется для получения выгоды от гетерозиса (Hulata, 1995; Vandeputte, 2003; Janssen et al. , 2017). Семейные программы имеют то преимущество, что позволяют кумулятивно увеличивать экономические признаки и поддерживать высокую степень контроля над уровнем инбридинга поголовья. Эмпирические данные, относящиеся к селективному разведению в рамках семейных программ для нескольких видов рыб, показывают увеличение генетического прироста до 15% на поколение (Gjedrem, 2000).Хотя первоначальные исследования показали, что селекция внутри породы неэффективна для карпа-обыкновенного (Moav and Wohlfarth, 1976), недавние исследования, посвященные признакам роста и выживаемости, выявили потенциал применения селективного разведения для увеличения продуктивности (Kocour et al., 2007; Vandeputte et al. ., 2008; Nielsen et al., 2010; Ninh et al., 2013; Dong et al., 2015).

    Традиционное селекционное разведение на основе родословной, включающее методологию наилучшего линейного непредвзятого предиктора (BLUP) (Хендерсон, 1975), принесло большую пользу как животноводству, так и растениеводству.Тем не менее, использование только межсемейного компонента генетической изменчивости накладывает ограничения на точность отбора и, следовательно, на генетический выигрыш (Meuwissen et al., 2013). Селективное разведение можно значительно улучшить за счет применения геномных инструментов, за счет повышения точности отбора и, возможно, за счет выявления причинных факторов, влияющих на ключевые производственные признаки (Meuwissen et al., 2001, 2013; Hickey et al., 2017). Геномный отбор (GS) включает одновременное использование геномных генетических маркеров для оценки селекционной ценности кандидатов для отбора с использованием как внутрисемейных, так и межсемейных вариаций (Meuwissen et al., 2001). Используя все маркеры в расчете селекционной ценности, GS преодолевает ограничения селекции с помощью маркеров для таких признаков, когда обычно только небольшой процент генетической изменчивости может использоваться для полигенных признаков (Daetwyler et al., 2013). В аквакультуре GS стал возможен благодаря возросшей технической осуществимости и снижению стоимости генерации полногеномных маркерных данных у немодельных организмов с помощью массивов SNP или генотипирования путем секвенирования (Davey et al., 2011; Robledo et al., 2017).

    Эффективность GS для получения более точных племенных ценностей, чем при традиционном племенном отборе, была продемонстрирована с использованием смоделированных и эмпирических данных как в животноводстве, так и в аквакультуре (Goddard and Hayes, 2009; Sonesson and Meuwissen, 2009). Собранные к настоящему времени эмпирические данные показывают, что большинство признаков, представляющих интерес для животноводства (например, рост и устойчивость к болезням), поддерживаются полигенной генетической архитектурой (de los Campos et al., 2013).Для видов аквакультуры, где обычно доступны большие размеры полноразмерных семей, преимущества геномного прогнозирования племенной ценности аквакультурных видов очевидны из нескольких исследований таких полигенных признаков (например, Odegård et al., 2014; Tsai et al., 2015, 2016; Vallejo et al., 2017), хотя геномное прогнозирование менее эффективно, когда при выводе уравнения прогнозирования используются только дальние родственники (Tsai et al., 2016).

    Секвенирование ДНК, связанное с сайтом рестрикции (RAD-seq), представляет собой сокращенное представление высокопроизводительного метода секвенирования для одновременного обнаружения и генотипирования маркеров SNP (Baird et al., 2008). RAD-seq и подобное генотипирование с помощью методов секвенирования основаны на переваривании геномной ДНК рестрикционным ферментом и последующем глубоком секвенировании фланкирующих областей. Эти методы широко применялись из-за их рентабельности в широком диапазоне видов аквакультуры (Robledo et al., 2017), как в исследованиях общегеномных ассоциаций (GWAS) (например, Campbell et al., 2014; Palti et al., al., 2015; Barria et al., 2017) и исследованиях GS (например, Palaiokostas et al., 2016; Vallejo et al., 2016). Основная цель этого исследования состояла в том, чтобы изучить потенциал геномного предсказания типичного полигенного признака у карпа (рост молоди) с использованием полногеномных маркеров SNP, генерируемых RAD-seq. Для этого были взяты образцы из 1425 карпа, измеренные по массе и длине тела примерно в 4-месячном возрасте. RAD-seq использовался для генотипа полногеномных маркеров SNP, выполнялось определение отцовства и оценивалась наследуемость (веса и длины тела). Полученные SNP использовали для построения карты сцепления средней плотности, а затем GWAS для проверки связи между отдельными локусами и ростом.Наконец, GS был протестирован для оценки возможности включения геномных данных для селекции по сравнению с селекцией на основе родословной с использованием этого типичного полигенного признака.

    Материалы и методы

    Сбор проб

    Популяция амурского зеркального карпа была создана в Университете Южной Богемии, Чешская Республика, в мае 2014 года с использованием искусственного осеменения (Vandeputte et al., 2004) с использованием четырех факторных кроссов, каждая из которых включает 5 маток × 10 производителей (20 маток и 40 производителей в общий).Инкубацию яиц проводили в 9-литровых банках Zugar при 20 ° C. На стадии плавания случайно отобранные потомства одинакового общего объема от каждого спаривания собирали и выращивали в полуинтенсивных условиях пруда в течение всего вегетационного периода (с мая по сентябрь). В сентябре выборка из 1425 рыб была обрезана, помечена пассивным интегрированным транспондером (PIT), взвешена с точностью до 0,01 г и измерена стандартная длина (SL) (от кончика носа до конца хвостовой части). цветонос) с точностью до миллиметра.Все рабочие процедуры соответствуют Директиве Европейского Союза 2010/63 / EU о защите и благополучии животных, используемых в научных целях.

    Подготовка и секвенирование библиотеки RAD

    Геномная ДНК была экстрагирована из образцов плавников с использованием набора для экстракции геномной ДНК REALPure (Durviz S.L.) и обработана РНКазой. Каждый образец количественно оценивали спектрофотометрией (Nanodrop), а его качество оценивали электрофорезом в агарозном геле перед разбавлением до концентрации 20 нг / мкл [измеренной флуорометром Qubit (Invitrogen)] в 5 ммоль / л Трис, pH 8.5.

    RAD-специфичные адаптеры с парными концами P1 и P2 и последовательности праймеров для ПЦР амплификации библиотеки, использованные в этом исследовании, подробно описаны в Baxter et al. (2011). Вкратце, каждый образец (0,72 мкг родительской ДНК / 0,24 мкг ДНК потомства) расщепляли при 37 ° C в течение 60 мин с помощью высокоточного рестрикционного фермента Sbf I (распознающего мотив CCTGCA | GG) (New England Biolabs, NEB). Затем реакции (конечный объем 12 мкл) инактивировали нагреванием при 65 ° C в течение 20 мин. Индивидуально-специфические адаптеры P1, каждый с уникальным штрих-кодом из 5 п.н., лигировали с расщепленной I ДНК Sbf I при 20 ° C в течение 60 минут путем добавления 1.8 / 0,6 мкл 100 нмоль / л адаптер P1, 0,45 / 0,15 мкл 100 ммоль / л rATP (Promega), 0,75 / 0,25 мкл 10 × реакционный буфер 2 (NEB), 0,36 / 0,12 мкл лигазы Т4 (NEB, 2 МЕ / мл ), а реакционные объемы доводили до 45/15 мкл с водой, свободной от нуклеаз, для каждого образца родительского / потомства. После тепловой инактивации при 65 ° C в течение 20 минут реакции лигирования медленно охлаждали до комнатной температуры (более 1 часа), затем объединяли в соответствующих мультиплексных пулах. Сдвиг и выбор начального размера (300-600 п.н.) путем разделения агарозного геля сопровождались очисткой геля, репарацией концов, добавлением выступа dA, лигированием парных адаптеров P2 (индивидуально-специфические адаптеры), амплификацией библиотеки, как описано в исходном RAD. протокол (Baird et al., 2008; Etter et al., 2011). В общей сложности 150 мкл каждой амплифицированной библиотеки (14-17 циклов ПЦР, в зависимости от библиотеки) выбирали по размеру (примерно 400-700 п.н.) гель-электрофорезом, как описано у Houston et al. (2012). После заключительного этапа элюции геля в 20 мкл буфера EB (MinElute Gel Purification Kit, Qiagen) 66 библиотек (по 24 животных в каждой) были отправлены в BMR Genomics (Италия) для контроля качества и высокопроизводительного секвенирования. Библиотеки запускались на 14 дорожках Illumina NextSeq 500 с использованием 75 считываний парных оснований (химия v2).Считанные последовательности были депонированы в архиве считывания последовательностей NCBI (SRA) под регистрационным номером PRJNA414021.

    Генотипирование аллелей RAD — идентификация SNP

    Ридов, в которых отсутствует сайт рестрикции, с неоднозначными штрих-кодами и дубликатами ПЦР, были идентифицированы и отброшены с использованием программного обеспечения Stacks 1.4 (Catchen et al., 2011). Остальные считывания были сопоставлены с версией сборки общего референсного генома карпа GCA_000951615.2 (Xu et al., 2014) с использованием bowtie2 (Langmead and Salzberg, 2012).Выровненные чтения были отсортированы по локусам и генотипам с помощью программы Stacks 1.4 (Catchen et al., 2011). Минимальная глубина стопки, по крайней мере, 10 или 5 требовалась для образцов родителей и потомков, соответственно. Для последующего анализа учитывались только локусы, содержащие один или два SNP. SNP с частотой минорных аллелей (MAF) <0,01, отсутствием данных> 25% и отклонением от ожидаемого равновесия Харди-Вайнберга в родительских образцах ( P <1e-06) отбрасывали.

    Назначение отцовства

    Из-за частичных факторных скрещиваний, выполненных в этом эксперименте, семейная структура потомства была неизвестна во время отбора образцов.Определение отцовства было выполнено с использованием данных SNP, полученных из RAD-seq, и программного обеспечения R / hsphase (Ferdosi et al., 2014), допускающего максимальную общую ошибку генотипирования 4%. Полученная родословная была дополнительно проверена на предмет возможных ошибочных назначений с помощью FImpute (Sargolzaei et al., 2014).

    Построение карты связей

    Для построения карты сцепления использовалась Lep-Map v2 (Rastas et al., 2013). SNP с MAF <0,05 в отдельных семьях и те, которые отклоняются от ожидаемой менделевской сегрегации ( P <0.001) были исключены. Группы сцепления были сформированы с использованием минимального порогового значения LOD 18 в модуле « SeparateChromosomes », что обеспечивает максимальное расстояние между последовательными SNP в 50 сМ. Порядок маркеров в каждой группе связей был выполнен с использованием модуля « OrderMarkers » с использованием опции SexAverage . Расстояния на карте рассчитывались в сантиМорганах (сМ) с использованием функции картографирования Косамби.

    Оценка наследуемости

    Оценки наследуемости веса и длины были выполнены с использованием как матрицы родословных родственных связей, так и матрицы геномных родственных связей.Компоненты дисперсии оценивались с использованием AIREMLF90 (Misztal et al., 2002) на следующей модели животных:

    у = Xb + Zu + e, (1)

    , где y — вектор зарегистрированных фенотипов, b — вектор фиксированных эффектов (четырехуровневое факторное пересечение), X — матрица заболеваемости, связывающая фенотипы с фиксированными эффектами, Z — матрица заболеваемости, связывающая фенотипы со случайными эффектами животных, u — вектор случайных эффектов животных ∼ N (0, Aσg2), где A соответствует матрице родословных отношений или матрице геномных отношений G (VanRaden, 2008), σg2 — аддитивной генетической дисперсии, e вектор остатков ∼ N (0, Iσe2) и σe2 — остаточная дисперсия.

    Наследуемость оценивалась по следующей формуле:

    h3 = σg2σg2 + σe2.

    Двумерные модели с теми же фиксированными и случайными эффектами, что и в уравнении (1), использовались для оценки генетических корреляций между фенотипами веса и длины.

    Полногеномный ассоциативный анализ

    Чтобы проверить связь между отдельными SNP и ростом (использовались только записи о длине), GWAS был выполнен с использованием R / gaston (Hervé and Dandine-Roulland, 2018).Применяемая смешанная модель имела тот же формат, что и в уравнении (1), с добавлением каждого протестированного SNP в качестве фиксированного эффекта. Порог значимости для всего генома был рассчитан с использованием поправки Бонферрони (0,05 / N ), где N представляет количество SNP, отфильтрованных QC.

    Геномный отбор

    Точность предсказания геномной селекционной ценности (GEBV) была рассчитана и сравнена с точностью предсказания EBV с использованием традиционного основанного на родословных наилучшего линейного несмещенного предсказания (BLUP) (Хендерсон, 1975).GEBV оценивали с помощью GBLUP (Meuwissen et al., 2001) с использованием набора BLUPF90 (Misztal et al., 2002), обновленного для геномного анализа (Aguilar et al., 2011). BLUP на основе родословной применялся для расчета племенной ценности с использованием того же программного обеспечения. Общий вид подобранных моделей был таким, как в уравнении (1).

    Пятикратная перекрестная проверка была проведена для проверки точности предсказания. Набор данных был случайным образом разделен на последовательные неперекрывающиеся обучающие ( n = 972 человека) и проверочные наборы ( n = 242).Пятикратная процедура перекрестной проверки была повторена 10 раз, чтобы уменьшить влияние случайной выборки. Точность оценочной племенной ценности была приблизительно равна:

    r = (EBV, y) / ч,

    , где y — вектор зарегистрированных фенотипов, а h — квадратный корень из наследуемости. GEBV использовались для приблизительной точности в случае GBLUP. Кроме того, были использованы пять различных сценариев, чтобы проверить влияние снижения плотности генотипирования на точность полученных прогнозов.В этих сценариях GBLUP выполнялся, как указано выше, с использованием подмножеств SNP, выбранных путем постепенного увеличения минимального порога для MAF. В тестируемых сценариях использовались пороговые значения MAF 0,1 (8 237 SNP), 0,2 (4950 SNP), 0,3 (2744 SNP), 0,4 (1182 SNP) и 0,45 (530 SNP). Смещение в форме коэффициента регрессии фенотипического признака на (G) EBV оценивалось как для PBLUP, так и для всех протестированных сценариев GBLUP.

    Результаты

    Описательная статистика

    Средний вес генотипированной молоди карпа примерно через 4 месяца роста (дополнительная таблица S1) составлял 16.3 г (стандартное отклонение 4,6), а средний SL составил 77 мм (стандартное отклонение 7,1). Коэффициент корреляции Пирсона между длиной тела и весом составил r = 0,93 (рисунок 1).

    РИСУНОК 1. Описательная статистика фенотипических данных (вес, длина).

    Идентификация SNP и генотипирование

    Животные с менее чем 25% отсутствующих генотипов SNP были оставлены для последующего анализа (что соответствует 60 родительским образцам и 1400 потомкам). Общее количество необработанных считываний, прошедших фильтры QC, составило 6.89 (стандартное отклонение 1,33) M для родительских образцов и 3,68 (стандартное отклонение 1,28) M для потомков. Среднее количество идентифицированных локусов RAD составляло 57 983 (SD 1573) и 57 235 (SD 5224) для родителей и потомков, соответственно, со средним охватом 60 (SD 10) X и 29 (SD 8) X, соответственно. Всего было идентифицировано 22 756 предполагаемых SNP, из которых 20 039 SNP прошли фильтры контроля качества и были оставлены для последующего анализа (дополнительная таблица S2).

    Назначение отцовства

    Потомство карпа было отнесено к уникальным родительским парам с учетом максимальной вероятности генотипических ошибок 4%.В общей сложности 1214 потомков были однозначно распределены, образовав 195 полноплодных семей (40 производителей, 20 самок), от 1 до 21 особи в семье со средним размером 6 (стандартное отклонение 4). Вклад отдельных маток в популяцию варьировался от 9 до 99 животных со средним значением 61 (SD 23), в то время как вклад производителей варьировал от 7 до 53 животных со средним значением 30 (SD 12).

    Построение карты связей

    Карта сцепления, построенная с использованием вышеупомянутых семейств, состояла из 12 311 SNP (таблица 1), которые были сгруппированы в 50 групп сцепления (в соответствии с ожидаемым кариотипом).Длина согласованной карты сцепления составляла 3944 сМ (дополнительная таблица S3). Количество SNP на хромосому варьировалось от 157 до 350 (среднее = 246; SD = 45), а длина группы сцепления колебалась от 67 до 106 сМ (среднее = 79; SD = 9).

    ТАБЛИЦА 1. Количество фильтрованных через QC SNP на группу связей.

    Оценка наследуемости

    Расчетная наследуемость по весу и длине составляла 0,26 (SE 0,05) и 0,33 (SE 0,05), соответственно, и согласовывалась между родословной и геномной моделями.Генетическая корреляция между массой тела и SL составила 0,94 (стандартное отклонение 0,02), и поэтому для последующих анализов использовались только данные о длине.

    Полногеномное исследование ассоциации (GWAS) — Геномный отбор (GS)

    Полногеномное исследование ассоциации и GS были выполнены с использованием только данных SL. GWAS не идентифицировал SNP, превышающие значимый для всего генома порог (рис. 2), что указывает на то, что рост молоди, вероятно, является полигенным признаком. Используя подход перекрестной проверки, точность прогноза племенной ценности была оценена как 0.60 (SE 0,03) для PBLUP, в отличие от 0,71 (SE 0,03) для GBLUP. Точность, полученная с помощью GBLUP с использованием различных уменьшенных плотностей SNP, варьировалась от 0,66 до 0,71 (рис. 3). GBLUP, использующий только SNP с минимальным MAF 0,45 (530 SNP), показал улучшение точности примерно на 10% по сравнению с PBLUP. Плотность SNP при минимальном MAF 0,3 имела практически такую ​​же точность прогнозов, как и полный набор данных (рис. 3). Расчетное смещение (G) EBV колебалось от 0,78 до 1,02. Сценарий с использованием SNP с минимальным MAF 0.Было обнаружено, что 45 дает наиболее предвзятые GEBV (Таблица 2).

    РИСУНОК 2. График ассоциации длины тела по всему геному.

    РИСУНОК 3. Средняя точность GBLUP и PBLUP. Точность GBLUP была получена с использованием либо всех доступных SNP (FD; 12311), SNP с MAF> 0,10 (8237), SNP с MAF> 0,20 (4950), SNP с MAF> 0,30 (2744), SNP с MAF> 0,40 (1182) , и SNP с MAF> 0,45 (530).

    ТАБЛИЦА 2. Средняя точность родословных BLUP (PBLUP) и GBLUP с использованием SNP с различным MAF, полученным из 10 повторов пятикратной перекрестной проверки.

    Обсуждение

    Традиционное селекционное разведение основывается на хорошо задокументированной родословной, которая относительно проста в животноводстве, но более сложна в аквакультуре. Генетические маркеры могут решить эту проблему, облегчая практическую реализацию программ разведения за счет эффективного определения отцовства и обхода требования выращивать рыбу в отдельных аквариумах до тех пор, пока не станет возможным мечение (Vandeputte and Haffray, 2014).В текущем исследовании изучалась полезность данных RAD-seq для обеспечения селективного разведения по полигенному признаку у карпа обыкновенного. Используя данные RAD SNP, приблизительно 86% генотипированных животных можно однозначно отнести к родительским парам. После реконструкции родословной были получены средние оценки наследуемости 0,26 и 0,33 для веса и длины молоди, соответственно. Эти оценки соответствуют предыдущим оценкам наследуемости веса / длины, полученным от молоди карпа (Vandeputte et al., 2004; Ninh et al., 2013; Hu et al., 2017). Однако одно ограничение текущего исследования заключается в том, что измерения признаков проводились у молодых особей, и корреляция между ростом в раннем возрасте и ростом и размером урожая для этой популяции неизвестна. В отношении этого имеются противоречивые данные: исследования, фиксирующие высокие положительные фенотипические корреляции между признаками роста на стадии молоди и урожая (Ninh et al., 2013), умеренные положительные корреляции (Vandeputte et al., 2008; Nielsen et al., 2010) или корреляции, близкие к нулю (Hu et al., 2017). Тем не менее, вес и длина молоди карпа обыкновенного в настоящем исследовании используются в качестве образцового полигенного признака с более широкими последствиями для использования геномных данных для улучшения других экономически важных признаков, в частности тех, которые обычно не поддаются измерению непосредственно на отобранных кандидатах (устойчивость к болезням или признаки филе, например).

    Генетические маркеры могут быть ценным дополнением к селекционной селекции, но оптимальная стратегия их применения зависит от лежащей в основе генетической архитектуры интересующего признака.Если признак в первую очередь контролируется одним или несколькими основными QTL, может быть наиболее эффективным использование селекции с помощью маркеров с маркерами низкой плотности, фланкирующими области QTL. Так обстоит дело с устойчивостью к вирусу инфекционного некроза поджелудочной железы у атлантического лосося, например, где почти все генетические вариации объясняются одним QTL (Houston et al., 2008; Moen et al., 2009). Однако большинство признаков, имеющих экономическое значение, имеют полигенную архитектуру, и GS, вероятно, будет наиболее эффективным использованием генетических маркеров для улучшения этих признаков.В текущем исследовании результаты GWAS предполагали, что признаки роста молоди были полигенными по своей природе. В предыдущих исследованиях с использованием анализа сцепления сообщалось, что QTL связан с ростом карпа. Исследование одного полноподобного семейства карпа выявило 14 QTL, распределенных в пяти разных LG, включая области, связанные с гипоталамо-гипофизарно-гонадной осью и осью GH / IGF-I, которая регулирует развитие, пролиферацию клеток, энергетический метаболизм и рост (Peng et al., 2016). Кроме того, в исследовании восьми полноплодных семей карпа было выявлено 38 QTL, связанных с ростом, хотя ни один QTL не был обнаружен во всех семьях (Lv et al., 2016). Следовательно, из-за отсутствия последовательного основного эффекта QTL маловероятно, что MAS будет эффективным подходом для выбора лучших кандидатов для разведения по этому и аналогичным экономически важным признакам, а GS является многообещающей альтернативой.

    Результаты тестирования GS в популяции карпа, использованные в данном исследовании, были обнадеживающими: точность прогноза, полученная посредством перекрестного проверочного анализа с использованием GBLUP, составила 0,71. Это означает повышение точности примерно на 18% по сравнению с породным BLUP, что указывает на значительные потенциальные преимущества для точности отбора и генетического преимущества сложных экономических признаков у карпа.Наши результаты согласуются с другими исследованиями видов аквакультуры, где основное преимущество использования геномных моделей было продемонстрировано в отношении устойчивости к болезням, например, у атлантического лосося (Tsai et al., 2015, 2016), радужной форели (Vallejo et al., 2017) и морского леща (Palaiokostas et al., 2016). GS выигрывает от увеличения размера выборки эталонной популяции (Vallejo et al., 2017), что указывает на то, что можно ожидать дальнейшего улучшения точности прогнозов за счет увеличения количества генотипированных животных в текущем исследовании.В типичных схемах разведения в аквакультуре, включая массовые нерестовые виды, где эталонные и проверочные наборы тесно связаны, использование генетических маркеров может быть очень эффективным для выявления внутрисемейной генетической изменчивости (Lillehammer et al., 2013). Однако, учитывая, что точность прогноза, вероятно, будет в значительной степени зависеть от генетических отношений, это означает, что прогнозирование генома у дальних родственников эталонной популяции, вероятно, будет значительно более сложной задачей, как это наблюдается у наземного домашнего скота (Daetwyler et al., 2013).

    Примечательно, что GBLUP привел к повышению точности прогнозов по сравнению с прогнозированием родословных с использованием относительно разреженных (~ 500 SNP) данных генотипа, особенно с учетом большого размера генома (~ 1,8 Гб) обыкновенного карпа. Аналогичные результаты были зарегистрированы для атлантического лосося, где точность прогнозов была получена для 5K SNP, что и для 112K SNP (Tsai et al., 2015). И карп, и атлантический лосось имеют большие геномы, и эффективность геномного прогнозирования при низкой плотности маркеров снова, вероятно, отражает вышеупомянутые тесные отношения между дрессированными и проверяемыми животными.Тем не менее, это может иметь экономические выгоды, поскольку невысоких затрат на разреженное генотипирование может быть достаточно для повышения точности прогнозов в программе разведения. Это может быть важно для стимулирования внедрения GS, поскольку селекционные кандидаты аквакультурных видов имеют более низкую экономическую ценность по сравнению с животноводством, что затрудняет оправдание применения дорогостоящих подходов к генотипированию с высокой плотностью. Подходы вменения генотипов имеют большой потенциал для дальнейшего снижения плотности генотипов и стоимости и уже показали значительные перспективы в отношении атлантического лосося (Tsai et al., 2017). Хотя проверка результатов текущего исследования с использованием размера карпа (или других экономически важных сложных признаков) была бы следующим логическим шагом, результаты текущего исследования показывают, что GS имеет потенциал для значительного улучшения точности прогнозов при разведении карпа, и RAD-seq — это один из методов генерации данных маркеров, позволяющий это улучшить.

    Заключение

    Результаты текущего исследования продемонстрировали, что использование маркеров SNP, созданных с помощью RAD-seq, является эффективным подходом для исследования и потенциального улучшения полигенного признака в основной популяции карпа.Эти SNP позволяли определять родословную, оценивать генетические параметры, GWAS и GS в рамках одного эксперимента. GS привел к улучшенной точности прогнозирования по сравнению с подходами на основе родословных, даже когда использовалась только относительно разреженная информация о маркерах.

    Взносы авторов

    MK, MP и RH разработали исследование и внесли свой вклад в разработку экспериментальной структуры. MK и MP рассказали о создании и продолжении выращивания экспериментального поголовья, маркировке PIT, регистрации фенотипических данных и стрижке рыб с плавников.CP выполнил экстракцию ДНК, подготовку библиотеки RAD и обработку данных о последовательностях. CP и RH провели определение отцовства и количественный генетический анализ. Все авторы участвовали в написании рукописи.

    Финансирование

    Авторы были поддержаны финансированием Седьмой рамочной программы Европейского Союза (FP7 2007-2013) в соответствии с Соглашением о гранте № 613611 (FISHBOOST). МК и МП также были поддержаны Министерством просвещения молодежи и спорта Чешской Республики (проекты CENAKVA — CZ.1.05 / 2.1.00 / 01.0024 и CENAKVA II — LO1205 по программе NPU I) и Грантовое агентство Южночешского университета (проект № 125/2016 / Z).

    Заявление о конфликте интересов

    Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

    Дополнительные материалы

    Дополнительные материалы к этой статье можно найти в Интернете по адресу: https: // www.frontiersin.org/articles/10.3389/fgene.2018.00082/full#supplementary-material

    ТАБЛИЦА S1 | Информация о происхождении и фенотипе молоди карпа.

    ТАБЛИЦА S2 | Подробная информация об идентифицированном SNP через RADseq.

    ТАБЛИЦА S3 | Схема сцепления карпа обыкновенного.

    Список литературы

    Агилар И., Мишталь И., Легарра А. и Цурута С. (2011). Эффективное вычисление матрицы геномных отношений и других матриц, используемых при одношаговой оценке. J. Anim. Порода. Genet. 128, 422–428. DOI: 10.1111 / j.1439-0388.2010.00912.x

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Бэрд Н. А., Эттер П. Д., Этвуд Т. С., Керри М. К., Шивер А. Л., Льюис З. А. и др. (2008). Быстрое обнаружение SNP и генетическое картирование с использованием секвенированных маркеров RAD. PLoS One 3: e3376. DOI: 10.1371 / journal.pone.0003376

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Балон, Э.К. (1995). Происхождение и одомашнивание дикого карпа, Cyprinus carpio : от римских гурманов до плавающих цветов. Аквакультура 129, 3–48. DOI: 10.1016 / 0044-8486 (94) 00227-F

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Баррия, А., Кристенсен, К. А., Йошида, Г. М., Корреа, К., Едлики, А., Лоренте, Дж. П. и др. (2017). Геномные прогнозы и исследование ассоциации полногенома устойчивости против Piscirickettsia salmonis у кижуча ( Oncorhynchus kisutch ) с использованием секвенирования ddRAD. G3. doi: 10.1534 / g3.118.200053 [Epub перед печатью].

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Бакстер, С. У., Дэйви, Дж. У., Джонстон, Дж. С., Шелтон, А. М., Хекель, Д. Г., Джиггинс, К. Д. и др. (2011). Картирование сцепления и сравнительная геномика с использованием RAD-секвенирования следующего поколения немодельного организма. PLoS One 6: e19315. DOI: 10.1371 / journal.pone.0019315

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кэмпбелл, Н.Р., ЛаПатра, С. Э., Овертурф, К., Таунер, Р., и Нарум, С. Р. (2014). Ассоциативное картирование признаков устойчивости к болезням радужной форели с использованием секвенирования ДНК, связанной с сайтами рестрикции. G3 4, 2473–2481. DOI: 10.1534 / g3.114.014621

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Катчен, Дж. М., Аморес, А., Гогенлоэ, П., Креско, В., и Постлетвейт, Дж. Х. (2011). Стеки: построение и генотипирование Loci de novo из коротко читаемых последовательностей. G3 1, 171–182.DOI: 10.1534 / g3.111.000240

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Дэтвайлер, Х. Д., Калус, М. П. Л., Понг-Вонг, Р., де лос Кампос, Г., и Хики, Дж. М. (2013). Геномное прогнозирование у животных и растений: моделирование данных, проверка, отчетность и сравнительный анализ. Генетика 193, 347–365. DOI: 10.1534 / genetics.112.147983

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Дэйви, Дж. У., Гогенлоэ, П. А., Эттер, П.Д., Бун, Дж. К., Катчен, Дж. М., и Блакстер, М. Л. (2011). Обнаружение и генотипирование генетических маркеров по всему геному с использованием секвенирования следующего поколения. Нат. Преподобный Жене. 12, 499–510. DOI: 10.1038 / nrg3012

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    -де-лос-Кампос, Г., Хики, Дж. М., Понг-Вонг, Р., Дэтвайлер, Х. Д., и Калус, М. П. Л. (2013). Методы полногеномной регрессии и прогнозирования в селекции растений и животных. Генетика 193, 327–345.DOI: 10.1534 / genetics.112.143313

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Донг, З., Нгуен, Н. Х., Чжу, В. (2015). Генетическая оценка программы селекции обыкновенного карпа Cyprinus carpio , проведенная с 2004 по 2014 год. BMC Genet. 16:94. DOI: 10.1186 / s12863-015-0256-2

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Etter, P. D., Bassham, S., Hohenlohe, P. A., Johnson, E. A., and Cresko, W.А. (2011). Открытие SNP и генотипирование для эволюционной генетики с использованием RAD-секвенирования. Methods Mol. Биол. 772, 157–178. DOI: 10.1007 / 978-1-61779-228-1-9

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Фердози, М. Х., Кингхорн, Б. П., ван дер Верф, Дж. Х. Дж., Ли, С. Х. и Гондро, К. (2014). hsphase: пакет R для реконструкции родословной, обнаружения событий рекомбинации, фазирования и вменения полусибских семейных групп. BMC Bioinformatics 15: 172.DOI: 10.1186 / 1471-2105-15-172

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Gjedrem, T. (2000). Генетическое улучшение холодноводных видов рыб. Aquac. Res. 31, 25–33. DOI: 10.1046 / j.1365-2109.2000.00389.x

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Годдард, М. Э., и Хейс, Б. Дж. (2009). Картирование генов сложных признаков у домашних животных и их использование в программах разведения. Нат. Преподобный Жене. 10, 381–391. DOI: 10.1038 / nrg2575

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Эрве П. и Дандин-Рулланд К. (2018). Гастон: Обработка генетических данных (QC, GRM, LD, PCA) и линейные смешанные модели версии 1.5 от CRAN. Доступно на: https://rdrr.io/cran/gaston/

    Хики, Дж. М., Чиуругви, Т., Маккей, И., Пауэлл, В., и участники семинара по реализации геномного отбора в программах селекции КГМСХИ. (2017). Геномное прогнозирование объединяет программы селекции животных и растений, чтобы сформировать платформу для биологических открытий. Нат. Genet. 49, 1297–1303. DOI: 10,1038 / нг.3920

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хьюстон, Р. Д., Дэйви, Дж. У., Бишоп, С. К., Лоу, Н. Р., Мота-Веласко, Дж. К., Гамильтон, А. и др. (2012). Характеристика QTL-связанных и полногеномных маркеров ДНК, ассоциированной с сайтами рестрикции (RAD), у выращиваемых атлантических лососей. BMC Genomics 13: 244. DOI: 10.1186 / 1471-2164-13-244

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хьюстон, Р.Д., Хейли, С. С., Гамильтон, А., Гай, Д. Р., Тинч, А. Е., Таггарт, Дж. Б. и др. (2008). Локусы основных количественных признаков влияют на устойчивость к инфекционному некрозу поджелудочной железы у атлантического лосося ( Salmo salar ). Генетика 178, 1109–1115. DOI: 10.1534 / genetics.107.082974

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ху, X., Ли, К., Шан, М., Ге, Ю., Цзя, З., Ван, С. и др. (2017). Наследование признаков роста у зеркального карпа сонгпу ( Cyprinus carpio L.) выращивают в Северо-Восточном Китае. Аквакультура 477, 1–5. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2017.04.031

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хулата, Г. (1995). Обзор генетического улучшения карпа обыкновенного ( Cyprinus carpio L.) и других карповых с помощью скрещивания, гибридизации и отбора. Аквакультура 129, 143–155. DOI: 10.1016 / 0044-8486 (94) 00244-I

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Янссен, К., Шаванн, Х., Берентсен, П., Комен, Х. (2017). Влияние селекционного разведения на европейскую аквакультуру. Аквакультура 472, 8–16. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2016.03.012

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кодур, М., Маугер, С., Родина, М., Гела, Д., Линхарт, О., и Вандепутт, М. (2007). Оценка наследственности для обработки и качественных признаков карпа ( Cyprinus carpio L.) с использованием молекулярной родословной. Аквакультура 270, 43–50. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2007.03.001

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Лиллехаммер М., Меувиссен Т. Х. Э. и Сонессон А. К. (2013). Реализация геномной селекции с низкой плотностью маркеров в аквакультуре с использованием значений внутрисемейной геномной селекции. Genet. Sel. Evol. 45:39. DOI: 10.1186 / 1297-9686-45-39

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Lv, W., Zheng, X., Kuang, Y., Cao, D., Yan, Y., and Sun, X. (2016). Вариации QTL для связанных с ростом признаков у восьми различных семейств карпа ( Cyprinus carpio ). BMC Genet. 17:65. DOI: 10.1186 / s12863-016-0370-9

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Meuwissen, T., Hayes, B., and Goddard, M. (2013). Ускорение улучшения поголовья с помощью геномной селекции. Annu. Rev. Anim. Biosci. 1, 221–237. DOI: 10.1146 / annurev-animal-031412-103705

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Меувиссен, Т. Х. Э., Хейс, Б. Дж., И Годдард, М. Э. (2001). Прогнозирование общей генетической ценности с использованием плотных карт маркеров для всего генома. Генетика 157, 1819–1829.

    PubMed Аннотация | Google Scholar

    Мишталь, И., Цурута, С., Страбель, Т., Овре, Б., Дрюэ, Т., и Ли, Д. Х. (2002). «BLUPF90 и связанные программы (BGF90)», в Труды 7-го Всемирного конгресса по генетике, применяемой в животноводстве, , Монпелье, 21–22.

    Google Scholar

    Моав Р. и Вольфарт Г. (1976). Двусторонний отбор по скорости роста карпа ( Cyprinus carpio L.). Генетика 82, 83–101.

    PubMed Аннотация | Google Scholar

    Моэн, Т., Барански, М., Сонессон, А.К., и Кьоглум, С. (2009). Подтверждение и точное картирование основного QTL для устойчивости к инфекционному некрозу поджелудочной железы у атлантического лосося ( Salmo salar ): ассоциации на уровне популяции между маркерами и признаком. BMC Genomics 10: 368. DOI: 10.1186 / 1471-2164-10-368

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Нильсен, Х.М., Ødegård, J., Olesen, I., Gjerde, B., Ardo, L., Jeney, G., et al. (2010). Генетический анализ линий карпа обыкновенного ( Cyprinus carpio ). I: генетические параметры и гетерозис для признаков роста и выживания. Аквакультура 304, 14–21. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2010.03.016

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Нинь, Н. Х., Понзони, Р. В., Нгуен, Н. Х., Вуллиамс, Дж. А., Таггарт, Дж. Б., МакЭндрю, Б. Дж. И др. (2013). Сравнение коллективного и раздельного выращивания семей при селективном разведении карпа ( Cyprinus carpio ): ответы на селекцию. Аквакультура 40, 152–159. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2013.06.005

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Одегард, Дж., Моэн, Т., Санти, Н., Корсволл, С. А., Кьеглум, С., и Меувиссен, Т. Х. Э. (2014). Геномное предсказание смешанной популяции атлантического лосося ( Salmo salar ). Фронт. Genet. 5: 402. DOI: 10.3389 / fgene.2014.00402

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Palaiokostas, C., Ferraresso, S., Франч Р., Хьюстон Р. Д. и Барджеллони Л. (2016). Геномное прогнозирование устойчивости к пастереллезу у морского леща ( Sparus aurata ) с использованием секвенирования 2b-RAD. G3 58, 3693–3700. DOI: 10.1534 / g3.116.035220

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Палти, Ю., Вальехо, Р. Л., Гао, Г., Лю, С., Эрнандес, А. Г., Рексроуд, К. Э. и др. (2015). Обнаружение и проверка QTL, влияющего на устойчивость к бактериальным болезням холодной воды у радужной форели, с использованием секвенирования ДНК, связанного с сайтами рестрикции. PLoS One 10: e0138435. DOI: 10.1371 / journal.pone.0138435

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Пэн, В., Сюй, Дж., Чжан, Ю., Фэн, Дж., Донг, К., Цзян, Л. и др. (2016). Карта сцепления сверхвысокой плотности и QTL-карта для половых и связанных с ростом признаков карпа ( Cyprinus carpio ). Sci. Реп. 6: 26693. DOI: 10.1038 / srep26693

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Растас, П., Паулин, Л., Хански, И., Лехтонен, Р., Аувинен, П. (2013). Lep-MAP: быстрое и точное построение карты связей для больших наборов данных SNP. Биоинформатика 29, 3128–3134. DOI: 10.1093 / биоинформатика / btt563

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Робледо Д., Палайокостас К., Барджеллони Л., Мартинес П. и Хьюстон Р. (2017). Применение генотипирования путем секвенирования в селекции и генетике аквакультуры. Rev. Aquac. DOI: 10.1111 / raq.12193 [EPub перед печатью].

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Sargolzaei, M., Chesnais, J. P., and Schenkel, F. S. (2014). Новый подход для эффективного вменения генотипа с использованием информации от родственников. BMC Genomics 15: 478. DOI: 10.1186 / 1471-2164-15-478

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Цай, Х.-Й., Гамильтон, А., Тинч, А.Э., Гай, Д.Р., Брон, Дж. Э., Таггарт, Дж. Б. и др. (2016). Геномное прогнозирование устойчивости хозяев к морским вшам в выращиваемых популяциях атлантического лосося. Genet. Sel. Evol. 48:47. DOI: 10.1186 / s12711-016-0226-9

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Цай, Х.-Й., Гамильтон, А., Тинч, А. Е., Гай, Д. Р., Гарби, К., Стир, М. Дж. И др. (2015). Полногеномная ассоциация и геномное прогнозирование признаков роста у выращиваемой молоди атлантического лосося с использованием массива SNP с высокой плотностью. BMC Genomics 16: 969. DOI: 10.1186 / s12864-015-2117-9

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Цай, Х.-Й., Матика, О., Эдвардс, С. М., Антолин-Санчес, Р., Гамильтон, А., Гай, Д. Р. и др. (2017). Вменение генотипа для повышения рентабельности геномной селекции выращиваемого атлантического лосося. G3 , 1377–1383. DOI: 10.1534 / g3.117.040717

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Вальехо, Р. Л., Лидс, Т. Д., Фрагомени, Б. О., Гао, Г., Эрнандес, А. Г., Мишталь, И. и др. (2016). Оценка генетической селекции на устойчивость к бактериальным болезням холодной воды с использованием данных о производительности потомства радужной форели: понимание методов генотипирования и моделей геномного прогнозирования. Фронт. Genet. 7:96. DOI: 10.3389 / fgene.2016.00096

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Вальехо, Р. Л., Лидс, Т. Д., Гао, Г., Парсонс, Дж. Э., Мартин, К. Е., Эвенхуис, Дж. П. и др. (2017). Модели геномной селекции вдвое превышают точность прогнозируемых селекционных значений устойчивости к бактериальным болезням холодной воды по сравнению с традиционной родословной моделью в аквакультуре радужной форели. Genet. Sel. Evol. 49:17. DOI: 10.1186 / s12711-017-0293-6

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Вандепутте, М.(2003). Селективное выведение количественных признаков карпа ( Cyprinus carpio ): обзор. Aquat. Живой ресурс. 16, 399–407. DOI: 10.1016 / S0990-7440 (03) 00056-1

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Вандепутт, М., Хафрей, П. (2014). Определение отцовства с помощью геномных маркеров: большой шаг вперед в понимании и использовании генетических вариаций количественных признаков у выращиваемых водных животных. Фронт. Genet. 5: 432. DOI: 10.3389 / fgene.2014.00432

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Vandeputte, M., Kocour, M., Mauger, S., Dupont-Nivet, M., De Guerry, D., Rodina, M., et al. (2004). Оценка наследственности по признакам, связанным с ростом, с использованием микросателлитного отцовства молоди карпа ( Cyprinus carpio L.). Аквакультура 235, 223–236. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2003.12.019

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Вандепутте, М., Kocour, M., Mauger, S., Rodina, M., Launay, A., Gela, D., et al. (2008). Генетическая изменчивость роста карпа ( Cyprinus carpio L.) в возрасте одного и двух летних лет: оценка наследственности и реакция на отбор. Аквакультура 277, 7–13. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2008.02.009

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Xu, P., Zhang, X., Wang, X., Li, J., Liu, G., Kuang, Y., et al. (2014). Последовательность генома и генетическое разнообразие карпа Cyprinus carpio . Нат. Genet. 46, 1212–1219. DOI: 10,1038 / нг.3098

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Рекомбинантный белок карпа

    GH | Гормон роста

    Каталожный номер

    CYT-297

    Синонимов

    Gh2, GH, GHN, GH-N, hGH-N, гормон роста гипофиза, гормон роста 1, соматотропин.

    Введение

    Гормон роста является членом семейства гормонов соматотропина / пролактина, которые играют важную роль в контроле роста.Ген, наряду с четырьмя другими родственными генами, расположен в локусе гормона роста на хромосоме 17, где они вкраплены в одной и той же транскрипционной ориентации; это устройство, которое, как полагают, возникло в результате серии дупликаций генов. Эти пять генов имеют удивительно высокую степень идентичности последовательностей. Альтернативный сплайсинг генерирует дополнительные изоформы каждого из пяти гормонов роста, что приводит к дальнейшему разнообразию и потенциалу для специализации. Этот конкретный член семейства экспрессируется в гипофизе, но не в ткани плаценты, как в случае с другими четырьмя генами в локусе гормона роста.Мутации или делеции гена приводят к дефициту гормона роста и низкому росту.

    Описание

    Гормон роста карпа Рекомбинант, продуцируемый в кишечной палочке, представляет собой одиночную негликозилированную полипептидную цепь, содержащую 188 аминокислот и имеющую молекулярную массу 21 408 дальтон.
    Гормон роста Карп очищен патентованными хроматографическими методами.

    Источник

    Escherichia Coli.

    Внешний вид

    Стерильно-фильтрованный белый лиофилизированный (лиофилизированный) порошок.

    Состав

    Карпа GH лиофилизировали из концентрированного (1 мг / мл) раствора с 0,3% NaHCO3, доведенного до pH 8.

    Растворимость

    Рекомендуется восстановить лиофилизированный рекомбинант гормона роста карпа в стерильном 18 МОм-см вод.ст. не менее 100 мкг / мл, который затем можно разбавить другими водными растворами.

    Стабильность

    Лиофилизированный рекомбинант гормона роста карпа, хотя он стабилен при комнатной температуре в течение 3 недель, следует хранить в высушенном виде при температуре ниже
    –18 ° C. После восстановления гормона роста карпа следует хранить при 4 ° C в течение 2-7 дней и для будущего использования при температуре ниже -18 ° C.
    Для длительного хранения рекомендуется добавить белок-носитель (0,1% HSA или BSA).
    Пожалуйста, не допускайте циклов замораживания-оттаивания.

    Чистота

    Больше 95.0%, как определено с помощью:
    (a) Анализ с помощью SEC-HPLC.
    (b) Анализ с помощью SDS-PAGE.

    Аминокислотная последовательность

    Была определена последовательность первых пяти N-концевых аминокислот, которая оказалась Ser-Asp-Asn-Gln-Arg.

    Биологическая активность

    GH карпа является биологически активным в преадипоцитах 3T3 F442A крысы, хотя его активность в 15 раз ниже по сравнению с GH крупного рогатого скота, но он также эффективен in vivo в стимулировании роста карпа (Fine et al.1993). Кроме того, GH карпа образует комплекс 1: 2 с внеклеточным доменом рецептора гормона роста овцы.

    Список литературы

    Название: Гормон роста способствует регенерации волосковых клеток во внутреннем ухе рыбок данио (Danio rerio) после акустической травмы.
    Публикация: Sun H, Lin C-H, Smith ME (2011) Гормон роста способствует регенерации волосковых клеток во внутреннем ухе рыбок данио (Danio rerio) после акустической травмы. PLoS ONE 6 (11): e28372.doi: 10.1371 / journal.pone.0028372
    Ссылка: http://www.plosone.org/article/info%3Adoi%2F10.1371%2Fjournal.pone.0028372

    Паспорт безопасности

    Использование

    Продукция

    ProSpec предназначена ТОЛЬКО для ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ. Продукт нельзя использовать в качестве лекарств, сельскохозяйственных или пестицидных продуктов, пищевых добавок или бытовой химии.

    Сколько азиатских карпов нужно для создания репродуктивной популяции в Великих Лаврентийских озерах?

    В последнее время растет внимание к возможной новой угрозе экосистеме Великих Лаврентийских озер: инвазивным азиатским карпам.Возможно, вы даже видели кадры с этой большой рыбой, так как видео азиатского карпа, выпрыгивающего из воды и разбивающегося о лодки и рыболовов, разошлось на YouTube и в других средствах массовой информации. На самом деле существует четыре вида азиатских карпа, угрожающих Великим озерам: толстолобик, толстолобик, черный амур и белый амур. Вы можете узнать больше об их экологии и естественной истории здесь.

    Рис. 2. Бригада азиатских карпов Министерства рыболовства и океанов Канады держит четырех белых амур, пойманных в озере Гибсон, Онтарио.

    Исследователи из Университета Ватерлоо (Онтарио, Калифорния) и Департамента рыболовства и океанов Канады определили, что на самом деле потребуется очень мало особей толстоголовых или толстолобиков, чтобы создать большую репродуктивную популяцию любого вида. Используя прогнозные модели, основанные на наших текущих знаниях об экологии азиатских карпов, прогрессе их вторжения на сегодняшний день и экологии Великих озер, исследователи определили, что всего десять самцов и десять самок может быть достаточно, чтобы привести к успешному вторжению (Cuddington et al. al.2014).

    Рис. 3. Прогнозируемые ежегодные темпы прироста популяции толстолобика и толстолобика в возрасте первого воспроизводства 2, 3, 4 и 5. Темпы роста варьировались в зависимости от среднего (среднего) количества яиц на самку. Взято из Cuddington et al. 2014.

    Однако не все так плохо. Более прохладные воды Великих озер могут снизить шансы на успешное вторжение азиатских карпов. Исследователи обнаружили, что если эти рыбы отложат воспроизводство до более поздних лет своей жизни из-за более медленных темпов роста, наблюдаемых в более прохладных водах, это снизит общую скорость роста популяции и помешает успешной инвазии (рис.3).

    Исследователи пришли к выводу, что одно событие, приведшее к попаданию нескольких взрослых азиатских карпов одного вида в водораздел Великих озер, может привести к созданию здоровой и репродуктивной популяции азиатских карпов, демонстрируя важность создания качественных барьеров для их передвижения в Великие озера. и регулярный мониторинг.

    Если вы считаете, что нашли азиатского карпа в водоразделе Великих озер, существует множество интернет-сайтов, которые могут помочь вам определить этот вид и предоставить контактную информацию для местных менеджеров, включая, помимо прочего:

    http: // asiancarp.ок. /

    http://www.asiancarp.us/

    Ссылки :

    Каддингтон К., Карри У. Дж. И Купс М.А. 2014. Может ли азиатская популяция карпа прижиться в Великих озерах в результате небольшой интродукции. Биологические вторжения 16: 903-917.

    Сравнение роста культивируемого карпа, личинок Cyprinus carpio в земляных прудах и рециркуляционной системе аквакультуры

    Абдул-Кадхар, Кумар, А., Али, Дж. И Джон, А.(2014). Исследования выживаемости и роста мальков Catla catla (Hamilton, 1922) с использованием живого корма. Журнал морской биологии, 2014, 1-7. 842381, 7 стр. http://dx.doi.org/ 10.1155 / 2014/842381

    Аль-Джадер, Ф.А.М., и Аль-Сулевани, Р.С. (2012). Оценка продуктивности карпа Cyprinus carpio L. на трех коммерческих рационах. Сельскохозяйственный журнал Месопотамии, 40, 20-26.doi.10.33899 / magrj. 2012.60187

    Аль-Нур, С.С., Джасим, Б.М. и Наджим, С.М. (2014). Кормление и эффективность роста мальков карпа Cyprinus carpio L., получавших биосилаж рыб, в качестве частичной альтернативы рыбной муке. Глобальный журнал биологии, сельского хозяйства и медицинских наук, 3, 81-85.

    Альварес-Гонсалес, К., Ортис-Галиндо, Дж. Л., Дюма, С., Мартинес-Диас, С., Эрнандес-Себальос, Делавэр, Грайеб-Дель Аламо, Т., Морено-Легоретта, М., Пена-Мартинес , Р., и Сивера-Сереседо, Р. (2001). Влияние плотности посадки на рост и выживаемость личинок морского окуня Paralabrax maculatofasciatus в закрытой рециркуляционной системе.Журнал Всемирного общества аквакультуры, 32, 130-137. http://dx.doi.org/10.1111/j.1749-7345.2001.tb00932.x

    Апплах-Куби, Ф. (2012). Экономический анализ использования рециркуляционных систем аквакультуры в производстве тилапии. M. Sc. Диссертация, Норвежский университет естественных наук, 52 стр. http://hdl.handle.net/11250/186092

    Чакраборти, Б. К. (2017). Влияние плотности посадки на выживаемость и рост находящихся под угрозой исчезновения удлиненных, Bengala elonga (Hamilton) в прудах-питомниках.Международный журнал океанографии и аквакультуры, 1, 1-10. http://medwinpuplishers.com/UOAC/UOAC16000118.pdf.

    Coroian, C.O., Mireşan, V., Cocan, D. I., Vau, R.D .; Радуку, К. М., и Короян, А. (2015). Показатели роста сеголетков карпа (Cyprinus carpio L.), получавших различные уровни протеина. Аквакультура, аквариум, охрана природы и законодательство, Международный журнал Общества биофлюкс, 8, 1038-1047. http://www.envirobiotechjournals.com/article_abstract.php? aid = 2121 & iid = 75 & jid = 3

    Dhont, J., Dierckens K., Stttrup, J., Van Stappen, G., Wille, M., & Sorgeloos, P. (2013). Коловратки, артемии и веслоногие рачки как живой корм для личинок рыб в аквакультуре — В: Аллен Г. (Ред.). Достижения в аквакультуре. № 242, 157-202. https://doi.org/ 10.1533 / 9780857097460.1.157

    Enache, I., Кристя, В., Ионеску, Т., и Ион, С. (2011). Влияние плотности посадки на рост карпа Cyprinus carpio в системе оборотной аквакультуры. Аквакультура, аквариум, охрана природы и законодательство, Международный журнал Общества биофлюкс, 4, 146-153. Https://www.researchgate.net/publication/289255941

    ФАО (2016). Состояние мирового рыболовства и аквакультуры (способствует продовольственной безопасности и питанию для всех). Рим, Италия, 200 с. Http: // www.fao.org/3/a-i5555e.pdf

    ФАО (2020 г.). Состояние мирового рыболовства и аквакультуры. Устойчивость в действии. Рим, 206pp. Https://doi.org/10.4060/ca9229en

    Гуллиан-Кланиан, М., и Арамбуру-Адаме, К. (2013). Продуктивность сеголетков нильской тилапии Oreochromis niloticus в сверхинтенсивной рециркуляционной системе аквакультуры с низким водообменом. Латиноамериканский журнал водных исследований, 41, 150–162. http://dx.doi.org/103856/vol41-issue1-fulltext-12

    Хак, М.З., Рахмам, М.А., Хоссейн, М.М., и Рахмам, М.А. (1994). Влияние плотности посадки на рост и выживаемость зеркального карпа Cyprinus carpio var. specularis в прудах для выращивания. Бангладешский журнал зоологии, 22, 109-116. Цитируется по Чакраборти, Б. К. (2017).

    Хоссейн, М. И., Ара, Дж., Камаль, Б. М. М., Тумпа, А. С., и Хоссейн, М. Ю. (2014). Влияние плотности посадки молоди на рост, выживаемость и продукцию Hypophthalmichthys molitrix, Cyprinus carpio var.specularis и Labeo rohita в земляных прудах на рыбной ферме Наторе, Наторе, Бангладеш. Международный журнал рыболовства и водных исследований, 2, 106-112. http://www.fisheriesjournal.com/vol2issue1/Pdf/172.1.pdf

    Ирвин С., Халлоран Дж. О. и Фитц-Джеральд Р. Д. (1999). Плотность посадки, рост и изменение роста молоди камбалы Scophthalmus maximus (Rafinesque). Аквакультура, 178, 77-88. http://dx.doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00122-2

    Джафарян, Г., Мехди Таати, М., и Джафарзаде, М. (2011). Улучшение параметров роста личинок карпа (Cyprinus carpio) с использованием пробиотиков в аквариумах и кормлении различными науплиями артемии. Аквакультура, аквариум, охрана природы и законодательство, Международный журнал Общества биофлюкс, 4, 511-518. http://www.bioflux.com.ro/docs/2011.4.511-518.pdf

    Кинг, Н. Дж., Хауэлл, В. Х., Хубер, М., Бенгтсон, Д. А. (2007). Влияние плотности посадки личинок на производство летней камбалы Paraliehthys dentatus в лабораторных и промышленных масштабах.Журнал Всемирного общества аквакультуры, 31, 436-445. https://doi.org/10.1111/J.1749-7345.2000.TB00893.X

    Колковски, С. (2001). Пищеварительные ферменты у личинок и молоди рыб. Значение и применение в составленных диетах. Аквакультура, 200, 181-201. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(01)00700-1

    Лайс-Каррион, Р., Саньяо-Альвареллос, С., Гусман, Дж. М., Мартин дель Рио, М. П., Соенгас, Дж. Л., и Мансера, Дж. М. (2005). Показатели роста морского леща Sparus aurata в различных осмотических условиях: влияние на осморегуляцию и энергетический обмен.Аквакультура, 250, 849-861. DOI: 10.1016 / j.aquaculture.2005.05.021

    Лопиз, Дж. К., Коуэн, Р. К., Хауфф, М. Дж., Джи, Р., Мандей, П. Л., Мюлинг, Б. А. Пек, Д. Э., Согард, Р. С., Спонаугл, С. (2014). История раннего периода жизни и океанография рыболовства: новые вопросы в меняющемся мире. Океанография, 27, 26–41. https://doi.org/10.5670/oceanog.2014.84

    Мартинс, К. И. М., Эдинг, Э. Х., Шнайдер, О., Расмуссен, Р., Олесен, Б., Плеснер, Л., и Веррет, Дж.А. Дж. (2005). Системы рециркуляции аквакультуры в Европе. Остенде, Бельгия, Рабочая группа по консенсусу, Европейское общество аквакультуры, 31 стр. [Цитировано Альфа-Купи (2012). Экономический анализ использования рециркуляционных систем аквакультуры в производстве тилапии, M. Sc. Диссертация, Норвежский университет естественных наук, 52 стр. http://hdl.handle.net/11250/186092]

    Мартинс, К. И. М., Эдинг, Э. Х., Вердегем, М. К. Дж., Хайнсбрук, Л. Т. Н., Шнайдер, О., Бланшетон, Дж. П., Рок д’Орбкастель, Э., Веррет, Дж. А. Дж. (2010). Новые разработки в системах рециркуляции аквакультуры в Европе: взгляд на экологическую устойчивость. Инженерия аквакультуры, 43, 83-93. https://archimer.ifremer.fr/doc/00021/13190/10273.pdf

    Мокану, М. К., Вангели, Т., Санду, П. Г., Дедиу, Л., и Опреа, Л. (2015). Влияние качества дополнительных кормов на показатели роста и продуктивность карпа (Cyprinus carpio L.) в летнем возрасте в системах прудовой аквакультуры.Аквакультура, аквариум, охрана природы и законодательство, Международный журнал Общества биофлюкс, 8, 602-610. http://www.bioflux.com.ro/docs/2015.602-610.pdf.

    Nyadjeu, P., Djopnang, J. D., Mbatchou, P. N., Tabi-Tomedi, M. E., & Tchoumbougnang, F. (2018). Влияние замены рыбной муки мукой из лимской фасоли на рост и использование корма мальков карпа Cyprinus carpio. Международный журнал биологических и химических наук, 12, 812-821. https://doi.org/10.4314 / ijbcs.v12i2.16

    Опря, Л., Мокану, М. К., Вангели, Т., Санду, П. Г., и Дедиу, Л. (2015). Влияние плотности посадки на показатели роста, потребление корма и продуктивность карпа Cyprinus carpio L. в летнем возрасте в системах прудовой аквакультуры. Аквакультура, аквариум, охрана природы и законодательство, Международный журнал Общества биофлюкс, 8, 632-639. http://www.bioflux.com.ro/docs/2015.632-639.pdf

    Писка, р.С., и Найк, С. Дж. К. (2013). Введение в пресноводную аквакультуру. Среднее профессиональное образование Государственный институт профессионального образования и Совет среднего образования: 1-12. В Писке, Р. С. (Ред.). Пресноводная аквакультура. Кафедра зоологии, Университетский колледж наук, Университет Османии, 305 стр.

    Роулинсон П. и Форстер А. (2001). Экономика рециркуляционной аквакультуры. Рыболовство Виктория. Департамент природных ресурсов и окружающей среды. Австралия.URL: http://oregonstate.edu/dept/IIFET/2000/papers/rawlinson.pdf.

    Рённестад И., Торсен А. и Финн Р. Н. (1999). Питание личинок рыб: обзор последних достижений в изучении роли аминокислот. Аквакультура, 177, 201-216. https://doi.org/10.1016/S0044-8486(99)00082-4

    Румпа Р. Дж., Хак М. М., Алам М. М. и Рахаматулла С. М. (2016). Рост и продуктивность карпа в затененном пруду в Барисале, Бангладеш. Журнал Сельскохозяйственного университета Бангладеш, 14, 235-241.https://www.banglajol.info/index.php/JBAU/article/view/32699

    Шнайдер, О., Бланшетон, Дж. П., Варади, Л., Эдинг, Э. Х., и Веррет, Дж. А. Дж. (2006). Себестоимость и производственные стратегии в европейских системах рециркуляции. Объединяя традиции и высочайшее качество технологий для потребителей, Флоренция, Италия, WAS. (цитируется Мартинсом и др., 2010 г.).

    Шингаре П. Э., Савант Н. Х., Бхосале Б. П. и Белсаре С. С. (2006). Исследования роста и выживаемости мальков Cyprinus carpio до продвинутых сеголетков в прудах с дождевым питанием.Журнал Индийского общества прибрежных сельскохозяйственных исследований, 24, 258-260. https://2a737df0-e8bf-4830-a8c2-8b590efe84ee.filesusr.com/ugd/c3cacb_36314c5a5441430c9210792ac22bcb30.pdf?index=true

    Стикни Р. Р. (2000). Энциклопедия аквакультуры. John Wiley & Sons, Inc., Нью-Йорк, 1088pp. https://www.wiley.com/en-us/Encyclopedia+of+Aquaculture-p-97804712.

    Тахер, М. М., и Аль-Дубакель, А. Ю. (2020). Показатели роста карпа обыкновенного (Cyprinus carpio) в земляных прудах в провинции Басра, Ирак, при использовании различной плотности посадки.Биологические и прикладные исследования окружающей среды, 4, 71-79. http://www.baerj.com/3(2)/Taher%20&%20Al-Dubakel%204%20(1),%2071-79,%202020.pdf

    Тахер, М. М., Аль-Дубакель, А. Ю., и Мухаммед, С. Дж. (2018). Параметры роста карпа обыкновенного Cyprinus carpio, выращиваемого в полузакрытой системе. Basrah Journal of Agriculture Scinces, 31, 40-47. https://doi.org/10.37077/25200860.2018.74

    Тахер, М., М., Хаммади, Н., С., Анкуш, М. А. Т., Аль-Дубакель, А., Y., & Maytham, A.A. (2021). Взаимосвязь встречаемости зоопланктона и раннего роста карпа в земляных прудах. Индийский журнал «Экология», 48, в печати.

    Усанди, Б., Оджа, С. М. Л. и Джайн, Х. К. (2019). Влияние плотности выращивания личинок на рост и выживаемость карпа кои, Cyprinus carpio. Журнал энтомологии и зоологических исследований, 7, 548-553. https://www.researchgate.net/publication/332013957

    Zachritz, W.H., Hanson, A.T., Соседа, Дж. А., & Фитцсиммонс, К. М. (2008). Оценка водно-болотных угодий, построенных с использованием затопленных поверхностных потоков (SSF), для рециркуляции систем производства тилапии. Инженерия аквакультуры, 39, 16-23. https://doi.org/10.1016/j.aquaeng.2008.05.001

    Зарски, Д., Катажина, Таргонска, К., Крейшефф, С., Квятковски, М., Купрен, К., и Кухарчик, Д. (2011). Влияние плотности посадки и типа корма на выращивание карася, личинок Carassius carassius (L.) в контролируемых условиях.Aquaculture International, 19, 1105-1117. https://doi.org/10.1007/s10499-011-9427-y

    Зарски, Д., Кухарчик, Д., Квятковски, М., Таргонска, К., Купрен, К., Крейшефф, С., Ямроз, М., Хакуч-Блазовска, А., Куява, Р., и Мамкарц , А. (2008). Влияние плотности посадки на рост и выживаемость личинок жереха Aspius aspius (L.) и голавля Leuciscus cephalus (L.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.