По производству: «Яндекс», «Ланит» и ВТБ начали строить в России завод по производству серверов

Содержание

404

Looking for something at International Paper?
The page you requested was not found. You may have used an outdated link or typed the address incorrectly. 
Please use the search functionality or main navigation — or you may find what you are looking for in one of the following areas: 
http://www.internationalpaper.com
http://www.internationalpaper.com/site-map

For Order IP Login, http://www.internationalpaper.com/products/orderip

 

您在找什么?
 您想浏览页面的不存在。可能这个链接已经过期或您输入的地址不正确。
请尝试在以下内容里查找:
http://www.internationalpaper.com/zh-cn/home
http://www.internationalpaper.com/zh-cn/site-map

¿Busca algo en International Paper?
La página que Ud. solicitó no ha sido encontrada.  Tal vez haya hecho click en un link desactualizado o escrito una dirección incorrecta.
Tal vez pueda encontrar lo que busca en una de las siguientes áreas: 
http://www.internationalpaper.com/es/home

http://www.internationalpaper.com/es/site-map
 
Procurando algo na International Paper?
A página que você solicitou não foi encontrada. Talvez você tenha clicado em um link desatualizado ou digitado um endereço incorreto.
Talvez você possa encontrar o que procura em uma das seguintes áreas: 

http://www.internationalpaper.com/pt/home
http://www.internationalpaper.com/pt/site-map
 
International Paper’da bir şey mi arıyorsunuz?
Aradığınız sayfa bulunamadı. Eski bir link kullanmış veya adresi yanlış yazmış olabilirsiniz. 
Aradığınızı aşağıdaki alanlardan birinde bulabilirsiniz:
http://www.internationalpaper.com/tr/home
http://www.internationalpaper.com/tr/site-map
 
Szukacie Państwo czegoś na stronie International Paper?
Nie można odnaleźć żądanej strony. Link może być nieaktualny lub adres został wpisany niepoprawnie.
Poszukiwane informacje mogą być dostępne w jednym z następujących miejsc: 
http://www.internationalpaper.com/pl/home
http://www.internationalpaper.com/pl/site-map

Vous cherchez quelque chose sur le site International Paper
La page demandée n’a pas été trouvée. Vous avez peut-être utilisé un lien périmé ou avez mal entré l’adresse. 
Vous pourrez trouver ce que vous cherchez dans l’une des sections suivantes: 
http://www.internationalpaper.com/fr/home
http://www.internationalpaper.com/fr/site-map

Sie suchen etwas Bestimmtes bei International Paper?
Die gewünschte Seite konnte leider nicht gefunden werden. Möglicherweise ist der Link nicht mehr gültig oder die eingegebene Adresse inkorrekt. 
Die gewünschten Informationen sind jedoch eventuell in einem der folgenden Bereiche zu finden: 
http://www.internationalpaper.com/de/home
http://www.internationalpaper.com/de/site-map
 
¿Está buscando algo en International Paper?
La página que solicitó no está disponible. Puede que haya usado un enlace que ya no es válido o que no haya escrito la dirección correctamente.
Es posible que encuentre lo que busca en una de estas secciones: 

http://www.internationalpaper.com/es-419/home
http://www.internationalpaper.com/es-419/site-map
 
State cercando qualcosa sul sito d’International Paper?
La pagina richiesta non è stata trovata. È possibile che abbiate utilizzato un collegamento obsoleto o digitato erroneamente l’indirizzo. 
Potreste trovare ciò che cercate in una delle aree seguenti:
http://www.internationalpaper.com/it/home
http://www.internationalpaper.com/it/site-map
 
Ищете что-то на веб-сайте International Paper?
Запрошенная вами страница не найдена. Возможно, вы воспользовались устаревшей ссылкой или неправильно ввели адрес. 
Может быть, вам удастся найти требуемые материалы в одном из следующих разделов: 
http://www.internationalpaper.com/ru/home
http://www.internationalpaper.com/ru/site-map

TSMC построит завод по производству чипов для решения проблем их дефицита :: Новости :: РБК Инвестиции

Фото: Shutterstock

Крупнейший производитель полупроводников Taiwan Semiconductor Manufacturing планирует построить передовой завод по производству чипов на юге Тайваня. Об этом сообщает Nikkei Asia.

Строительство предусмотрено в рамках расширения TSMC на $100 млрд для решения проблем растущего дефицита микросхем в мире. Предприятие будет расположено на юге Тайваня, в Гаосюне, и сосредоточено на производстве 7- и 6-нанометровых чипов.

Больше новостей об инвестициях вы найдете в нашем аккаунте в Instagram

Автор

Наталья Колотович

Завод по производству и переработке полиэтилена низкого давления

Директор —

МУЗАФАРОВ РУСТЕМ РАФИКОВИЧ 

Удельный вес завода в продукции ПАО“Казаньоргсинтез”

54,6%

Численность работающих на заводе

861

Завод по производству и переработке полиэтилена низкого давления (ПППНД) состоит из трех производств:

Производство полиэтилена

Получение полиэтилена осуществляется (со)полимеризацией этилена газофазным методом по технологии Unipol с применением катализаторов.

Завод производит различные марки полиэтилена:
— полиэтилен высокой плотности;
— бимодальный полиэтилен высокой плотности;
— полиэтилен средней плотности;
— линейный полиэтилен низкой плотности;
— металлоценовый линейный полиэтилен низкой плотности. 

Выпускаемые продукты предназначены для переработки методом экструзии выдувного, ротационного и литьевого формования, производства пленочных материалов, напорных труб для газо- и водоснабжения.

Производство пластмассовых изделий

В качестве сырья использует ПЭНД и ПЭ100. Производит полиэтиленовые труб, и соединительные детали для газо- и водоснабжения.

Производство труб из полиэтилена осуществляется методом экструзии, детали к ним изготавливают методами литья под давлением, прессования, намотки и сварки.

Полиэтиленовые трубы широко применяются в системах газоснабжения, водоснабжения, канализации, системах технологических трубопроводов. Производство полиэтиленовых труб и соединительных деталей входит в тройку ведущих в России.

Производство сомономеров

В качестве сырья используется этилен. Конечная продукция-бутен-1, получаемый димеризацией этилена. Бутен-1 находит применение в качестве сомономера-модификатора для производства ПНД высокой, средней плотности, линейного полиэтилена низкой плотности.

КАТАЛОГ ПРОДУКЦИИ

Реестр лицензий на осуществление деятельности по производству и реализации защищенной от подделок полиграфической продукции | ФНС России

Характеристика Значение характеристики
1 Идентификационный номер 7707329152-reestrlicpoligraph
2 Наименование набора данных Реестр лицензий на осуществление деятельности по производству и реализации защищенной от подделок полиграфической продукции
3 Описание набора данных Реестр лицензий на осуществление деятельности по производству и реализации защищенной от подделок полиграфической продукции
4 Владелец набора данных ФНС России
5 Ответственное лицо Пчелинцев Валентин Сергеевич (советник отдела лицензирования и контроля в сфере госрегулируемых видов деятельности Контрольного управления)
6 Телефон ответственного лица +7 (495) 913-03-55
7 Адрес электронной почты ответственного лица [email protected]
8 Гиперссылка (URL) на набор https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20201209-structure-20160308.xml
9 Формат данных xml
10 Описание структуры набора данных https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/structure-03082016.xsd
11 Дата первой публикации набора данных 01.12.2012
12 Дата последнего внесения изменений 10.12.2020
13 Содержание последнего изменения Обновление набора данных
14 Дата актуальности 01.09.2021
15 Ключевые слова, соответствующие содержанию набора данных реестр, лицензия, подделки, полиграфия, продукция, бланки, ценные бумаги, торговля
16 Гиперссылки (URL) на предыдущие релизы набора данных https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20201118-structure-20160308.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20200826-structure-20160308.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20200818-structure-20160318.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20181105-structure-20160308.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20180913-structure-20160308.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20180817-structure-20160308.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20171215-structure-20160308.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20160623-structure-20160308.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20160803-structure-20160803.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20140415-structure-20140415.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20140302-structure-20140302.xml
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/data-20140415-structure-20140415.xml
17 Гиперссылки (URL) на предыдущие версии структуры набора данных https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/structure-20140415.xsd
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/structure-20140302.csv
https://data.nalog.ru/opendata/7707329152-reestrlicpoligraph/structure-20160803.xsd
18 Версия методических рекомендаций 3.0

Комплекс по производству сухих хвостов

Обзор технологии

Комплекс Outotec по производству сухих хвостов состоит из сгущения, фильтрации и транспортировки сухого материала.  Сгуститель обезвоживает хвосты с очень низкой плотности твердого до средней и высокой плотности. Например, с 5% твердого по массе примерно до 65-70% твердого по массе для железорудных хвостов. Затем сгущенные хвосты в виде пульпы перекачиваются на фильтровальную установку, в которой пульпа сгущенных хвостов обезвоживается до фильтр-кека путем фильтрации прессованием. Среднее влагосодержание хвостов после фильтрации составляет около 10 — 20%. Отфильтрованные хвосты разгружаются из пресс-фильтров и передаются наземными конвейерами на хвостохранилище. Окончательное распределение хвостов по хвостохранилищу осуществляется при помощи системы отвальных конвейеров, которая, как правило, состоит из передвижных транспортных конвейеров и мобильного укладчика.

Возможности Outotec по проведению опытов на сухих хвостах

С целью расширения объема поставок технологий и услуг и разработки надежных методов укладки хвостов необходимо понять сам материал. Эта информация важна для оптимизации процесса уплотнения, контролирования процесса заполнения, дренажа стога хвостов и планирования его геометрии, а также контроля стабильности стога хвостов в ходе его жизненного цикла. Основные преимущества заключаются в эффективности управления всем объемом массы и более точном управлении рисками в ходе эксплуатации и техобслуживания. Это особенно заметно при учете стабильности материала.

Outotec может провести комплексные опыты по производству сухих хвостов, включая сгущение, фильтрацию и определение механических свойств почвы, включая полный физический, химический и минералогический анализ. Мы предлагаем весь спектр услуг, от комплексного аудита управления хвостами на вашем предприятии, инжиниринга и детального инжиниринга, до услуг по техобслуживанию и дистанционной эксплуатации.

Оценка методов транспортировки

Система транспортировки материалов должна соответствовать требованиям рудника и обогатительной фабрики по вариабельности хвостов, производительности, логистике по вскрыше/пустой породе/руде и производственным целям в течение всего срока эксплуатации. На небольших и средних рудниках, как правило, используются самосвалы или специальные автомобили для рудников, фронтальные погрузчики, уплотнители и экскаваторы для транспортировки и укладки хвостов, особенно, если их можно интегрировать в схему транспортировки руды и породы на площадке путем обратной погрузки. Эксплуатационные затраты, связанные с такими вариантами, зависят от затрат на топливо и мировых цен на нефть.

В качестве альтернативы, транспортировку хвостового материала можно осуществлять ленточными конвейерами и распределительными системами на хвостохранилище. Как правило, конвейерные системы требуют более высоких начальных капиталовложений от собственника рудника, но при этом обеспечивают значительные преимущества по сравнению с грузовым транспортом для больших хвостохранилищ, и в случае значительного расстояния до хвостохранилища. Такие варианты также существенно снижают общую стоимость владения в течение всего срока отработки рудника. Outotec может предложить широкий спектр систем грузовых автомобилей для погрузки, конвейеров и мобильных укладчиков. Критерии оценки и выбора системных решений зависят от производительности, расстояния, топологии, размера хвостохранилища и т.д.

Хвостохранилище

При проектировании решения для управления хвостами необходимо всегда начинать с хвостохранилища. Процесс проектирования хвостохранилища начинается с комплексной оценки и полного понимания окружающей среды и площадки (геология, геотехника, гидрология, гидрогеология и гидрохимия) с целью определения исходных данных и экстремальных условий для проектирования, а также с оценки влияния на окружающую среду.

Завод по производству водорода на Сахалине планируют построить к 2024 году — Дальний Восток |

2 сентября. Interfax-Russia.ru — Завод по производству водорода на Сахалине планируют построить к 2024 году, в 2025 году — начать первые экспортные поставки этого вида топлива, разработку ТЭО проекта завершат в текущем году, сообщил вице-президент АО «Русатом Оверсиз» Антон Москвин.

«Мы планируем построить на Сахалине крупнотоннажное производство водорода. С производством на первой фазе порядка 30 тыс. тонн в год, в последующем к 2030 году — до 100 тыс. тонн. Планируем выйти на производство — к 2024 году, первые объемы планируем поставлять на экспорт в 2025 году», — рассказал он в четверг на Восточном экономическом форуме на сессии «Презентация прорывных проектов Дальнего Востока».

ПредТЭО проекта уже готово, «выйти на завершение технико-экономического обоснования проекта планируем в конце текущего года и в дальнейшем развивать проект».

Губернатор региона Валерий Лимаренко, участвовавший в работе этой сессии, сообщил, что в реализации проекта строительства завода по крупнотоннажному производству водорода участвует «Росатом» и компания Air Liquide. По его словам, планируется подписание соглашения с «Газпромом» о выделении метана в качестве ресурсной базы для реализации первого этапа проекта — производства 30 тыс. тонн водорода в год. Первую партию водорода, по данным губернатора, собираются поставить в Японию.

Лимаренко добавил, что так как «водород — летучий материал, который невозможно передать по трубе или закачать в баллон, обсуждается идея смешивать с азотом и передавать покупателю в виде аммиака, так как это сделать легче». Но как будет в итоге, по его словам, — покажет ТЭО. Региональная власть займется подбором площадки под строительство будущего завода и терминала для отгрузки водорода или аммиака.

Москвин в свою очередь сообщил, что переговоры по экспорту водорода ведутся сейчас «с японскими и корейскими заказчиками».

«Сейчас нет технологий, которые позволяют водород в таких объемах поставлять. Поэтому мы задумываемся о поставках в виде аммиака», — заявил Москвин.

% PDF-1.3 % 875 0 объект> эндобдж xref 875 1115 0000000016 00000 н. 0000030491 00000 п. 0000030695 00000 п. 0000022596 00000 п. 0000030738 00000 п. 0000030936 00000 п. 0000041647 00000 п. 0000041694 00000 п. 0000041741 00000 п. 0000041789 00000 п. 0000041837 00000 п. 0000041885 00000 п. 0000041932 00000 п. 0000041979 00000 п. 0000042026 00000 п. 0000042073 00000 п. 0000042120 00000 н. 0000042167 00000 п. 0000042215 00000 п. 0000042262 00000 п. 0000042309 00000 п. 0000042357 00000 п. 0000042405 00000 п. 0000042452 00000 п. 0000042499 00000 п. 0000042546 00000 п. 0000042594 00000 п. 0000042641 00000 п. 0000042688 00000 п. 0000042736 00000 н. 0000042784 00000 п. 0000042832 00000 п. 0000042880 00000 п. 0000042927 00000 п. 0000042974 00000 п. 0000043021 00000 п. 0000043068 00000 п. 0000043116 00000 п. 0000043164 00000 п. 0000043212 00000 п. 0000043259 00000 п. 0000043307 00000 п. 0000043355 00000 п. 0000043403 00000 п. 0000043450 00000 п. 0000043498 00000 п. 0000043546 00000 п. 0000043594 00000 п. 0000043642 00000 п. 0000043690 00000 н. 0000043738 00000 п. 0000043785 00000 п. 0000043832 00000 п. 0000043879 00000 п. 0000043927 00000 н. 0000043975 00000 п. 0000044023 00000 п. 0000044071 00000 п. 0000044119 00000 п. 0000044167 00000 п. 0000044215 00000 п. 0000044263 00000 п. 0000044311 00000 п. 0000044358 00000 п. 0000044405 00000 п. 0000044452 00000 п. 0000044499 00000 н. 0000044547 00000 п. 0000044595 00000 п. 0000044643 00000 п. 0000044690 00000 н. 0000044737 00000 п. 0000044784 00000 п. 0000044831 00000 н. 0000044878 00000 п. 0000044925 00000 п. 0000044973 00000 п. 0000045021 00000 п. 0000045069 00000 п. 0000045117 00000 п. 0000045165 00000 п. 0000045213 00000 п. 0000045261 00000 п. 0000045308 00000 п. 0000045355 00000 п. 0000045402 00000 п. 0000045450 00000 п. 0000045498 00000 п. 0000045546 00000 п. 0000045594 00000 п. 0000045642 00000 п. 0000045689 00000 п. 0000045736 00000 п. 0000045783 00000 п. 0000045830 00000 п. 0000045877 00000 п. 0000045925 00000 п. 0000045973 00000 п. 0000046021 00000 п. 0000046068 00000 п. 0000046115 00000 п. 0000046162 00000 п. 0000046210 00000 п. 0000046257 00000 п. 0000046304 00000 п. 0000046351 00000 п. 0000046399 00000 н. 0000046446 00000 н. 0000046493 00000 п. 0000046540 00000 п. 0000046587 00000 п. 0000046634 00000 п. 0000046682 00000 п. 0000046729 00000 п. 0000046776 00000 п. 0000046824 00000 п. 0000046872 00000 п. 0000046920 00000 н. 0000046967 00000 п. 0000047014 00000 п. 0000047061 00000 п. 0000047108 00000 п. 0000047155 00000 п. 0000047202 00000 п. 0000047250 00000 п. 0000047298 00000 н. 0000047347 00000 п. 0000047396 00000 п. 0000047445 00000 п. 0000047493 00000 п. 0000047541 00000 п. 0000047590 00000 п. 0000047639 00000 п. 0000047688 00000 п. 0000047737 00000 п. 0000047786 00000 п. 0000047834 00000 п. 0000047882 00000 п. 0000047930 00000 п. 0000047979 00000 п. 0000048028 00000 п. 0000048077 00000 п. 0000048126 00000 п. 0000048175 00000 п. 0000048224 00000 н. 0000048273 00000 н. 0000048321 00000 п. 0000048370 00000 п. 0000048419 00000 п. 0000048467 00000 н. 0000048515 00000 н. 0000048563 00000 н. 0000048612 00000 н. 0000048661 00000 п. 0000048709 00000 п. 0000048758 00000 п. 0000048807 00000 п. 0000048856 00000 п. 0000048905 00000 н. 0000048953 00000 п. 0000049001 00000 п. 0000049049 00000 н. 0000049097 00000 н. 0000049146 00000 п. 0000049195 00000 п. 0000049243 00000 п. 0000049291 00000 п. 0000049339 00000 п. 0000049387 00000 п. 0000049435 00000 п. 0000049483 00000 п. 0000049531 00000 п. 0000049580 00000 п. 0000049629 00000 п. 0000049677 00000 п. 0000049725 00000 п. 0000049773 00000 п. 0000049821 00000 п. 0000049869 00000 п. 0000049918 00000 н. 0000049966 00000 н. 0000050014 00000 п. 0000050062 00000 п. 0000050110 00000 п. 0000050159 00000 п. 0000050207 00000 п. 0000050255 00000 п. 0000050304 00000 п. 0000050353 00000 п. 0000050401 00000 п. 0000050450 00000 п. 0000050499 00000 п. 0000050547 00000 п. 0000050595 00000 п. 0000050643 00000 п. 0000050691 00000 п. 0000050740 00000 п. 0000050788 00000 п. 0000050837 00000 п. 0000050885 00000 п. 0000050933 00000 п. 0000050982 00000 п. 0000051030 00000 п. 0000051079 00000 п. 0000051128 00000 п. 0000051177 00000 п. 0000051226 00000 п. 0000051274 00000 п. 0000051322 00000 п. 0000051371 00000 п. 0000051419 00000 п. 0000051467 00000 п. 0000051516 00000 п. 0000051564 00000 п. 0000051617 00000 п. 0000051655 00000 п. 0000051732 00000 п. 0000051780 00000 п. 0000051828 00000 п. 0000051877 00000 п. 0000051925 00000 п. 0000051973 00000 п. 0000052022 00000 н. 0000052070 00000 п. 0000052118 00000 п. 0000052166 00000 п. 0000052214 00000 п. 0000052263 00000 п. 0000052311 00000 п. 0000052359 00000 п. 0000052408 00000 п. 0000052456 00000 п. 0000052504 00000 п. 0000052552 00000 п. 0000052600 00000 п. 0000052648 00000 п. 0000052696 00000 п. 0000052744 00000 п. 0000052792 00000 п. 0000052841 00000 п. 0000052890 00000 п. 0000052939 00000 п. 0000052987 00000 п. 0000053036 00000 п. 0000053084 00000 п. 0000053133 00000 п. 0000053182 00000 п. 0000053231 00000 п. 0000053280 00000 п. 0000053328 00000 п. 0000053376 00000 п. 0000053424 00000 п. 0000053473 00000 п. 0000053522 00000 п. 0000053571 00000 п. 0000053619 00000 п. 0000053668 00000 п. 0000053717 00000 п. 0000053766 00000 п. 0000053815 00000 п. 0000053864 00000 п. 0000053913 00000 п. 0000053962 00000 п. 0000054011 00000 п. 0000054060 00000 п. 0000054109 00000 п. 0000054158 00000 п. 0000054207 00000 п. 0000054256 00000 п. 0000054305 00000 п. 0000054353 00000 п. 0000054402 00000 п. 0000054451 00000 п. 0000054500 00000 п. 0000054548 00000 п. 0000054596 00000 п. 0000054644 00000 п. 0000054692 00000 п. 0000054741 00000 п. 0000054790 00000 п. 0000054839 00000 п. 0000054887 00000 п. 0000054935 00000 п. 0000054984 00000 п. 0000055033 00000 п. 0000055081 00000 п. 0000055130 00000 п. 0000055179 00000 п. 0000055228 00000 п. 0000055277 00000 п. 0000055326 00000 п. 0000055375 00000 п. 0000055424 00000 п. 0000055473 00000 п. 0000055522 00000 п. 0000055571 00000 п. 0000055620 00000 п. 0000055669 00000 п. 0000055718 00000 п. 0000055767 00000 п. 0000055816 00000 п. 0000055865 00000 п. 0000055914 00000 п. 0000055963 00000 п. 0000056012 00000 п. 0000056060 00000 п. 0000056108 00000 п. 0000056156 00000 п. 0000056204 00000 п. 0000056252 00000 п. 0000056300 00000 п. 0000056348 00000 п. 0000067503 00000 п. 0000078706 00000 п. 0000078781 00000 п. 0000078853 00000 п. 0000078908 00000 п. 0000094737 00000 п. 0000113281 00000 н. 0000125337 00000 н. 0000136392 00000 н. 0000136792 00000 н. 0000137018 00000 п. 0000137096 00000 н. 0000140317 00000 н. 0000140636 00000 н. 0000141187 00000 н. 0000141722 00000 н. 0000153090 00000 н. 0000163952 00000 н. 0000169583 00000 н. 0000170540 00000 н. 0000173211 00000 н. 0000173263 00000 н. 0000173318 00000 н. 0000173383 00000 н. 0000173440 00000 н. 0000173499 00000 н. 0000173574 00000 н. 0000173670 00000 н. 0000173755 00000 н. 0000173850 00000 н. 0000173911 00000 н. 0000173974 00000 н. 0000174032 00000 н. 0000174094 00000 н. 0000174179 00000 н. 0000174238 00000 н. 0000174294 00000 н. 0000174350 00000 н. 0000174407 00000 н. 0000174464 00000 н. 0000174563 00000 н. 0000174618 00000 н. 0000174672 00000 н. 0000174747 00000 н. 0000174808 00000 н. 0000174867 00000 н. 0000174925 00000 н. 0000174983 00000 н. 0000175076 00000 н. 0000175128 00000 н. 0000175186 00000 н. 0000175257 00000 н. 0000175314 00000 н. 0000175369 00000 н. 0000175425 00000 н. 0000175479 00000 н. 0000175535 00000 н. 0000175591 00000 н. 0000175646 00000 н. 0000175729 00000 н. 0000175814 00000 н. 0000175870 00000 н. 0000175925 00000 н. 0000175981 00000 н. 0000176036 00000 н. 0000176092 00000 н. 0000176145 00000 н. 0000176199 00000 н. 0000176288 00000 н. 0000176366 00000 н. 0000176422 00000 н. 0000176478 00000 н. 0000176533 00000 н. 0000176588 00000 н. 0000176676 00000 н. 0000176729 00000 н. 0000176783 00000 н. 0000176841 00000 н. 0000176903 00000 н. 0000176966 00000 н. 0000177063 00000 н. 0000177121 00000 н. 0000177222 00000 н. 0000177317 00000 н. 0000177373 00000 н. 0000177431 00000 н. 0000177501 00000 н. 0000177557 00000 н. 0000177615 00000 н. 0000177671 00000 н. 0000177729 00000 н. 0000177798 00000 н. 0000177883 00000 н. 0000177980 00000 н. 0000178085 00000 н. 0000178187 00000 н. 0000178284 00000 н. 0000178395 00000 н. 0000178482 00000 н. 0000178541 00000 н. 0000178610 00000 н. 0000178682 00000 н. 0000178734 00000 н. 0000178787 00000 н. 0000178850 00000 н. 0000178956 00000 н. 0000179024 00000 н. 0000179081 00000 н. 0000179139 00000 н. 0000179198 00000 н. 0000179257 00000 н. 0000179314 00000 н. 0000179373 00000 н. 0000179432 00000 н. 0000179488 00000 н. 0000179545 00000 н. 0000179602 00000 н. 0000179659 00000 н. 0000179764 00000 н. 0000179877 00000 н. 0000179998 00000 н. 0000180123 00000 н. 0000180220 00000 н. 0000180330 00000 н. 0000180434 00000 н. 0000180499 00000 н. 0000180564 00000 н. 0000180628 00000 н. 0000180692 00000 н. 0000180756 00000 н. 0000180820 00000 н. 0000180885 00000 н. 0000180948 00000 н. 0000181010 00000 н. 0000181068 00000 н. 0000181123 00000 н. 0000181231 00000 н. 0000181353 00000 н. 0000181433 00000 н. 0000181496 00000 н. 0000181558 00000 н. 0000181621 00000 н. 0000181679 00000 н. 0000181753 00000 н. 0000181859 00000 н. 0000181981 00000 н. 0000182042 00000 н. 0000182103 00000 п. 0000182161 00000 н. 0000182243 00000 н. 0000182353 00000 п. 0000182417 00000 н. 0000182479 00000 н. 0000182542 00000 н. 0000182607 00000 н. 0000182671 00000 н. 0000182782 00000 н. 0000182893 00000 н. 0000182980 00000 н. 0000183081 00000 н. 0000183196 00000 н. 0000183314 00000 н. 0000183381 00000 н. 0000183446 00000 н. 0000183509 00000 н. 0000183576 00000 н. 0000183640 00000 н. 0000183694 00000 н. 0000183748 00000 н. 0000183848 00000 н. 0000183940 00000 н. 0000184050 00000 н. 0000184164 00000 н. 0000184232 00000 н. 0000184325 00000 н. 0000184420 00000 н. 0000184495 00000 н. 0000184618 00000 н. 0000184672 00000 н. 0000184725 00000 н. 0000184781 00000 н. 0000184900 00000 н. 0000185063 00000 н. 0000185145 00000 н. 0000185251 00000 н. 0000185369 00000 н. 0000185495 00000 н. 0000185580 00000 н. 0000185710 00000 н. 0000185804 00000 н. 0000185888 00000 н. 0000185954 00000 н. 0000186029 00000 н. 0000186111 00000 н. 0000186173 00000 н. 0000186234 00000 н. 0000186295 00000 н. 0000186352 00000 н. 0000186410 00000 н. 0000186468 00000 н. 0000186585 00000 н. 0000186705 00000 н. 0000186770 00000 н. 0000186832 00000 н. 0000186893 00000 н. 0000186951 00000 п. 0000187007 00000 н. 0000187063 00000 н. 0000187119 00000 н. 0000187223 00000 н. 0000187320 00000 н. 0000187382 00000 н. 0000187444 00000 н. 0000187508 00000 н. 0000187567 00000 н. 0000187628 00000 н. 0000187685 00000 н. 0000187743 00000 н. 0000187799 00000 н. 0000187861 00000 н. 0000187929 00000 н. 0000188005 00000 н. 0000188086 00000 н. 0000188147 00000 н. 0000188208 00000 н. 0000188269 00000 н. 0000188367 00000 н. 0000188473 00000 н. 0000188547 00000 н. 0000188605 00000 н. 0000188682 00000 н. 0000188776 00000 н. 0000188845 00000 н. 0000188906 00000 н. 0000188967 00000 н. 0000189025 00000 н. 0000189086 00000 н. 0000189161 00000 н. 0000189284 00000 н. 0000189356 00000 н. 0000189429 00000 н. 0000189483 00000 н. 0000189536 00000 н. 0000189642 00000 н. 0000189804 00000 н. 0000189860 00000 н. 0000189919 00000 н. 0000189978 00000 н. 00001

00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001

00000 н. 00001

00000 н. 00001

00000 н. 00001

00000 н. 00001
  • 00000 н. 00001
  • 00000 н. 00001 00000 н. 00001

    00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001

    00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001

    00000 н. 00001

    00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001

    00000 н. 00001

    00000 н. 00001 00000 н. 00001

    00000 н. 00001

    00000 н. 00001 00000 н. 00001 00000 н. 00001

    00000 н. 0000192592 00000 н. 0000192658 00000 н. 0000192716 00000 н. 0000192778 00000 н. 0000192840 00000 н. 0000192903 00000 н. 0000193005 00000 н. 0000193094 00000 н. 0000193152 00000 н. 0000193210 00000 н. 0000193268 00000 н. 0000193324 00000 н. 0000193383 00000 н. 0000193447 00000 н. 0000193523 00000 н. 0000193597 00000 н. 0000193690 00000 н. 0000193783 00000 н. 0000193845 00000 н. 0000193906 00000 н. 0000193965 00000 н. 0000194024 00000 н. 0000194086 00000 н. 0000194147 00000 н. 0000194230 00000 н. 0000194316 00000 н. 0000194387 00000 н. 0000194446 00000 н. 0000194508 00000 н. 0000194571 00000 н. 0000194630 00000 н. 0000194692 00000 н. 0000194754 00000 н. 0000194815 00000 н. 0000194872 00000 н. 0000194937 00000 н. 0000194999 00000 н. 0000195058 00000 н. 0000195120 00000 н. 0000195183 00000 н. 0000195247 00000 н. 0000195309 00000 н. 0000195473 00000 н. 0000195857 00000 н. 0000198323 00000 н. 0000198586 00000 н. 0000238792 00000 н. 0000455770 00000 н. 0000458100 00000 н. 0000537702 00000 н. 0000537887 00000 н. 0000538072 00000 н. 0000538244 00000 п. 0000538416 00000 н. 0000538604 00000 п. 0000538792 00000 н. 0000538964 00000 н. 0000539136 00000 н. 0000539317 00000 н. 0000539497 00000 н. 0000539669 00000 н. 0000539841 00000 н. 0000540027 00000 н. 0000540213 00000 н. 0000540527 00000 н. 0000540714 00000 н. 0000540888 00000 н. 0000541061 00000 н. 0000541246 00000 н. 0000541420 00000 н. 0000541639 00000 н. 0000541881 00000 н. 0000542125 00000 н. 0000542420 00000 н. 0000542799 00000 н. 0000543114 00000 п. 0000543491 00000 н. 0000543737 00000 н. 0000543961 00000 н. 0000544169 00000 н. 0000544388 00000 н. 0000544622 00000 н. 0000544959 00000 н. 0000545194 00000 н. 0000545400 00000 н. 0000545620 00000 н. 0000545864 00000 н. 0000546101 00000 п. 0000546475 00000 н. 0000546662 00000 н. 0000546847 00000 н. 0000547152 00000 н. 0000547365 00000 н. 0000547575 00000 п. 0000547803 00000 н. 0000548014 00000 н. 0000548239 00000 н. 0000548608 00000 н. 0000548782 00000 н. 0000549012 00000 н. 0000549305 00000 н. 0000549509 00000 н. 0000549708 00000 п. 0000549904 00000 п. 0000550087 00000 н. 0000550294 00000 н. 0000550501 00000 н. 0000550722 00000 н. 0000550954 00000 н. 0000551184 00000 н. 0000551401 00000 п. 0000551632 00000 н. 0000551964 00000 н. 0000552302 00000 н. 0000552538 00000 н. 0000552754 00000 н. 0000552986 00000 н. 0000553217 00000 н. 0000553456 00000 н. 0000553671 00000 п. 0000553889 00000 н. 0000554075 00000 п. 0000554256 00000 н. 0000554450 00000 н. 0000554636 00000 н. 0000554848 00000 н. 0000555222 00000 н. 0000555513 00000 н. 0000555744 00000 н. 0000555958 00000 н. 0000556192 00000 п. 0000556399 00000 н. 0000556615 00000 н. 0000556830 00000 н. 0000557047 00000 н. 0000557366 00000 н. 0000557562 00000 н. 0000557740 00000 н. 0000557932 00000 н. 0000558140 00000 п. 0000558357 00000 н. 0000558585 00000 н. 0000558813 00000 н. 0000559021 00000 н. 0000559229 00000 н. 0000559432 00000 н. 0000559648 00000 н. 0000559822 00000 н. 0000560017 00000 н. 0000560206 00000 н. 0000560476 00000 н. 0000560715 00000 н. 0000560985 00000 п. 0000561358 00000 н. 0000561608 00000 п. 0000562025 00000 н. 0000562428 00000 н. 0000562650 00000 н. 0000562873 00000 п. 0000563099 00000 н. 0000563376 00000 н. 0000563611 00000 н. 0000563859 00000 н. 0000564084 00000 н. 0000564327 00000 н. 0000564583 00000 н. 0000564906 00000 н. 0000565256 00000 н. 0000565622 00000 н. 0000565969 00000 н. 0000566334 00000 п. 0000566743 00000 н. 0000567067 00000 н. 0000567317 00000 н. 0000567569 00000 н. 0000567839 00000 п. 0000568013 00000 н. 0000568271 00000 н. 0000568449 00000 н. 0000568858 00000 п. 0000569107 00000 п. 0000569330 00000 н. 0000569559 00000 п. 0000569770 00000 н. 0000569983 00000 н. 0000570182 00000 п. 0000570396 00000 н. 0000570632 00000 н. 0000570826 00000 н. 0000571028 00000 н. 0000571262 00000 н. 0000571464 00000 н. 0000571696 00000 н. 0000571925 00000 н. 0000572329 00000 н. 0000572751 00000 н. 0000573151 00000 н. 0000573558 00000 н. 0000573915 00000 н. 0000574278 00000 н. 0000574673 00000 н. 0000574944 00000 н. 0000575202 00000 н. 0000575469 00000 н. 0000575738 00000 н. 0000576013 00000 н. 0000576290 00000 н. 0000576558 00000 н. 0000576824 00000 н. 0000577081 00000 н. 0000577337 00000 н. 0000577513 00000 н. 0000577910 00000 н. 0000578119 00000 н. 0000578549 00000 н. 0000578878 00000 н. 0000579142 00000 н. 0000579403 00000 н. 0000579671 00000 н. 0000579913 00000 н. 0000580115 00000 н. 0000580505 00000 н. 0000580824 00000 н. 0000581252 00000 н. 0000581512 00000 н. 0000581781 00000 н. 0000582024 00000 н. 0000582206 00000 н. 0000582553 00000 н. 0000582970 00000 н. 0000583249 00000 н. 0000583521 00000 н. 0000583796 00000 н. 0000584079 00000 п. 0000584343 00000 п. 0000584767 00000 н. 0000585184 00000 н. 0000585491 00000 п. 0000585858 00000 н. 0000586276 00000 н. 0000586705 00000 п. 0000586997 00000 н. 0000587274 00000 н. 0000587544 00000 н. 0000587837 00000 н. 0000588102 00000 п. 0000588370 00000 н. 0000588578 00000 н. 0000588772 00000 н. 0000589149 00000 н. 0000589514 00000 н. 0000589942 00000 н. 00005

    00000 н. 00005

    00000 н. 00005 00000 н. 00005 00000 н. 00005

    00000 н. 00005

    00000 н. 00005 00000 н. 00005

    00000 п. 0000592710 00000 н. 0000593148 00000 н. 0000593612 00000 н. 0000593968 00000 н. 0000594329 00000 н. 0000594769 00000 н. 0000595225 00000 н. 0000595557 00000 н. 0000596008 00000 н. 0000596383 00000 п. 0000596709 00000 н. 0000596987 00000 н. 0000597245 00000 н. 0000597548 00000 н. 0000597804 00000 н. 0000598060 00000 н. 0000598298 00000 н. 0000598513 00000 п. 0000598737 00000 п. 0000598960 00000 п. 0000599193 00000 н. 0000599387 00000 н. 0000599603 00000 н. 0000599818 00000 н. 0000600251 00000 п. 0000600681 00000 п. 0000600908 00000 п. 0000601179 00000 п. 0000601434 00000 н. 0000601689 00000 н. 0000601941 00000 н. 0000602167 00000 н. 0000602390 00000 н. 0000602620 00000 н. 0000602853 00000 н. 0000603065 00000 н. 0000603251 00000 н. 0000603447 00000 н. 0000603844 00000 н. 0000604197 00000 н. 0000604447 00000 н. 0000604720 00000 н. 0000604996 00000 н. 0000605231 00000 п. 0000605464 00000 н. 0000605708 00000 н. 0000605937 00000 н. 0000606170 00000 н. 0000606392 00000 н. 0000606596 00000 н. 0000606890 00000 н. 0000607140 00000 н. 0000607419 00000 п. 0000607723 00000 п. 0000607969 00000 н. 0000608217 00000 н. 0000608457 00000 н. 0000608694 00000 п. 0000608933 00000 н. 0000609130 00000 н. 0000609320 00000 н. 0000609541 00000 н. 0000609924 00000 н. 0000610331 00000 п. 0000610619 00000 п. 0000610837 00000 п. 0000611079 00000 п. 0000611438 00000 н. 0000611809 00000 н. 0000612094 00000 н. 0000612344 00000 п. 0000612611 00000 п. 0000612870 00000 н. 0000613105 00000 п. 0000613340 00000 н. 0000613596 00000 н. 0000613885 00000 н. 0000614320 00000 н. 0000614591 00000 н. 0000614862 00000 н. 0000615076 00000 н. 0000615268 00000 н. 0000615466 00000 н. 0000615878 00000 н. 0000616328 00000 н. 0000616564 00000 н. 0000616805 00000 н. 0000617038 00000 п. 0000617271 00000 н. 0000617523 00000 н. 0000617878 00000 н. 0000618285 00000 н. 0000618537 00000 п. 0000618822 00000 н. 0000619054 00000 н. 0000619267 00000 н. 0000619545 00000 н. 0000619931 00000 н. 0000620243 00000 н. 0000620536 00000 н. 0000620931 00000 н. 0000621177 00000 н. 0000621442 00000 н. 0000621687 00000 н. 0000621950 00000 н. 0000622212 00000 н. 0000622504 00000 н. 0000622778 00000 п. 0000623089 00000 н. 0000623331 00000 н. 0000623723 00000 п. 0000624188 00000 н. 0000624404 00000 н. 0000624647 00000 н. 0000624893 00000 н. 0000625155 00000 н. 0000625565 00000 н. 0000625941 00000 н. 0000626210 00000 н. 0000626468 00000 н. 0000626712 00000 н. 0000626995 00000 н. 0000627267 00000 н. 0000627588 00000 н. 0000627938 00000 н. 0000628299 00000 н. 0000628568 00000 н. 0000628767 00000 н. 0000628996 00000 н. 0000629235 00000 н. 0000629477 00000 н. 0000629751 00000 н. 0000630156 00000 н. 0000630509 00000 н. 0000630773 00000 п. 0000631018 00000 н. 0000631254 00000 н. 0000631507 00000 н. 0000631731 00000 н. 0000631956 00000 п. 0000632198 00000 н. 0000632426 00000 н. 0000632673 00000 н. 0000632948 00000 н. 0000633224 00000 н. 0000633529 00000 н. 0000633894 00000 н. 0000634257 00000 н. 0000634476 00000 п. 0000634694 00000 п. 0000634922 00000 н. 0000635159 00000 п. 0000635409 00000 п. 0000635651 00000 п. 0000635983 00000 п. 0000636329 00000 н. 0000636608 00000 н. 0000636839 00000 н. 0000637085 00000 н. 0000637309 00000 п. 0000638800 00000 н. 0000640586 00000 п. 0000641360 00000 н. 0000642118 00000 п. 0000650475 00000 н. 0000650643 00000 н. 0000650794 00000 п. 0000650945 00000 н. 0000651098 00000 н. 0000651249 00000 н. 0000651418 00000 н. 0000651569 00000 н. 0000651722 00000 н. 0000651972 00000 н. 0000652224 00000 н. 0000652497 00000 н. 0000652754 00000 н. 0000653022 00000 н. 0000653272 00000 н. 0000653522 00000 н. 0000653777 00000 н. 0000654016 00000 н. 0000654221 00000 н. 0000654462 00000 н. 0000654705 00000 н. 0000654953 00000 н. 0000655163 00000 н. 0000655367 00000 н. 0000655582 00000 н. 0000655762 00000 н. 0000656038 00000 н. 0000656314 00000 н. 0000656567 00000 н. 0000656803 00000 н. 0000657044 00000 н. 0000657232 00000 н. 0000657440 00000 н. 0000657676 00000 н. 0000657911 00000 п. 0000658156 00000 н. 0000658418 00000 н. 0000658690 00000 н. 0000658963 00000 н. 0000659216 00000 н. 0000659290 00000 н. 0000659394 00000 н. 0000659511 00000 п. 0000659630 00000 н. 0000659674 00000 н. 0000659798 00000 н. 0000659842 00000 н. 0000660000 00000 н. 0000660044 00000 н. 0000660184 00000 п. 0000660311 00000 п. 0000660490 00000 н. 0000660534 00000 п. 0000660646 00000 н. 0000660826 00000 н. 0000660870 00000 н. 0000661009 00000 н. 0000661120 00000 н. 0000661291 00000 н. 0000661334 00000 н. 0000661469 00000 н. 0000661577 00000 н. 0000661712 00000 н. 0000661755 00000 н. 0000661877 00000 н. 0000661920 00000 н. 0000662050 00000 н. 0000662093 00000 н. 0000662214 00000 н. 0000662257 00000 н. 0000662299 00000 н. @ HS $ `5b [` ֶ VNM% @

    Промышленные пивоваренные дрожжи, разработанные для производства первичных детерминант вкуса в охмеленном пиве

    Клонирование

    Все штаммы, плазмиды экспрессии и дополнительные плазмиды, используемые для конструирования штаммов перечислены и описаны в дополнительных таблицах 6–13.Файлы последовательностей, соответствующие каждой плазмиде, можно найти в публичном реестре JBEI (https://public-registry.jbei.org/) 31 . Плазмиды размножали в штамме Dh20B Escherichia coli и очищали с помощью Miniprep (Qiagen, Germantown, MD, США). Плазмиды «пути», использованные для создания сконструированных пивоваренных штаммов, были собраны стандартным методом Golden Gate с использованием рестрикционных ферментов типа II и ДНК-лигазы Т7 (New England Biolabs, Ипсвич, Массачусетс, США) 24,32 (для дополнительной информации, см. схематическую стратегию сборки на дополнительном рис.3). Все другие плазмиды, полученные в этом исследовании, были сконструированы сборкой Гибсона 33 с использованием мастер-микса сборки Гибсона (New England Biolabs, Ипсвич, Массачусетс, США). Конструкции были разработаны с использованием программного обеспечения DeviceEditor bioCAD 34 , а сборочные праймеры были созданы с помощью программного обеспечения для автоматизации конструирования сборки ДНК j5 35 с использованием настроек по умолчанию. ПЦР-амплификацию проводили с использованием ДНК-полимеразы PrimeSTAR GXL в соответствии с инструкциями производителя (Takara Bio, Mountain View, CA, USA).Гены, кодирующие полноразмерные линалоол и гераниолсинтазы, были заказаны либо у IDT (Сан-Диего, Калифорния, США) в виде G-блоков, либо у Life Technologies (Карлсбад, Калифорния, США) в виде цепочек ДНК. Кодирующие последовательности гетерологичных генов во всех плазмидах были подтверждены секвенированием по Сэнгеру (Genewiz, Саут-Плейнфилд, Нью-Джерси, США и Quintara, Южный Сан-Франциско, Калифорния, США).

    Конструкция штамма

    Лабораторные штаммы дрожжей трансформировали высокоэффективным методом ацетата лития 36 .Штаммы культивировали в среде дрожжевой экстракт + пептон + декстроза (YPD), если не указано иное. Для отбора трансформантов, содержащих кассеты ауксотрофной комплементации, трансформированные клетки высевали на стандартную среду для выпадения (Sunrise Science Products, Сан-Диего, Калифорния, США). Для отбора трансформантов, содержащих кассеты устойчивости к лекарствам, клетки выделяли в среде YPD в течение 4 ч после трансформации, а затем высевали на среду YPD с добавлением 200 мкг / л генетицина (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США) или гигромицина B. (Сигма-Олдрич, Св.Луис, Миссури, США). Незначительные изменения были внесены в условия культивирования для трансформации пивных дрожжей: культуры перед трансформацией выращивали в среде YPD с добавлением 200 мг / л сульфата аденина при 20 ° C в стеклянных пробирках со встряхиванием при 200 об / мин. Одну колонию использовали для инокуляции исходной 5 мл культуры, которую выращивали в течение ночи до помутнения. Эту культуру использовали для инокуляции второй культуры объемом 5 мл до OD 600 (оптическая плотность при 600 нм) 0,01, которую выращивали в течение 18 часов.Затем вторую культуру использовали для инокуляции культур объемом 50 мл в колбах Эрленмейера на 250 мл до OD 600 0,05. После ~ 8 часов роста штаммы трансформировали методом ацетата лития 36 , клетки выделяли в среде YPD в течение 4 часов, высевали на YPD с добавлением 200 мкг / л генетицина, а затем выращивали в течение 5-7 дней при 20 ° C. ° C.

    ДНК

    , использованная для геномной интеграции, была получена либо с помощью ПЦР-амплификации плазмидной ДНК, либо путем переваривания плазмиды рестрикционными ферментами. Для конструирования штамма, гипер-продуцирующего GPP, интеграционные фрагменты амплифицировали из соответствующих плазмид с помощью ПЦР (дополнительная таблица 7).Для конструирования пивоваренных штаммов, интегрированных в путь, плазмидную ДНК линеаризовали рестрикционным расщеплением с Not I-HF и Pst I-HF (New England Biolabs, Ипсвич, Массачусетс, США) (дополнительные таблицы 10 и 11).

    Все события интеграции были подтверждены диагностической ПЦР с использованием GoTaq Green Master Mix (Promega, Мэдисон, Висконсин, США). Для штаммов пивных дрожжей гомозиготность в локусе интеграции тестировали с использованием праймеров, нацеленных на 5 ‘и 3’ соединения желаемого аллеля и родительского аллеля.Идентичность мультигенной интеграции проверяли с помощью праймеров, нацеленных на каждое из четырех сочленений промотор / ген. Идентификационные данные промоторов, соответствующие каждому штамму, можно найти в дополнительных таблицах 12 и 13.

    Скрининг синтаз

    Для скрининга линалоола и гераниолсинтазы отдельные колонии отбирали из планшета для трансформации и использовали для инокуляции культур в 5 мл CSM-Leu. (Sunrise) + 2% рафинозы (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США) среда. Через 24 ч прекультуры разбавляли свежим CSM-Leu + 2% галактозы (Sigma-Aldrich, St.Louis, MO, USA) среду до OD 0,05 и выращивали в течение 72 ч при встряхивании при 200 об / мин. Через 24 часа после инокуляции добавляли органический слой для улавливания гидрофобных монотерпенов. Декан использовали в качестве верхнего слоя для культур, экспрессирующих LIS, а додекан использовали для культур, экспрессирующих GES. Наложение было выбрано таким образом, чтобы минимизировать перекрытие времен удерживания между растворителем и продуктом для последующего анализа методом газовой хроматографии-масс-спектрометрии (ГХ / МС).

    Микроаэробная ферментация

    Штаммы наносили штрихами на среду YPD и выращивали в течение 2 дней при 25 ° C.Отдельные колонии использовали для инокуляции исходных 2 мл прекультур в 24-луночные планшеты (Agilent Technologies, Санта-Клара, Калифорния, США), которые выращивали в течение 3 дней при 20 ° C со встряхиванием при 200 об / мин. Штаммы выращивали в базовой среде, состоящей из 100 г / л солодового экстракта (ME) (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США). Каждая лунка содержала стеклянный шарик 5 мм (Chemglass Life Sciences, Вайнленд, Нью-Джерси, США). Полученные культуры использовали для инокуляции вторых 6 мл предварительных культур в свежие 24-луночные планшеты до OD 0,1, которые затем выращивали в течение 3 дней при 20 ° C со встряхиванием при 120 об / мин.Затем полученные культуры использовали для инокуляции 25 мл культур в стеклянных пробирках до OD 1,0. Эти культуры были оснащены односторонним воздушным шлюзом для микроаэробной ферментации и выращивались в течение 5 дней при 20 ° C (дополнительный рисунок 5). Пробирки встряхивали в течение 30 с каждые 24 ч.

    Высокоэффективная жидкостная хроматография

    мальтотриозу, мальтозу, глюкозу и этанол были разделены с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) и детектируется детектором показателя преломления (RI).На 5 день образцы ферментации центрифугировали при 18000 × g в течение 5 минут, фильтровали с использованием фильтров для центрифужных пробирок Costar ® Spin-X ® , поры 0,22 мкм, переносили в пробирки для ВЭЖХ и загружали в Agilent 1100. ВЭЖХ с автоматическим пробоотборником Agilent серии 1200, ионообменной колонкой Aminex HPX-87H (Bio-Rad, Геркулес, Калифорния, США) и детектором Agilent серии 1200 RI. Метаболиты разделяли с использованием 4 мМ водного раствора H 2 SO 4 с расходом 0.6 мл / мин при 50 ° C. Абсолютные концентрации образцов рассчитывались с использованием линейной модели, построенной на основе стандартной кривой, состоящей из аутентичных стандартов мальтотриозы, мальтозы, глюкозы и этанола (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США), разведенных в воде в диапазоне 0,2–20 г. / L. Все данные представлены в дополнительной таблице 15.

    Количественное определение монотерпенов

    Монотерпены были определены количественно с помощью анализа ГХ / МС с использованием системы ГХ / МС Agilent серии 6890 с масс-селективным детектором 5973.Во всех экспериментах вводили 1 мкл образца (без разделения) с использованием He в качестве газа-носителя в колонку CycloSil-B (Agilent, длина 30 м, внутренний диаметр 0,25 мм, толщина пленки 0,25 мкм, кат. 112-6632). Газ-носитель поддерживали при постоянной скорости потока 1,0 мл / мин, а режим EMV был установлен на коэффициент усиления 1.

    Отбор проб, температурный режим печи и мониторинг ионов были оптимизированы для каждого эксперимента: для количественного определения производства линалоола и гераниола. в ситах для терпен-синтазы образцы центрифугировали и собирали органическую фазу (наложенный растворитель), разбавленную 1:10 этилацетатом (Sigma-Aldrich, St.Louis, MO, USA), переносили в стеклянный флакон для ГХ и вводили в колонку для ГХ. Для образцов, соответствующих экрану LIS, температуру печи поддерживали на уровне 50 ° C в течение 12 мин, после чего следовало повышение со скоростью 10 ° C / мин до температуры 190 ° C и повышение со скоростью 50 ° C / мин до конечного значения. температуре 250 ° C, а затем выдерживали при 250 ° C в течение 1 мин. Задержка растворителя была установлена ​​на 20 мин, и МС был установлен в режим SIM для сбора данных, мониторинга m / z ионов 80, 93 и 121. Для образцов, соответствующих экрану гераниолсинтазы, поддерживалась температура печи. при 50 ° C в течение 5 минут, затем с линейным изменением со скоростью 30 ° C / мин до температуры 135 ° C, затем с линейным изменением со скоростью 5 ° C / мин до температуры 145 ° C, затем с линейным изменением со скоростью 30 ° C / мин до температуре 250 ° C и выдерживали при 250 ° C в течение 1 мин.Задержка растворителя была установлена ​​на 10,8 мин, а МС был настроен на мониторинг m / z ионов 69, 93, 111 и 123. Для количественного определения линалоола и гераниола в микроаэробных ферментациях, проводимых с пивными дрожжами, образцы были извлечены в день. 5 с использованием этилацетата. Образцы ферментации собирали и центрифугировали, 1600 мкл супернатанта смешивали с этилацетатом в соотношении 4: 1 в 96-луночном планшете, планшет герметично закрывали и встряхивали в течение 2 минут, затем центрифугировали при 3000 × г для 5 мин и 30 мкл этилацетата переносили в стеклянный сосуд для ГХ.Полученный препарат вводили в колонку для ГХ. Для количественного определения линалоола и гераниола в различных коммерческих сортах пива 2 мл этилацетата добавляли к 8 мл пива в стеклянных пробирках (Kimble Chase, Rockwood, TN, USA). Его перемешивали вручную в течение 2 минут и центрифугировали при 1000 × г в течение 10 минут. Тридцать микролитров этилацетатного слоя переносили в стеклянные сосуды для ГХ, и полученный препарат вводили в колонку для ГХ. Как для экспериментов по микроаэробной ферментации, так и для отбора проб коммерческого пива температуру печи поддерживали на уровне 50 ° C в течение 5 минут, после чего следовало повышение со скоростью 5 ° C / мин до температуры 200 ° C и повышение на 50 ° C / мин до конечной температуры 250 ° C, а затем выдерживают при 250 ° C в течение 1 мин.Задержка растворителя была установлена ​​на 5 минут, а МС был настроен на мониторинг m / z ионов 55, 69, 71, 80, 81, 93, 95, 107, 121, 123 и 136.

    Площади пиков линалоол и гераниол определяли количественно с использованием программного обеспечения MSD Productivity ChemStation (Agilent Technologies, Санта-Клара, Калифорния, США). Абсолютные концентрации образцов рассчитывали с использованием линейной модели, построенной на основе стандартной кривой, составленной для подлинных стандартов линалоола и гераниола (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США).Для экспериментов по скринингу монотерпенсинтазы стандарты разбавляли этилацетатом в диапазоне 0,2–50 мг / л. Для экспериментов по микроаэробной ферментации и отбора проб коммерческого пива стандарты добавляли к препарату, экстрагированному из образца ферментации родительского штамма (т. Е. Контрольному препарату, используемому для обеспечения точного базового сигнала) в диапазоне 0,2–10 мг / л. При расчете фактических концентраций кажущиеся концентрации были масштабированы на основе разбавления или концентрации в препарате для инъекции ГХ.

    Proteomics

    Данные о содержании белка представлены в дополнительной таблице 16. Образцы культуры (5 мл) отбирали через 2 дня, встряхивали и центрифугировали при 3000 × г в течение 5 минут. Супернатант отбрасывали, а осадок мгновенно замораживали. Осадки клеток на планшетах лизировали осаждением хлороформ-метанол, как описано ниже, в то время как образцы в пробирках лизировали путем повторного суспендирования осадка в 600 мкл буфера для лизиса дрожжей (6 М мочевина в 500 мМ бикарбоната аммония) с последующим взбиванием шариков. с шариками из диоксида циркония / диоксида кремния 500 мкл (0.Диаметр 5 мм; BioSpec Products, Бартлсвилл, Оклахома, США). Образцы в пробирках подвергали взбиванию шариками в течение пяти циклов по 1 мин с 30 с на льду между каждым циклом. Затем их центрифугировали в настольной центрифуге на максимальной скорости в течение 2 мин для осаждения обломков клеток, а прозрачный лизат переносили в свежие пробирки. Лизис клеток на планшетах и ​​осаждение белков достигали с использованием экстракции хлороформ-метанол 37 . Осадки ресуспендировали в 60 мкл метанола и 100 мкл хлороформа, а затем в 50 мкл гранул диоксида циркония / диоксида кремния (0.Диаметр 5 мм; BioSpec Products, Bartlesville, OK, USA) добавляли в каждую лунку. Планшет подвергали ударным нагрузкам в течение пяти циклов по 1 мин с 30 с на льду между циклами. Супернатанты переносили в новый планшет и добавляли 30 мкл воды в каждую лунку. Планшет центрифугировали 10 мин при максимальной скорости, чтобы вызвать разделение фаз. Слои метанола и воды удаляли, а затем в каждую лунку добавляли 60 мкл метанола. Планшет центрифугировали еще 10 мин при максимальной скорости, затем слои хлороформа и метанола удаляли и осадки белка сушили при комнатной температуре в течение 30 мин перед повторным суспендированием в 100 мМ бикарбонате аммония с 20% метанолом.

    Концентрацию белка в образцах измеряли с помощью набора DC Protein Assay Kit (Bio-Rad, Hercules, CA, USA), используя бычий сывороточный альбумин в качестве стандарта. Всего 50 мкг белка из каждого образца переваривали трипсином для целевого протеомного анализа. Образцы белка восстанавливали путем добавления трис 2- (карбоксиэтил) фосфина до конечной концентрации 5 мМ с последующей инкубацией при комнатной температуре в течение 30 минут. Йодацетамид добавляли до конечной концентрации 10 мМ для алкилирования образцов белка, а затем инкубировали в течение 30 минут в темноте при комнатной температуре.Трипсин добавляли в соотношении трипсин: общий белок 1:50, и образцы инкубировали в течение ночи при 37 ° C.

    Пептиды анализировали с использованием системы жидкостной хроматографии Agilent 1290, соединенной с масс-спектрометром Agilent 6460 QQQ (Agilent Technologies, Санта-Клара, Калифорния, США). Образцы пептида (10–20 мкг [LC2]) разделяли на колонке Ascentis Express Peptide ES-C18 (размер частиц 2,7 мкм, размер пор 160 Å, длина 5 см × внутренний диаметр 2,1 мм, соединенный с колонкой 5 мм × 2,1 мм. id защитная колонка с аналогичным размером частиц и пор; Sigma-Aldrich, St.Луис, штат Миссури, США), при этом система работала со скоростью потока 0,400 мл / мин и отсеком колонки при 60 ° C. Пептиды элюировали в масс-спектрометр через градиент с начальными исходными условиями 95% буфера A (0,1% муравьиной кислоты) и 5% буфера B (99,9% ацетонитрила, 0,1% муравьиной кислоты). Буфер B поддерживали на уровне 5% в течение 1,5 мин, а затем увеличивали до 35% буфера B в течение 3,5 мин. Буфер B был дополнительно увеличен до 80% за 0,5 мин, где он выдерживался в течение 1 минуты, а затем снова снизился до 5% буфера B за 0.3 мин, где ее выдерживали в течение 0,2 мин для повторного уравновешивания колонки до начального начального состояния. Пептиды были ионизированы источником Agilent Jet Stream ESI, работающим в режиме положительных ионов со следующими параметрами источника: температура газа = 250 ° C, поток газа = 13 л / мин, давление распылителя = 35 фунтов на квадратный дюйм, температура газа в оболочке = 250 ° C, поток газа через оболочку = 11 л / мин, VCap = 3500 В. Данные были получены с помощью Agilent MassHunter, версия B.08.00. Полученные файлы данных были обработаны с использованием Skyline 38 версии 3.6 (MacCoss Lab, Вашингтонский университет, Сиэтл, Вашингтон, США), а количественная оценка пиков была уточнена с помощью mProphet 39 в Skyline.

    Анализ данных

    Анализ данных проводился с использованием языка статистического программирования R 40 . Для визуализации данных использовались дополнительные библиотеки 41,42,43,44,45 . Для тепловых карт анализа белков и метаболитов (рис. 2e и дополнительный рис. 9) относительные уровни были представлены следующим образом: силы промоторов были представлены в виде доли от их ранее сообщенного рангового порядка 24 в диапазоне от P RNR2 (0 ) до П ТДх4 (1).\ prime = \ frac {{s_i — {\ mathrm {min}} (S)}} {{{\ mathrm {max}} (S) — {\ mathrm {min}} (S)}} $$

    (1)

    Для анализа сахара неферментированный МЭ был включен в расчет макс / мин. Для сбраживаемых сахаров (т.е. мальтотриозы, мальтозы, глюкозы) масштабированные значения вычитали из 1, чтобы представить близость к желаемому профилю потребления сахара.

    Метрика расстояния сконструированного штамма по отношению к данному коммерческому пиву была рассчитана с использованием манхэттенской длины как расстояния между производством монотерпена и концентрацией монотерпена в пиве, а также расстояния между потреблением сахара и родительским штаммом.Сначала для каждого вида, линалоола и гераниола, рассчитывалась разница между log 10 -преобразованными значениями концентрации монотерпена сконструированного штамма и целевой концентрацией монотерпена в пиве. Во-вторых, были рассчитаны абсолютные значения этих разностей. Наконец, полученные значения вместе с долей общего сахара, оставшейся после ферментации, усредняли.

    Математическое моделирование

    На Python были построены три разные модели для прогнозирования продукции монотерпена на основе уровней белка (подробное описание и реализацию см. В файле дополнительных данных 1).Файлы, содержащие данные, используемые для создания прогнозных моделей, включены в качестве файлов дополнительных данных 2 и 3. И гауссовский регрессор, и линейные модели были реализованы с использованием Scikit-learn 46 . Дополнительные уравнения, необходимые для описания линейной модели, приведены в дополнительной таблице 3. Уравнения, описывающие кинетическую модель Михаэлиса – Ментен, приведены в дополнительной таблице 4, а схема структуры модели представлена ​​на дополнительном рисунке 13. Кинетические параметры были взяты из литература (дополнительная таблица 5) и концентрации белка приведены в дополнительном файле данных 2.Были включены свободные параметры для преобразования относительных количеств белка в абсолютные значения белка. Кроме того, параметр β определял относительное соотношение между эндогенными FPPS и FPPS *.

    Модели линейного и гауссовского регрессоров были подобраны с использованием стандартных методов из библиотеки Scikit Learn. Кинетическая модель была построена вручную без внешних библиотек. Чтобы соответствовать кинетической модели, был использован алгоритм дифференциальной эволюции для выполнения оптимизации параметров нелинейной функции стоимости.В частности, сумма квадратов остаточной ошибки прогнозов модели на основе деформаций первой итерации была минимизирована по отношению к ранее описанным параметрам. Кинетические коэффициенты были ограничены, чтобы изменяться на порядок величины от значений, описанных в литературе. Для перекрестной проверки моделей и минимизации переобучения к каждой модели применялась методология исключения по одному. Остаточные погрешности этого метода перекрестной проверки приведены в дополнительной таблице 2.

    Анализ, выполненный для прогнозирования степени улучшения характеристик для штаммов второй итерации (рис. 4 и дополнительный рис. 10) по сравнению со случайно созданными штаммами, описан в дополнительном примечании 3.

    Анализ токсичности

    OD 600 Было проведено измерений в 48-луночных прозрачных планшетах с плоским дном (Corning Inc., Корнинг, Нью-Йорк, США) с использованием считывающего устройства Tecan Infinite F200 PRO с регистрацией каждые 15 мин. Анализ проводился с использованием пользовательских скриптов Python.Кривые роста рассчитывали путем усреднения шести биологических повторов; заштрихованные области представляют одно стандартное отклонение от среднего. Скорость роста рассчитывалась со скользящим окном 5 ч, что позволяло найти максимальную скорость роста. Скорость роста представлена ​​как среднее значение шести биологических повторов; планки погрешностей представляют собой 95% доверительные интервалы (дополнительный рисунок 12).

    Пилотные ферментации

    Штаммы наносили штрихами на среду YPD и выращивали в течение 2 дней при 25 ° C. Одиночные колонии использовали для инокуляции исходных культур объемом 5 мл в стеклянные пробирки, которые выращивали в течение 2 дней при 20 ° C со встряхиванием при 200 об / мин.Полученные культуры использовали для инокуляции 1 л культур в 2-литровых стеклянных колбах Эрленмейера, которые затем выращивали в течение 3 дней при 20 ° C со встряхиванием со скоростью 200 об / мин. Штаммы выращивали в базовой среде, состоящей из 100 г / л ME (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США). Затем полученные культуры использовали для инокуляции промышленных ферментаций сусла, произведенного на экспериментальной пивоварне объемом 1,76 гл.

    Для первой серии ферментаций 35 кг двухрядного солода измельчали ​​и добавляли к 105 л деионизированной воды, обработанной 79.15 г пивоваренных солей. Затирание проводили в течение 30 минут при 65 ° C, 10 минут при 67 ° C и 10 минут при 76 ° C. Суслу давали рециркулировать в течение 10 минут и отделяли фильтрованием. Барботирование происходило в течение 58 минут, давая конечный объем перед кипячением в варочном котле 215 л. Сусло кипятили до тех пор, пока оно не достигло конечного объема 197 л и плотности 11,65 ° Плато. Добавки в чайник включали 125 г гранул хмеля Magnum, 15,1 г питательных веществ для дрожжей Yeastex и 15 г Protofloc (Murphy and Son, Ноттингем, Великобритания).Ингредиенты были получены от Brewers Supply Group (Шакопи, Миннесота, США), если не указано иное. После того, как сусло было отделено от горячего осадка, оно было перенесено в четыре специальных ферментера на 56 л (JVNW, Канби, Орегон, США), каждый из которых был наполнен до 40 л. Пиво ферментировали при 19 ° C до достижения конечной плотности. в течение дополнительных 24 часов для удаления вицинального дикетона (VDK), а затем кондиционировали на холоде при 0 ° C. Продолжительность ферментации и, в свою очередь, продолжительность холодового кондиционирования зависела от штамма.Образцы отбирали каждые 24 часа для измерения ° Плато и pH (см. Дополнительный рисунок 11). Полученное пиво фильтровали под давлением и газировали перед хранением в бочонках емкостью 7,75 галлона. Образцы были собраны во время процесса кегирования для анализа Alcolyzer (Anton Paar, Ashland, VA) (см. Дополнительную таблицу 17).

    Для второй серии ферментаций 35 кг двухрядного солода измельчали ​​и добавляли к 105 л деионизированной воды, обработанной 79 г пивоваренных солей. Затирание проводили в течение 30 минут при 65 ° C, 10 минут при 67 ° C и 10 минут при 76 ° C.Суслу давали рециркулировать в течение 10 минут и отделяли фильтрованием. Барботирование происходило в течение 52 минут, давая конечный объем перед кипячением в варочном котле 214 л. Сусло кипятили до тех пор, пока оно не достигло конечного объема 194 л и плотности 11,25 ° Плато. Добавки в чайник включали 97,01 г гранул хмеля Galena, 15,1 г питательных веществ для дрожжей Yeastex и 15 г Protofloc (Murphy and Son, Ноттингем, Соединенное Королевство). Ингредиенты были получены от Brewers Supply Group (Шакопи, Миннесота), если не указано иное.После того, как сусло было отделено от горячего осадка, оно было перенесено в четыре нестандартных ферментера на 56 л (JVNW, Canby, OR), каждый из которых был наполнен до 40 л. Пиво ферментировали при 19 ° C до достижения конечной плотности и выдерживали в течение некоторого времени. дополнительные 24 часа для удаления VDK, а затем холодное кондиционирование при 0 ° C. Продолжительность ферментации и, в свою очередь, продолжительность холодового кондиционирования зависела от штамма. Образцы отбирали каждые 24 часа для измерения ° Плато и pH (см. Дополнительный рисунок 11). Через 48 ч при 0 ° C 88,5 г сухого хмеля Cascade (либо из Вашингтона, либо из Айдахо) добавляли в два ферментера, содержащих родительский штамм WLP001 .Сухой хмель оставляли на пиве при 1,67 ° C на 1 неделю перед фильтрацией. Полученное пиво фильтровали под давлением и газировали перед хранением в бочонках емкостью 7,75 галлона. Образцы были собраны во время процесса кегирования для анализа Alcolyzer (Антон Паар, Ашленд, Вирджиния, США) (см. Дополнительную таблицу 18).

    Сенсорный анализ

    Одобрение Институционального наблюдательного совета на исследования на людях было получено от Управления по защите человека в Калифорнийском университете в Беркли (номер протокола CPHS 2017-05-9941).Комитет по защите прав человека рассмотрел и одобрил заявку в соответствии с 7-й категорией федеральных нормативных актов.

    Эксперты: Органолептический анализ сваренного пива был проведен в Lagunitas Brewing Company (Петалума, Калифорния, США). Первая группа состояла из 27 сотрудников-участников (17 мужчин и 10 женщин), вторая — из 13 сотрудников-участников (11 мужчин и 2 женщины), с опытом от 2 до 154 дегустационных сессий, которые посетили в 2017 календарном году. Возраст от среднего до среднего. От 20 до 50 лет.Все участники прошли базовую сенсорную подготовку в соответствии со стандартами Lagunitas.

    Органолептический анализ: Образцы объемом 2 унции были представлены в прозрачных стаканах для бренди на 6 унций (Либби, Толедо, Огайо, США). Каждый член группы получил пять очков, один контроль и четыре образца (один слепой контроль и три переменные), случайным образом расположенных в соответствии со сбалансированной конструкцией блоков. Блок-дизайн и сбор данных были выполнены с использованием программного обеспечения EyeQuestion ® (Logic8 BV, Нидерланды). За один присест участников попросили оценить интенсивность хмелевого аромата по сравнению с контролем по 9-балльной порядковой шкале, закрепленной на одном конце с отметкой «Нет разницы», а на другом конце — «Крайняя разница».”

    Анализ данных: данные были проанализированы с использованием теста Даннета в сочетании с односторонним дисперсионным анализом с использованием EyeOpenR ® (Logic8 BV, Нидерланды). Анализ проводился с доверительной вероятностью 95%. Слепой контроль используется в качестве эталонной выборки для учета возможной систематической ошибки оценки.

    Сухое охмеление для оценки вариации между препаратами хмеля

    Родительский штамм WLP001 наносили штрихами на среду YPD и выращивали в течение 2 дней при 25 ° C.Одиночную колонию использовали для инокуляции начальной 50 мл прекультуры в стеклянной колбе Эрленмейера на 250 мл, которую выращивали в течение 1 дня при 20 ° C со встряхиванием при 200 об / мин. Штамм выращивали в базовой среде, состоящей из 100 г / л ME (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США) с добавлением YPD. Полученную культуру использовали для инокуляции предкультуры объемом 1 л в стеклянной колбе Эрленмейера на 2 л, которую затем выращивали в течение 2 дней при 20 ° C со встряхиванием со скоростью 200 об / мин. Полученную культуру затем использовали для инокуляции четырех 2-литровых культур в 4-литровых стеклянных колбах Эрленмейера, которые затем выращивали в течение 1 дня при 20 ° C со встряхиванием со скоростью 200 об / мин.Полученные культуры затем использовали для инокуляции 8 л культур в 3-галлонных стеклянных бутылях (Midwest Supplies, Розвилл, Миннесота, США). Эти культуры были оборудованы односторонней воздушной пробкой для микроаэробной ферментации и выращивались в течение 6 дней при 20 ° C. Тем временем пять различных образцов хмеля Cascade, выращенных на фермах на северо-западе Тихого океана, были получены от YCH Hops (Якима, Вашингтон, США). Образцы хмеля измельчали ​​с помощью ступки с пестиком и жидкого азота. На 6 день из ферментации отбирали образцы (в качестве контроля без охмеления), и к каждой ферментации добавляли 25 г хмеля.Хмель оставляли настаиваться на 3 дня, после чего образцы собирали для анализа ГХ / МС.

    Вариации от партии к партии

    Штаммы наносили штрихами на среду YPD и выращивали в течение 2 дней при 25 ° C. Одиночные колонии использовали для инокуляции исходных 5 мл предварительных культур в стеклянные пробирки, которые выращивали в течение 2 дней при 20 ° C со встряхиванием при 200 об / мин. Штаммы выращивали в базовой среде, состоящей из 100 г / л ME (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури, США). Полученные культуры использовали для инокуляции 500 мл прекультур в 2-литровых стеклянных колбах Эрленмейера, которые затем выращивали в течение 1 дня при 20 ° C со встряхиванием со скоростью 200 об / мин.Полученные культуры затем использовали для инокуляции 8 л культур в 3-галлонных стеклянных бутылях (Midwest Supplies, Розвилл, Миннесота, США). Эти культуры были снабжены односторонним воздушным затвором для микроаэробной ферментации и выращивались в течение 12 дней при 20 ° C. Образцы были взяты на 12 день для анализа ГХ / МС.

    Доступность данных

    Авторы заявляют, что все данные, подтверждающие выводы этого исследования, доступны в документе и дополнительных информационных файлах. Данные о последовательностях и штаммы, полученные в этом исследовании, были депонированы в публичном реестре JBEI.См. Дополнительные таблицы 6–13 для получения информации о последовательностях конструкций и штаммах. Доступ к компьютерному коду, используемому в этом исследовании, можно получить из дополнительных данных 1.

    Конструирование фабрик по производству микробных клеток для производства растительных натуральных продуктов: от принципов проектирования до производства в промышленных масштабах | Microbial Cell Factories

  • 1.

    Facchini PJ, Bohlmann J, Covello PS, De LV, Mahadevan R, Page JE, Ro DK, Sensen CW, Storms R, Martin VJ. Синтетические биосистемы для производства ценных метаболитов растений.Trends Biotechnol. 2012; 30: 127–31.

    CAS Статья Google ученый

  • 2.

    Брауэр В. Назад к природе: исчезновение лекарственных растений угрожает открытию лекарств. Cancerspectrum Knowl Environ. 2008; 100: 838–9.

    Google ученый

  • 3.

    Ван Ю., Чен С., Ю. О. Метаболическая инженерия флавоноидов в растениях и микроорганизмах. Appl Microbiol Biotechnol. 2011; 91: 949.

    CAS Статья Google ученый

  • 4.

    Li JWH, Vederas JC. Открытие лекарств и натуральные продукты: конец эпохи или бесконечный рубеж? Наука. 2009. 325: 161–5.

    Артикул Google ученый

  • 5.

    Du J, Shao ZY, Zhao HM. Инженерные микробные фабрики для синтеза продуктов с добавленной стоимостью. J Ind Microbiol Biotechnol. 2011; 38: 873–90.

    CAS Статья Google ученый

  • 6.

    Хуан Б., Го Дж., Йи Б., Ю X, Сун Л., Чен В. Гетерологичное производство вторичных метаболитов в качестве фармацевтических препаратов в Saccharomyces cerevisiae . Biotechnol Lett. 2008; 30: 1121–37.

    CAS Статья Google ученый

  • 7.

    Chemler JA, Koffas MA. Метаболическая инженерия для биосинтеза растительных натуральных продуктов в микробах. Curr Opin Biotechnol. 2008; 19: 597–605.

    CAS Статья Google ученый

  • 8.

    Keasling JD. Синтетическая биология и разработка инструментов для метаболической инженерии. Metab Eng. 2012; 14: 189–95.

    CAS Статья Google ученый

  • 9.

    Сузуки С., Коэдука Т., Сугияма А., Ядзаки К., Умедзава Т. Микробное производство специализированных метаболитов растений. Plant Biotechnol. 2014; 31: 465–82.

    CAS Статья Google ученый

  • 10.

    Берим А, банда DR.Роль флавон-6-гидроксилазы и 7-O -деметилирования в биосинтетической сети флавонов сладкого базилика. J Biol Chem. 2013; 288: 1795–805.

    CAS Статья Google ученый

  • 11.

    Мияхара Т., Хамада А., Окамото М., Хиросе Ю., Сакагути К., Хатано С., Озеки Ю. Идентификация флавоноидной 3′-гидроксилазы в желтом цветке Delphinium zalil . J. Plant Physiol. 2016; 202: 92–6.

    CAS Статья Google ученый

  • 12.

    Xiong S, Tian N, Long J, Chen Y, Qin Y, Feng J, Xiao W., Liu S. Молекулярное клонирование и характеристика гена флаванон-3-гидроксилазы из Artemisia annua L. Биохимия растений. 2016; 105: 29–36.

    CAS Статья Google ученый

  • 13.

    Gosch C, Halbwirth H, Stich K. Флоридзин: биосинтез, распределение и физиологическое значение в растениях. Фитохимия. 2010; 71: 838–43.

    CAS Статья Google ученый

  • 14.

    Гуо Дж, Ма Х, Цай И, Ма И, Чжань З., Чжоу Й.Дж., Лю В., Гуань М, Ян Дж, Цуй Дж. И др. Распущенность цитохрома P450 приводит к разветвлению пути биосинтеза таншинонов. Новый Фитол. 2016; 210: 525–34.

    CAS Статья Google ученый

  • 15.

    Hileman LC, Drea S, Martino G, Litt A, Irish VF. Вызванное вирусом сайленсинг генов является эффективным инструментом для анализа функции генов у основных видов эвдикота Papaver somniferum (опийный мак).Плант Дж. 2005; 44: 334–41.

    CAS Статья Google ученый

  • 16.

    Di P, Zhang L, Chen J, Tan H, Xiao Y, Dong X, Zhou X, Chen W. 13 C индикатор выявляет биосинтез фенольных кислот в культурах волосистых корней Salvia miltiorrhiza . ACS Chem Biol. 2013; 8: 1537.

    CAS Статья Google ученый

  • 17.

    Medema MH, Osbourn A. Компьютерная геномная идентификация и функциональное восстановление путей биосинтеза растительных натуральных продуктов.Nat Prod Rep. 2016; 33: 951–62.

    CAS Статья Google ученый

  • 18.

    Xu Z, Peters RJ, Weirather J, Luo H, Liao B, Zhang X, Zhu Y, Ji A, Zhang B, Hu S, et al. Полноразмерные последовательности транскриптомов и варианты сплайсинга, полученные с помощью комбинации платформ для секвенирования, примененных к различным тканям корня шалфея Salvia miltiorrhiza , и биосинтеза таншинона. Плант Дж. 2015; 82: 951–61.

    CAS Статья Google ученый

  • 19.

    Цюй С, Чжао Х, Фу Ф, Чжан К., Юань Дж, Лю Л., Ван Р, Сюй Х, Лу К., Ли Дж. Молекулярное картирование и QTL для профилей экспрессии флавоноидных генов в Brassica napus . Фронтальный завод им. 2016; 7: 1691.

    Google ученый

  • 20.

    Шан И, Ма И, Чжоу Й, Чжан Х, Дуань Л., Чен Х, Цзэн Дж, Чжоу Ц., Ван С., Гу В. и др. Биосинтез, регуляция и одомашнивание горечи огурца. Наука. 2014; 346: 1084–8.

    CAS Статья Google ученый

  • 21.

    Чжоу И, Ма И, Цзэн Дж, Дуань Л., Сюэ Х, Ван Х, Лин Т, Лю З., Цзэн К., Чжун И и др. Конвергенция и расхождение биосинтеза и регуляции горечи у Cucurbitaceae. Nat Plants. 2016; 2: 16183.

    CAS Статья Google ученый

  • 22.

    Иткин М., Давидович-Риканати Р., Коэн С., Портной В., Дорон-Файгенбойм А., Орен Е., Фрейлих С., Цури Г., Баранес Н., Шен С. и др. Биосинтетический путь несахарного высокоинтенсивного подсластителя могрозида V из Siraitia grosvenorii .Proc Natl Acad Sci USA. 2016; 113: E7619–28.

    CAS Статья Google ученый

  • 23.

    Янь X, Фань Y, Вэй В., Ван П., Лю Q, Вэй Ю., Чжан Л., Чжао Г., Юэ Дж., Чжоу З. Производство биоактивного гинсенозидного соединения К в дрожжах, подвергшихся метаболической инженерии. Cell Res. 2014; 24: 770–3.

    CAS Статья Google ученый

  • 24.

    Ван П, Вэй И, Фань И, Лю Цюй, Вэй В, Ян Ц, Чжан Л., Чжао Г, Юэ Дж, Ян X, Чжоу З.Производство биоактивных гинсенозидов Rh3 и Rg3 метаболически модифицированными дрожжами. Metab Eng. 2015; 29: 97–105.

    Артикул Google ученый

  • 25.

    Lau W, Sattely ES. Шесть ферментов из Mayapple, которые завершают путь биосинтеза этопозид агликона. Наука. 2015; 349: 1224–8.

    CAS Статья Google ученый

  • 26.

    Matasci N, Hung LH, Yan Z, Carpenter EJ, Wickett NJ, Mirarab S, Nguyen N, Warnow T., Ayyampalayam S, Barker M.Доступ к данным для проекта «1000 заводов» (1KP). GigaScience. 2014; 3:17.

    Артикул Google ученый

  • 27.

    Chen S, Xiang L, Guo X, Li Q. Введение в проект генома лекарственных растений. Front Med. 2011; 5: 178–84.

    Артикул Google ученый

  • 28.

    Гудштейн Д.М., Шу С., Хоусон Р., Нойпан Р., Хейс Р.Д., Фазо Дж., Митрос Т., Диркс В., Хеллстен Ю., Патнэм Н.Фитозома: сравнительная платформа для геномики зеленых растений. Nucleic Acids Res. 2012; 40: D1178–86.

    CAS Статья Google ученый

  • 29.

    Канехиса MGS. KEGG: киотская энциклопедия генов и геномов. Nucleic Acids Res. 2000; 28: 27–30.

    CAS Статья Google ученый

  • 30.

    Tan GY, Deng Z, Liu T. Последние достижения в выяснении ферментативной функции в биосинтезе природных продуктов.F1000Res. 2015. doi: 10.12688 / f1000research.7187.2.

    Google ученый

  • 31.

    Galanie S, Thodey K, Trenchard IJ, Interrante MF, Smolke CD. Полный биосинтез опиоидов в дрожжах. Наука. 2015; 349: 1095–100.

    CAS Статья Google ученый

  • 32.

    Накагава А., Мацумура Э, Коянаги Т., Катаяма Т., Кавано Н., Ёсимацу К., Ямамото К., Кумагаи Х., Сато Ф., Минами Х.Полный биосинтез опиатов путем ступенчатой ​​ферментации с использованием сконструированной Escherichia coli . Nat Commun. 2016; 7: 10390.

    CAS Статья Google ученый

  • 33.

    Ли Д., Ллойд Н.Д., Преториус И.С., Борнеман АР. Гетерологическое производство кетона малины в винных дрожжах Saccharomyces cerevisiae посредством инженерии путей и синтеза синтетических ферментов. Факт о микробной клетке. 2016; 15:49.

    Артикул Google ученый

  • 34.

    Bai Y, Bi H, Zhuang Y, Liu C, Cai T, Liu X, Zhang X, Liu T, Ma Y. Производство салидрозида в метаболически модифицированной Escherichia coli . Научный отчет 2014; 4: 6640.

    CAS Статья Google ученый

  • 35.

    Bai Y, Yin H, Bi H, Zhuang Y, Liu T, Ma Y. De novo биосинтез гастродина в Escherichia coli . Metab Eng. 2016; 35: 138–47.

    CAS Статья Google ученый

  • 36.

    Ло И, Ли Б.З., Лю Д., Чжан Л., Чен И, Цзя Б., Цзэн Б.Х., Чжао Х, Юань Ю. Инженерный биосинтез натуральных продуктов в гетерологичных хозяевах. Chem Soc Rev.2015; 44: 5265–90.

    CAS Статья Google ученый

  • 37.

    Толл Д. Биотехнология изопреноидов. Adv Biochem Eng Biotechnol. 2015; 148: 63–106.

    CAS Google ученый

  • 38.

    Дай З., Лю И, Чжан Х, Ши М, Ван Б., Ван Д., Хуанг Л., Чжан Х.Метаболическая инженерия Saccharomyces cerevisiae для производства гинсенозидов. Metab Eng. 2013; 20: 146–56.

    CAS Статья Google ученый

  • 39.

    Ro DK, Paradise EM, Ouellet M, Fisher KJ, Newman KL, Ndungu JM, Ho KA, Eachus RA, Ham TS, Kirby J, et al. Производство предшественника противомалярийного препарата артемизиновой кислоты в модифицированных дрожжах. Природа. 2006; 440: 940–3.

    CAS Статья Google ученый

  • 40.

    Westfall PJ, Pitera DJ, Lenihan JR, Eng D, Woolard FX, Regentin R, Horning T, Tsuruta H, Melis DJ, Owens A и др. Производство аморфадиена в дрожжах и его преобразование в дигидроартемизиновую кислоту, предшественник противомалярийного агента артемизинина. Proc Natl Acad Sci USA. 2012; 109: E111–8.

    CAS Статья Google ученый

  • 41.

    Xie W, Ye L, Lv X, Xu H, Yu H. Последовательный контроль биосинтетических путей для сбалансированного использования промежуточных продуктов метаболизма в Saccharomyces cerevisiae .Metab Eng. 2015; 28: 8–18.

    CAS Статья Google ученый

  • 42.

    Купман Ф., Биквилдер Дж., Крими Б., Ван Х.А., Холл Р. Д., Бош Д., ван Марис А. Дж., Пронк Дж. Т., Даран Дж. М.. Производство de novo флавоноида нарингенина в сконструированном Saccharomyces cerevisiae . Факт о микробной клетке. 2012; 11: 402–7.

    Артикул Google ученый

  • 43.

    Цзян Х., Вуд К.В., Морган Дж.А.Метаболическая инженерия фенилпропаноидного пути в Saccharomyces cerevisiae . Appl Environ Microbiol. 2005. 71: 2962–9.

    CAS Статья Google ученый

  • 44.

    Леонард Э., Лим К.Х., Пила П.Н., Коффас М.А. Разработка центральных метаболических путей для продукции высокого уровня флавоноидов в Escherichia coli . Appl Environ Microbiol. 2007. 73: 3877–86.

    CAS Статья Google ученый

  • 45.

    Cao W, Ma W, Zhang B, Wang X, Chen K, Li Y, Ouyang P. Улучшенное производство пиноцембрина в Escherichia coli путем инженерного синтеза жирных кислот. J Ind Microbiol Biotechnol. 2016; 43: 557–66.

    CAS Статья Google ученый

  • 46.

    Brockman IM, Prather KL. Динамическая метаболическая инженерия: новые стратегии развития чувствительных клеточных фабрик. Biotechnol J. 2015; 10: 1360–9.

    CAS Статья Google ученый

  • 47.

    Xu P, Li L, Zhang F, Stephanopoulos G, Koffas M. Улучшение производства жирных кислот путем разработки регуляции динамических путей и метаболического контроля. Proc Natl Acad Sci USA. 2014; 111: 11299–304.

    CAS Статья Google ученый

  • 48.

    Xie W, Lv X, Ye L, Zhou P, Yu H. Конструирование ликопин-сверхпродуцентов Saccharomyces cerevisiae путем сочетания направленной эволюции и метаболической инженерии. Metab Eng. 2015; 30: 69–78.

    CAS Статья Google ученый

  • 49.

    ван Суммерен-Везенхаген П.В., Мариенхаген Дж. Метаболическая инженерия Escherichia coli для синтеза растительного полифенола пиносилвина. Appl Environ Microbiol. 2015; 81: 840–9.

    Артикул Google ученый

  • 50.

    Дитрих Дж., Йошикуни Й, Фишер К. Дж., Вулард FX, Окей Д., Макфи Ди-джей, Реннингер Н. С., Чанг М. С., Бейкер Д., Кислинг Дж. Д.. Новый полубиосинтетический способ производства артемизинина с использованием модифицированного субстрат-беспорядочного P450 (BM3).ACS Chem Biol. 2009; 4: 261–7.

    CAS Статья Google ученый

  • 51.

    Biggs BW, Lim CG, Sagliani K, Shankar S, Stephanopoulos G, De Mey M, Ajikumar PK. Преодоление взаимозависимости гетерологичных белков для оптимизации опосредованного P450 синтеза предшественника таксола в Escherichia coli . Proc Natl Acad Sci USA. 2016; 113: 3209–14.

    CAS Статья Google ученый

  • 52.

    Лю И, Янь З., Лу Х, Сяо Д., Цзян Х. Повышение каталитической активности изопентенилфосфаткиназы с помощью анализа совместной эволюции белков. Научный доклад 2016; 6: 24117.

    CAS Статья Google ученый

  • 53.

    Морита Х., Ямасита М., Ши С.П., Вакимото Т., Кондо С., Като Р., Сугио С., Коно Т., Абэ И. Синтез ненатуральных алкалоидных каркасов с использованием поликетидсинтазы растений. Proc Natl Acad Sci USA. 2011; 108: 13504–9.

    CAS Статья Google ученый

  • 54.

    Николау С.А., Гайда С.М., Папуцакис Э.Т. Сравнительный обзор стресса и толерантности к метаболиту и субстрату при микробной биопереработке: от биотоплива и химикатов до биокатализа и биоремедиации. Metab Eng. 2010; 12: 307–31.

    CAS Статья Google ученый

  • 55.

    Lv H, Li J, Wu Y, Garyali S, Wang Y. Транспортер и его разработка для вторичных метаболитов. Appl Microbiol Biotechnol. 2016; 100: 1–12.

    Артикул Google ученый

  • 56.

    Dunlop MJ, Dossani ZY, Szmidt HL, Chu HC, Lee TS, Keasling JD, Hadi MZ, Mukhopadhyay A. Разработка устойчивости к микробному биотопливу и его экспорт с использованием откачивающих насосов. Mol Syst Biol. 2011; 7: 361–73.

    Google ученый

  • 57.

    Katz M, Durhuus T, Smits HP, Förster J. Производство метаболитов US 20130209613 A1. НАС; 2013.

  • 58.

    Wang JF, Xiong ZQ, Li SY, Wang Y. Повышение производства изопреноидов за счет систематической сборки и регулирования оттокных насосов в Escherichia coli .Appl Microbiol Biotechnol. 2013; 97: 8057–67.

    CAS Статья Google ученый

  • 59.

    Чжан Ц., Чен Х, Стефанопулос Г, Too HP. Конструирование транспортера оттока заметно улучшает производство аморфадиена в Escherichia coli . Biotechnol Bioeng. 2016; 113: 1755–63.

    CAS Статья Google ученый

  • 60.

    Чжан Р., Хуан Дж., Чжу Дж., Се Х, Тан Цюй, Чен Х, Ло Дж, Ло З.Выделение и характеристика нового гена транспортера ABC PDR-типа PgPDR3 из Panax ginseng C.A. Мейер, индуцированный метилжасмонатом. Мол Биол Реп. 2013; 40: 6195–204.

    CAS Статья Google ученый

  • 61.

    Цао Х., Нуруззаман М., Сю Х, Хуанг Дж., Ву К., Чен Х, Ли Дж., Ван Л., Чжон Дж. Х., Пак С.Дж. Транскриптомный анализ придаточных корней женьшеня женьшеня, вызванного метилжасмонатом, для обнаружения предполагаемых генов биосинтеза и транспорта гинзенозидов.Int J Mol Sci. 2015; 16: 3035–57.

    CAS Статья Google ученый

  • 62.

    Леонард Э., Ян Й., Фаулер З.Л., Ли З., Лим К.Г., Лим К.Х., Коффас М.А. Улучшение штамма рекомбинантной Escherichia coli для эффективного производства растительных флавоноидов. Mol Pharm. 2008. 5: 257–65.

    CAS Статья Google ученый

  • 63.

    Барбака К., Баер-Дубовска В. Поиск путей улучшения продукции артемизинина у растений и микроорганизмов.Curr Pharm Biotechnol. 2011; 12: 1743–51.

    CAS Статья Google ученый

  • 64.

    ВОЗ. Всемирный доклад о малярии. 2015. http://www.who.int/malaria/publications/world-malaria-report-2015/report/en/.

  • 65.

    Абдин М.З., Алам П. Генная инженерия биосинтеза артемизинина: перспективы совершенствования его производства. Acta Physiol Plant. 2015; 37: 1–12.

    CAS Статья Google ученый

  • 66.

    Paddon CJ, Westfall PJ, Pitera DJ, Benjamin K, Fisher K, McPhee D, Leavell MD, Tai A, Main A, Eng D, et al. Полусинтетическое производство высокого уровня мощного противомалярийного артемизинина. Природа. 2013; 496: 528–32.

    CAS Статья Google ученый

  • 67.

    Ленихан Дж. Р., Цурута Х., Диола Д., Реннингер Н. С., Регентин Р. Разработка промышленного процесса ферментации артемизиновой кислоты для поддержки рентабельного производства противомалярийных комбинированных терапий на основе артемизинина.Biotechnol Prog. 2008; 24: 1026–32.

    CAS Статья Google ученый

  • 68.

    Baadhe RR, Mekala NK, Parcha SR, Prameela Devi Y. Комбинация технологии репрессии ERG9 и ферментного слияния для улучшения производства аморфадиена в Saccharomyces cerevisiae . J. Anal Methods Chem. 2013; 2013: 140469.

    Артикул Google ученый

  • 69.

    Мартин В.Дж., Питера Д.Д., Уизерс С.Т., Ньюман Д.Д., Кизлинг Д.Д.Разработка мевалонатного пути в Escherichia coli для производства терпеноидов. Nat Biotechnol. 2003. 21: 796–802.

    CAS Статья Google ученый

  • 70.

    Chun-Fu WU, Yang JY, Wang F, Wang XX. Ресвератрол: ботаническое происхождение, фармакологическая активность и применение. Chin J Nat Med. 2013; 11: 1–15.

    Google ученый

  • 71.

    Dgw A, Wyl B, Gtc A.Школа AM, Университет NT, Тонг N: простой метод выделения и очистки ресвератрола из Polygonum cuspidatum. J Pharm Anal. 2013; 3: 241–7.

    Артикул Google ученый

  • 72.

    Ge S, Yin T, Xu B, Gao S, Hu M. Куркумин влияет на распределение ресвератрола в фазе II посредством ингибирования переносчиков оттока MRP2 и BCRP. Pharm Res. 2016; 33: 590–602.

    CAS Статья Google ученый

  • 73.

    Mei YZ, Liu RX, Wang DP, Wang X, Dai CC. Биокатализ и биотрансформация ресвератрола в микроорганизмах. Biotech Lett. 2015; 37: 9–18.

    CAS Статья Google ученый

  • 74.

    Beekwilder J, Wolswinkel R, Jonker H, Hall R, de Vos CH, Bovy A. Производство ресвератрола в рекомбинантных микроорганизмах. Appl Environ Microbiol. 2006; 72: 5670–2.

    CAS Статья Google ученый

  • 75.

    Watts KT, Lee PC, Schmidt-Dannert C. Биосинтез растительных поликетидов стильбена в метаболически сконструированных Escherichia coli . BMC Biotechnol. 2006; 6: 1–12.

    Артикул Google ученый

  • 76.

    Кацуяма Ю., Фуна Н., Мияхиса И., Хориноути С. Синтез неестественных флавоноидов и стильбенов путем использования пути биосинтеза растений в Escherichia coli . Chem Biol. 2007; 14: 613–21.

    CAS Статья Google ученый

  • 77.

    Wu J, Liu P, Fan Y, Han B, Du G, Zhou J, Chen J. Многомерная модульная метаболическая инженерия Escherichia coli для производства ресвератрола из l-тирозина. J Biotechnol. 2013; 167: 404–11.

    CAS Статья Google ученый

  • 78.

    Лим К.Г., Фаулер З.Л., Хюллер Т., Шаффер С., Коффас М.А. Производство высокопродуктивного ресвератрола в модифицированной кишечной палочке Escherichia coli . Appl Environ Microbiol. 2011; 77: 3451–60.

    CAS Статья Google ученый

  • 79.

    Durhuus T, Förster J, Katz M, Smits HP. Производство метаболитов. WO; 2011.

  • 80.

    Ye VM, Bhatia SK. Стратегии разработки путей для производства полезных каротиноидов в микробных организмах-хозяевах. Biotech Lett. 2012; 34: 1405–14.

    CAS Статья Google ученый

  • 81.

    Омони АО, Алуко РЭ. Антиканцерогенные и антиатерогенные эффекты ликопина: обзор. Trends Food Sci Technol. 2005; 16: 344–50.

    CAS Статья Google ученый

  • 82.

    Muller L, Caris-Veyrat C, Lowe G, Bohm V. Ликопин и его антиоксидантная роль в профилактике сердечно-сосудистых заболеваний — критический обзор. Crit Rev Food Sci Nutr. 2016; 56: 1868–79.

    Артикул Google ученый

  • 83.

    Maritim AC, Sanders RA, III JBW. Диабет, окислительный стресс и антиоксиданты: обзор. J Biochem Mol Toxicol.2003; 17: 24–38.

    CAS Статья Google ученый

  • 84.

    Исследование B. Мировой рынок каротиноидов FOD025E. 2015. http://www.bccresearch.com/market-research/food-and-beverage/carotenoids-global-market-report-fod025e.html.

  • 85.

    Matagómez LC, Montañez JC, Méndezzavala A, Aguilar CN. Биотехнологическое производство каротиноидов дрожжами: обзор. Факт о микробной клетке. 2014; 13: 1–11.

    Артикул Google ученый

  • 86.

    Альпер Х., Мияоку К., Стефанопулос Г. Конструирование штаммов E. coli с избыточным продуцированием ликопина путем комбинирования систематических и комбинаторных мишеней для нокаута гена. Nat Biotechnol. 2005; 23: 612–6.

    CAS Статья Google ученый

  • 87.

    Чо Н.Р., Пак М.С., Ли Д.Х., Чанг Х.С., Ким Дж. Способ получения ликопина с использованием рекомбинантной Esherichia coli . НАС; 2014.

  • 88.

    Marcos Rodríguez AT, Estrella De CA, Costa Perez J, Oliver Ruiz MA, Fraile Yecora N, De La FMJL, Rodríguez Saiz M, Diez Garcia B, Peiro Cezon E, Muñoz Ruiz A.Способ получения ликопина путем ферментации выбранных штаммов Blackeslea trispora, составы и использование ликопина, полученного таким образом. НАС; 2010.

  • 89.

    Мехта Б.Дж., Образцова И.Н., Сердаолмедо Э. Мутанты и интерсексуальные гетерокарионы Blakeslea trispora для производства бета-каротина и ликопина. Appl Environ Microbiol. 2003; 69: 4043–8.

    CAS Статья Google ученый

  • 90.

    Schmidt I, Schewe H, Gassel S, Jin C, Buckingham J, Hümbelin M, Sandmann G, Schrader J.Биотехнологическое производство астаксантина с помощью Phaffia rhodozyma / Xanthophyllomyces dendrorhous. Appl Microbiol Biotechnol. 2011; 89: 555–71.

    CAS Статья Google ученый

  • 91.

    Прайс СП, Чен Л., Уитакер В.Б., Папуцакис Э., Чен У. Конструированный ферментный узел без каркасов для улучшенного использования метанола. Proc Natl Acad Sci USA. 2016; 113: 12691–6. DOI: 10.1073 / pnas.1601797113.

    CAS Статья Google ученый

  • 92.

    Антоновский Н., Глейзер С., Нур Э, Зохар Ю., Херц Э, Баренхольц Ю., Зельцбух Л., Амрам С., Уайдес А., Теппер Н. и др. Синтез сахара из CO 2 в Escherichia coli . Клетка. 2016; 166: 115–25.

    CAS Статья Google ученый

  • 93.

    Kallscheuer N, Vogt M, Stenzel A, Gatgens J, Bott M, Marienhagen J. Создание платформенного штамма Corynebacterium glutamicum для производства стильбенов и (2S) -флаванонов.Metab Eng. 2016; 38: 47–55.

    CAS Статья Google ученый

  • 94.

    Park SR. Повышенное производство флавоноидов в Streptomyces venezuelae с помощью метаболической инженерии. J Microbiol Biotechnol. 2011; 21: 1143–6.

    CAS Статья Google ученый

  • 95.

    Araya-Garay JM, Feijoo-Siota L, Rosa-dos-Santos F, Veiga-Crespo P, Villa TG. Создание новых штаммов Pichia pastoris X-33 для производства ликопина и бета-каротина.Appl Microbiol Biotechnol. 2012; 93: 2483–92.

    CAS Статья Google ученый

  • 96.

    Шоу А.Дж., Лам Ф.Х., Гамильтон М., Консильо А, Мейсуэн К., Бревнова Е.Е., Гринхаген Е., Латуф РГ, Южный ЧР, Ван Д.Х. Метаболическая инженерия микробного конкурентного преимущества для промышленных процессов ферментации. Наука. 2016; 353: 583–6.

    CAS Статья Google ученый

  • 97.

    Юэ Х, Лин Ц, Ян Т, Чен Х, Чен И, Дэн Х, Ву Ц, Чен Дж, Чен ГК. Открытый и непрерывный процесс на основе морской воды для производства полигидроксиалканоатов рекомбинантным Halomonas campaniensis LS21, выращенным на смешанных субстратах. Биотехнология Биотопливо. 2014; 7: 1–12.

    Артикул Google ученый

  • Границы | Метаболическая инженерия микроорганизмов для производства флавоноидов

    Введение

    Флавоноиды — это особый класс встречающихся в природе вторичных метаболитов, которые синтезируются растениями (Pandey et al., 2016) и гриб (Correa et al., 2011). Химически все флавоноиды обладают общей структурой 15-углеродного скелета с двумя фенильными кольцами (кольца A и B), соединенными гетероциклическим кольцом (кольцо C). В путях биосинтеза флавоноидов кольцо А образуется из малонил-КоА, а кольцо В образуется из 4-кумароил-КоА, который синтезируется из фенилаланина через путь шикимата (Averesch and Krömer, 2018). В зависимости от химической структуры флавоноиды можно разделить на несколько различных подкатегорий, таких как халконы, флаваноны, флавоны, изофлавоны, флавонолы, флаванонолы, флаванолы и антоцианы (Tohge et al., 2017) (рисунок 1).

    Рисунок 1. Молекулярные структуры различных подклассов флавоноидов. Основа каждого подкласса окрашена в синий цвет.

    Флавоноиды выполняют многие важные функции в растениях, такие как формирование пигментации для окраски цветов (Nakayama et al., 2000), симбиотическая фиксация азота (Fox et al., 2001) и защита от ультрафиолета (Kootstra, 1994). Кроме того, флавоноиды демонстрируют значительное физиологическое и биохимическое воздействие на млекопитающих из-за их уникальной химической структуры.Большинство флавоноидов обладают сильной антиоксидантной (Naderi et al., 2003), противовоспалительной (Kim et al., 2004), антибактериальной (Cushnie and Lamb, 2011) и противоопухолевой активностью (Ravishankar et al., 2013); таким образом, они широко используются в пищевой, нутрицевтической и фармацевтической промышленности (Kay et al., 2012; Georgiev et al., 2014; Hajimehdipoor et al., 2014). Например, апигенин можно использовать для лечения метаболического синдрома, вызванного диетой с высоким содержанием жиров и фруктозы, путем снижения уровней лептина и повышения уровней адипонектина (Zhang et al., 2018). Галлат эпигаллокатехина и нарингенин способны поддерживать баланс липидов и жиров в крови (Zhang et al., 2018). Кверцетин, генистеин и нарингенин оказывают значительное влияние на снижение уровней экспрессии провоспалительных цитокинов, фактора некроза опухоли α и интерлейкина 6 (Zhang et al., 2018). Благодаря их значительной биоактивности мировой рынок флавоноидов быстро растет и, как ожидается, достигнет 1,05 миллиарда долларов в 2021 году (Shah et al., 2019).

    В настоящее время производство флавоноидов в основном зависит от экстракции растений, которая ограничивается трудностями в доступе и поставке сырья, низкой распространенности и доступности в растениях, а также низким выходом продукта (Jiang et al., 2005; Pyne et al., 2019). Химические методы производства флавоноидов также не являются предпочтительными из-за сложных процессов, строгих условий реакции и плохой селективности (Pyne et al., 2019). В качестве альтернативы введение естественных путей биосинтеза флавоноидов из растений в микробных хозяев с помощью синтетической биологии и стратегий метаболической инженерии представляет собой возможный подход к производству флавоноидов. В 2003 году впервые было сообщено о микробном синтезе флавоноидов; с тех пор в микроорганизмах были успешно сконструированы различные пути биосинтеза флавоноидов (Hwang et al., 2003). В последнее время в строительстве фабрик микробных клеток для эффективного производства флавоноидов был достигнут большой прогресс (Pei et al., 2020; Wang et al., 2020; Yang et al., 2020). В этой статье мы резюмируем недавние и заметные достижения в области метаболической инженерии и синтетической биологии в направлении синтеза флавоноидов с соответствующими примерами случаев (таблица 1). Представлены эффекты для создания искусственных путей биосинтеза флавоноидов в микробах и для оптимизации титра продуктов, выхода и продуктивности.

    Таблица 1. Метаболическая инженерия продукции флавоноидов в микроорганизмах.

    Метаболическая инженерия микроорганизмов для производства флавоноидов

    Путь биосинтеза флавоноидов у растений был четко проиллюстрирован, который простирается от пути шикимата (Falcone Ferreyra et al., 2012) (Рис. 2). По этому пути нативные предшественники фенилаланин и тирозин превращаются в p -кумароил-КоА. Затем одна молекула p -кумароил-КоА и три молекулы малонил-КоА превращаются в нарингенин халкон посредством циклизации Клайзена под действием халконсинтазы (ХС).Последовательно халкон нарингенина автоматически превращается в нарингенин или катализируется изомеразой халкона (CHI). Образующийся нарингенин на этом пути служит важным промежуточным звеном для синтеза других классов флавоноидов. Например, флавоны образуются в результате экспрессии флавон-синтазы (FNS). Изофлавоноиды образуются путем введения изофлавон-синтазы (IFS). Совместная экспрессия флавоноид-3-гидроксилазы (F3H) и флавонолсинтазы (FLS) приводит к образованию флавонолов, тогда как флаванолы могут быть получены путем совместной экспрессии F3H, дигидрофлавонол-4-редуктазы (DFR) и лейкоантоцианидинредуктазы (LAR) и дальнейшего введения антоцианида (синтазина). ANS) в этот путь может генерировать антоцианы.В последние годы с развитием метаболической инженерии и синтетической биологии все больше и больше флавоноидов получают биосинтез (Shah et al., 2019; Nabavi et al., 2020).

    Рисунок 2. Биосинтетические пути флавоноидов в растениях. TAL, тирозин-аммиаклиаза; PAL, фенилаланинаммиаклиаза; C4H, циннамат-4-гидроксилаза; CPR, редуктаза цитохрома P450; 4CL, 4-кумароил-КоА лигаза; АСС, ацетил-КоА карбоксилаза; CHS, халкон-синтаза; CHI, халконизомераза; ФНС, флавон-синтаза; IFS, изофлавон-синтаза; F3H, флаванон-3β-гидроксилаза; FLS, флавонолсинтаза; DFR, дигидрофлавонолредуктаза; LAR, лейкоантоцианидин редуктаза; ANS, антоцианидинсинтаза.Сплошные линии указывают на один шаг, а пунктирные линии — на несколько шагов.

    Флаваноны

    Флаваноны, включая нарингенин, пиноцембрин и эриодиктиол, являются первыми флавоноидными продуктами в пути биосинтеза флавоноидов. Обычно они присутствуют в цитрусовых, таких как грейпфрут (Peterson et al., 2006), апельсины (Khan et al., 2010) и лимоны (Peterson et al., 2006), и обладают противовоспалительным действием (Bano et al. , 2013), антиоксидант (Miranda et al., 2000), противоопухолевый (Ketabforoosh et al., 2014) и другие важные фармакологические мероприятия. Основным скелетом флаванонов является 2-фенилхромоген, для которого характерно насыщение двойной связи C2 – C3. Структура флаванонов очень активна, и ее можно модифицировать гидроксилированием (Britsch and Grisebach, 1986), метилированием (Koirala et al., 2016) и гликозилированием (Di Majo et al., 2005). Биосинтез нарингенина из предшественника p -кумариновой кислоты был достигнут в Corynebacterium glutamicum за счет сверхэкспрессии CHS и CHI из Petunia hybrida .Нарушая конкурирующие пути, в сконструированных штаммах-хозяевах продуцировалось 35 мг / л нарингенина (Kallscheuer et al., 2016). Считалось, что низкие титры ограничены низкой ферментативной активностью CHS. В качестве альтернативы, Gao et al. (2019) представили SmCHS2 из Silybum marianum в Saccharomyces cerevisiae и получили 648,63 мг / л нарингенина путем экзогенного кормления кумаровой кислотой p .

    De novo также был достигнут биосинтез флаванонов из простых источников углерода.Santos et al. представили гены RgTAL (кодирующие тирозин-аммиаклиазу) из Rhodotorula glutinosa , Pc4CL (кодирующие лигазу 4-кумаровую кислоту-КоА) из Petroselinum crispum , PhCHS из P. hybrida и Ms из Medicago sativa в штамм S. cerevisiae с избыточным продуцированием тирозина, что привело к получению 29 мг / л нарингенина с использованием глюкозы в качестве субстрата (Santos et al., 2011). В другом примере путь биосинтеза нарингенина в Arabidopsis thaliana , содержащий фенилаланин аммиаклиазу (PAL), циннамат-4-гидроксилазу (C4H), цитохром P450 редуктазу (CPR), 4CL , CHS и CHI, был перенесен в С.cerevisiae . Исходный рекомбинантный штамм-хозяин генерировал только 1,4 мг / л нарингенина из глюкозы. Для дальнейшего улучшения титра эффект подавления обратной связи был устранен путем делеции ARO3 и введения мутанта ARO4 G 226 S . В результате продукция нарингенина увеличилась до 2,8 мг / л. Более того, нарушение конкурирующего пути и усиление снабжения предшественником p -coumaric acid позволило штамму хозяина продуцировать 54.5 мг / л нарингенина в экспериментах с встряхиваемыми колбами (Koopman et al., 2012). Недостаточная поставка прекурсора по-прежнему является доминирующим фактором, ограничивающим скорость производства нарингенина на высоком уровне.

    Малонил-КоА не только служит важным предшественником для производства флаванонов, но также является важным промежуточным продуктом для синтеза жирных кислот, поддерживающих рост клеток в микроорганизмах (Takamura and Nomura, 1988). Таким образом, существует компромиссное соотношение между биосинтезом флаванона и ростом клеток.Чтобы сбалансировать производственную фазу и фазу роста, Леонард и др. (2008) сконструировали путь ассимиляции малоната в рекомбинантном нарингенин-продуцирующем штамме Escherichia coli путем сверхэкспрессии малонатсинтазы (MatB) и белка-носителя малоната (MatC), выделенных из Rhizobium trifolii . Введение пути ассимиляции малоната позволяет сконструированному штамму E. coli синтезировать малонил-КоА путем экзогенного питания малонатом. Наконец, рекомбинантный E.coli продуцировал 155 мг / л нарингенина, что указывает на 2,7-кратное улучшение титра по сравнению с родительским штаммом без сверхэкспрессии пути ассимиляции малоната (Leonard et al., 2008). Церуленин представляет собой ингибитор синтазы жирных кислот для подавления уровней экспрессии fabB и fabF . Согласно отчету, добавление 200 мкМ церуленина может увеличить концентрацию малонил-КоА с 2 пмоль / мг сухого веса клеток (CDW) до 105 пмоль / мг CDW за 1,5 часа (van Summeren-Wesenhagen and Marienhagen, 2015).За счет экзогенного добавления церуленина в культуры титр нарингенина увеличивался с 29 мг / л до 84 мг / л в сконструированных штаммах-хозяевах (Santos et al., 2011). Хотя эти стратегии могут эффективно повышать уровень малонил-КоА в сконструированном штамме-хозяине, тем самым увеличивая титр флаванонов, высокая стоимость малоната и церуленина ограничивает их использование в производстве флаванонов на высоком уровне. У микробов малонил-КоА образуется из ацетил-КоА, катализируемого комплексом ацетил-КоА-карбоксилазы (АСС).Леонард и др. (2007) представили ACC из Pseudomonas luminescens в E. coli ; титр пиноцембрина достиг 196 мг / л, демонстрируя увеличение титра в 5,8 раза по сравнению с таковым в контрольных штаммах. Кроме того, доступность малонил-КоА также может быть улучшена за счет использования кластерной системы интерференции коротких палиндромных повторов с регулярными интервалами (CRISPRi) для подавления уровня экспрессии генов, участвующих в основных метаболических путях. Например, Wu et al.(2015) использовали систему CRISPRi для подавления уровня экспрессии генов fabF , fumC , fabB , suC и adhE в рекомбинантной E. coli , чтобы перенаправить поток углерода в направлении малониловой кислоты. -Синтез CoA. Полученный штамм генерировал 421,6 мг / л нарингенина из тирозина, что является самым высоким показателем продуцирования нарингенина, о котором сообщалось до сих пор (Wu et al., 2015). Недавно Лю и соавт. (2017) пытались улучшить титр нарингенина в S.cerevisiae путем разделения пути биосинтеза нарингенина на три модуля: первый модуль, содержащий TAL, 4CL, CHS и CHI, применялся для биосинтеза нарингенина. Второй модуль, несущий ацетил-КоА-синтазу, АТФ-цитратлиазу и АСС, использовали для накопления малонил-КоА, тогда как третий модуль, несущий мутант ARO4 K 229 L , использовали для производства большего количества тирозина. Конструирование и интеграция этих трех модулей в конечный штамм привели к получению 90 мг / л нарингенина из глюкозы (Lyu et al., 2017). В другом примере был применен итеративный высокопроизводительный метод скрининга для точной настройки уровня экспрессии генов биосинтетического пути нарингенина. Была сконструирована библиотека промоторов, содержащая серию конститутивных промоторов с разной силой. Эти промоторы случайным образом помещали перед генами пути биосинтеза нарингенина. После нескольких раундов высокопроизводительного скрининга лучший рекомбинантный штамм E. coli продуцировал 191,9 мг / л нарингенина, что представляет собой двукратное увеличение титра по сравнению с титром в штамме, оптимизированном с использованием традиционной стратегии модульной оптимизации (Zhou et al. ., 2019).

    На основе пути биосинтеза нарингенина эриодиктиол может быть получен путем введения F3’H в этот путь. 4-гидроксифенилацетат-3-гидроксилаза (EcHpaBC) была идентифицирована и охарактеризована из E. coli . Он способен напрямую преобразовывать нарингенин в эриодиктиол с продуцированием 62,7 мг / л эриодиктиола (Jones et al., 2016a). В другом примере цитохром P450 F3’H, выделенный из Gerbera hybrida , функционально экспрессировался в S.cerevisiae , в результате чего из нарингенина образуется эриодиктиол 200 мг / л (Amor et al., 2010). Кроме того, при прямом введении кофейной кислоты, а не p -кумаровой кислоты в качестве предшественника, эриодиктиол также может быть биосинтезирован посредством сверхэкспрессии 4CL, CHS и CHI. Fowler et al. (2009) представили 4CL, CHS и CHI в E. coli ; 114 мг / л эриодиктиола получали путем экзогенного добавления кофеиновой кислоты в культуры. De novo Биосинтез эриодиктиола из простого источника углерода в E.coli также была получена путем коэкспрессии TAL, 4CL, CHS и CHI с цитохромом P450 F3’H. В этом исследовании слитый белок (tF3’H-tCPR) был создан путем слияния усеченного F3’H с усеченным CPR для улучшения растворимости и ферментативной активности F3’H. Наконец, только 5,7 мг / л эриодиктиола было получено с использованием глюкозы в качестве субстрата (Zhu et al., 2014). Низкая каталитическая эффективность F3’H все еще является фактором, ограничивающим скорость этого пути. Считается, что по сравнению с дрожжами бактериальным хозяевам обычно трудно экспрессировать ферменты цитохрома P450, потому что они неспособны выполнять посттрансляционные модификации и экспрессию мембранных белков.При переносе пути биосинтеза эриодиктиола de novo в S. cerevisiae титр эриодиктиола улучшился до 152 мг / л по сравнению с глюкозой (Eichenberger et al., 2018).

    Флавоны

    Структурно флавоны соответствуют подгруппе флавоноидов, которая характеризуется 2-фенилхромоген-4-оновой основной цепью и имеет двойную связь между C2 и C3. Флавоны обычно содержатся во фруктах и ​​овощах, таких как морковь, петрушка, мята, красный перец и перец чили (Panche et al., 2016) и обладают огромными преимуществами для здоровья, такими как противовоспалительное (Huang and Ho, 2010), противоопухолевое (Li-Weber, 2009), антиоксидантное (Škerget et al., 2005), гипогликемическое и гиполипидемическое действие (Sharma et al. , 2008) и профилактике сердечных заболеваний (Hirvonen et al., 2001). Апигенин, обычный флавон, может быть синтезирован из нарингенина, катализируемого ФНС. Первый случай биосинтеза апигенина в микроорганизмах был зарегистрирован в 2006 году. Leonard et al. (2006) представили 4CL, CHS, CHI и FNS от P.crispum в E. coli ; 415 мкг / л апигенина было произведено из p -кумаровой кислоты, а степень превращения составила всего 2,9% (Леонард и др., 2006). С тех пор сообщалось о непрерывных исследованиях по улучшению производства апигенина. Ли и др. (2015) сконструировали путь биосинтеза апигенина в E. coli , состоящий из 4CL из Oryza sativa , CHS из Populus euramericana , CHI из Medicago truncatula и FNS из Parsley в E.coli , 23 мг / л апигенина получали из p -кумаровой кислоты. Затем титр был дополнительно увеличен до 30 мг / л за счет повышения уровней экспрессии 4CL и CHS (Lee et al., 2015). Гидроксилирование апигенина в положении 3 ‘приводит к лютеолину. Эта реакция обычно катализируется F3’H. Недавно Marin et al. сконструировали путь биосинтеза лютеолина de novo в Streptomyces albus , используя F3’H из A. thaliana , и сгенерировали 0.09 мг / л лютеолина (Marín et al., 2017). Совсем недавно байкалеин (5,6,7-тригидроксифлавон) и скутеллареин (4 ‘, 5,6,7-тетрагидроксифлавон) также были синтезированы в E. coli . Сверхэкспрессия PAL из Rhodotorula toruloides , 4CL и FNS из P. crispum , CHS из P. hybrida , CHI из M. sativa , F6’H (кодирующего флавоноид 6′-гидроксилазу) из Scutellaria baicalensis и CPR из A. thaliana , байкалеин и скутеллареин могут быть получены из тирозина и фенилаланина соответственно (рис. 3).Чтобы удалить стадию ограничения скорости, гидрофильная модификация 2B1 была включена с N-концевым усеченным F6’H, чтобы увеличить его растворимость в E. coli , в результате чего во встряхиваемой колбе было получено 8,5 мг / л байкалеина и 47,1 мг / л скутеллареина. эксперименты. Дальнейшее повышение доступности малонил-КоА значительно улучшило титры до 23,6 мг / л байкалеина и 106,5 мг / л скутеллареина (Li et al., 2019).

    Рис. 3. Микробное производство скутелларина в E. coli . (A) Биосинтез скутелларина из фенилаланина; (B) Биосинтез скутелларина из апигенина. PAL, фенилаланинаммиаклиаза; C4H, циннамат-4-гидроксилаза; 4CL, 4-кумароил-КоА лигаза; CHS, халкон-синтаза; CHI, халконизомераза; FNSII, флавон-синтаза II; F6H, флавон-6-гидроксилаза; F7GAT, флавоноид-7-O -глюкуронозилтрансфераза; UDPGDH, UDP-глюкозодегидрогеназа. Сплошные линии указывают на один шаг, а пунктирные линии — на несколько шагов.

    За исключением гидроксилирования, другие модификации, такие как метилирование и гликозилирование, также способствуют расширению структурного разнообразия флавонов.Например, путем введения метильной группы в сайт C7 апигенина получают одно соединение, известное как генкванин. По сравнению с апигенином генкванин проявляет множество новых свойств, включая антибактериальную активность и активность по улавливанию радикалов. Ли и др. (2015) представили апигенин 7-O -метилтрансферазу (POMT7) из Populus deltoides в штамм E. coli , избыточно продуцирующий апигенин, для создания биосинтетического пути de novo для продукции генкванина; титр генкванина достиг 41 мг / л при использовании глюкозы в качестве источника углерода.Путем введения глюкозильной группы в химическую структуру апигенина в сайте C7 продукт апигенин-7- O -β- D -глюкозид проявляет несколько дополнительных биоактивностей, таких как антипролиферативная и более высокая антиоксидантная активность. Туан и др. достигнута продукция апигенин-7- O -β- D -глюкозида из p -кумаровой кислоты в E. coli с использованием гликозилтрансферазы (PaGT3) из Phytolacca americana . Чтобы исключить образование побочных продуктов, была использована стратегия сокультивирования путем разделения всего пути на два штамма.Первый штамм содержит 4CL из Nicotiana tabacum , CHS из P. hybrida , CHI из M. sativa и FNS из Parsley для образования апигенина из p -кумаровой кислоты, тогда как второй штамм несет PaGT3 и система избыточного продуцирования UDP-глюкозы для преобразования апигенина в апигенин-7-O -β- D -глюкозид. Путем оптимизации исходного соотношения инокулята двух штаммов титр апигенин-7-O -β- D -глюкозид достиг 16.6 мг / л, что в 2,5 раза выше, чем у штамма-продуцента монокультуры (Thuan et al., 2018). Бревискапин — это неочищенный экстракт флавоноидов, выделенный из Erigeron breviscapus . Он давно используется для лечения сердечно-сосудистых и цереброваскулярных заболеваний (Zhong et al., 2005). Основными активными компонентами бревискапина являются скутелларин и апигенин-7-O -глюкуронид. Лю и др. (2018) идентифицировали два ключевых фермента, участвующих в пути биосинтеза бревискапина у E.breviscapus : один представляет собой флавоноид 7- O -глюкуронозилтрансферазу, а другой — флавон-6-гидроксилазу. Введение этих двух ферментов в штамм S. cerevisiae , сверхпродуцирующий апигенин, привело к получению 108 мг / л скутелларина и 185 мг / л апигенин-7-O -глюкуронида с использованием глюкозы в качестве источника углерода (Liu et al., 2018). Совсем недавно была идентифицирована и охарактеризована гликозилтрансфераза C (Gt6CGT) из Gentiana triflora . Он проявляет значительную ферментативную активность по превращению апигенина и лютеолина в изовитексин и изоориентин соответственно.Этот фермент был соединен с сахарозосинтазой ( GmSUS ) из ​​ Glycine max для регенерации UDP-глюкозы. После оптимизации условий сопряженной реакции производство изовитексина и изоориентина достигло 3772 и 3829 мг / л с молярной степенью конверсии 97,1 и 94,7% соответственно (Pei et al., 2020).

    Изофлавоны

    Изофлавоны отличаются от флавонов положением фенильной группы в сайте C3, который находится в сайте C2 во флавонах. Они представляют собой класс фитоэстрогенов, продуцируемых бобовыми растениями (Kaufman et al., 1997; Chon, 2013), такие как соя, зеленая фасоль, проростки люцерны и вигна. Изофлавоны действуют как эстрогены в организме человека и могут использоваться для лечения различных гормональных нарушений, таких как рак простаты (Kumar et al., 2004), рак груди (Dong and Qin, 2011), остеопороз (Taku et al., 2011) и сердечно-сосудистые заболевания (Watanabe et al., 2002). Биосинтез изофлавонов может быть достигнут из флаванонов, катализируемых IFS, мембраносвязанной монооксигеназой цитохрома P450. Использование нарингенина и ликвиритигенина в качестве субстратов для IFS, что приводит к образованию генистеина и даидзеина соответственно.Кацуяма и др. (2007) ввели CHS, CHI и IFS, выделенные из Glycyrrhiza echinata , в штамм дрожжей S. cerevisiae ; 0,34 мг / л генистеина получали путем подачи N -ацетилцистеамин-связанной p -кумаровой кислоты в качестве предшественника. Для достижения биосинтеза генистеина из тирозина нарингенин, сверхпродуцирующий штамм E. coli , сокультивировали с рекомбинантным S. cerevisiae , несущим ген IFS , что привело к получению генистеина из тирозина в концентрации 6 мг / л (Katsuyama et al., 2007). Титр был дополнительно увеличен до 100 мг / л путем оптимизации условий совместного культивирования (Horinouchi, 2009). Чтобы избежать ограничений транспорта метаболитов через клеточные стенки двух разных штаммов, полезно собрать весь путь в один штамм. Trantas et al. (2009) реконструировали весь путь биосинтеза генистеина в S. cerevisiae путем коэкспрессии семи генов, кодирующих PAL, CPR, C4H, 4CL, CHS, CHI и IFS. Наилучшим образом сконструированный штамм синтезировал генистеин 0,1 мг / л, когда культуры питались фенилаланином в качестве предшественника (Trantas et al., 2009). Однако экспрессия IFS в бактериях очень затруднена из-за отсутствия системы переноса электронов. Для функциональной экспрессии IFS в E. coli , окислительно-восстановительный партнер CPR из Catharanthus roseus был слит с IFS из G. max с помощью линкерной последовательности глицин-серин-треонин, что позволило ему эффективно переносить электрон от НАД (Ф) Н на субстрат. Затем конец N этого слитого белка был усечен и добавлен к индивидуальному сигналу распознавания мембраны.Экспрессия этой конструкции в E. coli позволила эффективно продуцировать 10 и 18 мг / г сухой массы клеток генистеина и даидзеина из нарингенина и ликвиритигенина, соответственно (Леонард и Коффас, 2007). В другом исследовании IFS из красного клевера был усечен путем удаления первой 21 аминокислоты на конце N , а затем он был слит с CPR из риса. Рекомбинант E. coli , экспрессирующий этот слитый белок, может продуцировать генистеин в концентрации 16 мг / л из нарингенина (Kim et al., 2009).

    Химические структуры изофлавонов также могут быть конъюгированы с гидроксилазами, метилтрансферазами и глюкозилтрансферазой с гидроксилазами (Tahara et al., 1991), метильными (Edwards and Dixon, 1991) и гликозильными (Ismail and Hayes, 2005) группами. Сверхэкспрессия гидроксилазы P450 (CYP57B3) из Aspergillus oryzae и СЛР из S. cerevisiae в Pichia pastoris привела к 3,5 мг / л оробола (3′-гидроксиенистеина) в периодической культуре с подпиткой, получавшей генистеин. в качестве предшественника (Ding et al., 2015). Wang et al. дополнительно увеличили титр оробола до 23 мг / л путем конструирования мутантного штамма P. pastoris путем периодической обработки перекисью водорода (Wang et al., 2016). CYP57B3 также использовался для гидроксилирования даидзеина в рекомбинантном штамме P. pastoris . Интересно, что при использовании даидзеина в качестве субстрата были получены три ортогидроксилированных производных даидзеина, включая 8-гидроксидаидзеин (8-OHDe), 3′-гидроксидаидзеин (3′-OHDe) и 6-гидроксидаидзеин (6-OHDe) с превращением скорость 2.4, 0,9 и 36,3% соответственно (Chang et al., 2013). Чтобы улучшить каталитическую эффективность гидроксилазы и избежать образования побочных продуктов, тирозиназа из Bacillus megaterium функционально отображалась на спорах Bacillus subtilis с использованием CotE в качестве якорного белка (Hosseini-Abari et al., 2016). Эта отображаемая спорами тирозиназа способна эффективно гидроксилировать 1 мМ генистеина в 1 мМ оробол со 100% степенью конверсии за 90 минут (Abari and Tayebi, 2019). Разнообразие изофлавонов также можно расширить за счет реакций метилирования.Koirala et al. (2019) сконструировали рекомбинантный штамм E. coli для метилирования изофлавонов путем сверхэкспрессии нативного EcSAM , кодирующего S -аденозу- L -метионин (SAM) синтазу и SaOMT2 , кодирующего O -метилтрансферазу из Streptomyces avermitilis . При использовании генистеина и даидзеина в качестве субстратов были получены 4′- O -метилгенистеин и 4′- O -метилдаидзеин. После оптимизации концентраций субстрата, времени инкубации и условий культивирования, 46.Было получено 81 мг / л 4′- O -метилгенистеина и 102,88 мг / л 4′- O -метил-даидзеина (Koirala et al., 2019). В другом примере генистеин был превращен в 5,7,3′- O -тригидрокси-4′-метоксиизофлавон и 5,7,4′-тригидрокси-3′-метоксиизофлавон двумя последовательными биореакциями, включая 3′-гидроксилирование, катализируемое один рекомбинантный штамм E. coli , содержащий тирозиназу из B. megaterium , а затем метилирование, катализируемое другим рекомбинантным E.coli , экспрессирующий O -метилтрансферазу из Streptomyces peucetius (Chiang et al., 2017).

    Путем введения глюкозилтрансфераз можно получить изофлавоновые гликозиды. Гетерологичная сверхэкспрессия UDP-глюкозилтрансферазы UGT71G1 из M. truncatula позволила рекомбинантному штамму E. coli синтезировать 16,4 мг / л генистеина 7- O -глюкозида и 11,7 мг / л биоханина A 7- O — глюкозид из генистеина и биоханин A в 500 мл культуральной среды TB (He et al., 2008).

    Флавонолы и флаванолы

    Флавонолы можно рассматривать как производные флавонов; их структурное различие заключается в наличии 3-гидроксигруппы на флавонолах, которая отсутствует на флавонах. Флавонолы обычно содержатся в чае, красных винах, фруктах и ​​овощах (Panche et al., 2016). Флавонолы находят широкое применение в фармацевтической промышленности. Например, было доказано, что кверцетин эффективно подавляет метастазирование клеток меланомы (Caltagirone et al., 2000). Фисетин может лечить нейродегенеративные заболевания (Fazel Nabavi et al., 2016), такие как болезнь Альцгеймера и болезнь Хантингтона. Биосинтез флавонолов может быть достигнут путем совместной экспрессии F3H и FLS с флаванонами в качестве предшественников. Лю и др. (2019) ввели F3H и FLS в штамм Y-22 S. cerevisiae , продуцирующий нарингенин, , что придало рекомбинантному штамму способность генерировать кемпферол. Дальнейшие стратегии оптимизации, включая скрининг эффективных ферментов пути, нарушение конкурирующих путей, увеличение поставки предшественников PEP и E4P и митохондриальную инженерию F3H и FLS, значительно улучшили титр кемпферола до 86 мг / л (Lyu et al., 2019). Кверцетин представляет собой 3′-гидроксилированное производное кемпферола. Биосинтез кверцетина был достигнут за счет расширения пути биосинтеза кемпферола за счет сверхэкспрессии F3’H в S. cerevisiae. Когда в культуры добавляли нарингенин, лучший сконструированный штамм-хозяин продуцировал 0,38 мг / л кверцетина в течение 70-часового культивирования (Trantas et al., 2009). Недавно впервые было сообщено о биосинтезе кверцетина de novo у актиномицетов. В этом исследовании искусственный путь, содержащий TAL из Rhodobacter capsulatus , 4CL из S.coelicolor , CHS и CHI из G. max , нарингенин-3-диоксигеназа из P. crispum и FLS и F3’H из A. thaliana были сконструированы и введены в S. albus и S. Кирилл . Рекомбинантный S. albus давал более высокий титр кверцетина 0,1 мг / л (Marín et al., 2018). Физетин имеет очень похожую химическую структуру с кверцетином; гидроксилирование физетина по сайту C5 приводит к кверцетину. Согласно структурному сходству между физетином и кверцетином, новый биосинтетический путь для производства физетина был разработан путем привлечения ликвиритигенина в качестве промежуточного звена.Гетерологичная сверхэкспрессия TAL, 4CL, CHS и халконредуктазы (CHR) из Astragalus mongholicus и CHI, F3H, FLS, флавоноид-3′-монооксигеназы (FMO) и CPR в E. coli привела к 0,3 мг / л физетина из тирозина (Stahlhut et al., 2015). Недавно сообщалось о биосинтезе de novo кемпферола, кверцетина и физетина из простого источника углерода в S. cerevisiae . Наилучшим образом сконструированный штамм-хозяин продуцировал 26,6 мг / л кемпферола, 20,4 мг / л кверцетина и 2.3 мг / л физетина непосредственно из глюкозы (Rodriguez et al., 2017).

    Таксифолин, также известный как дигидрокверцетин, относится к флаванонолам. Биосинтез таксифолина может быть достигнут при использовании эриодиктиола в качестве прямого предшественника при катализе F3H. Недавно Lv et al. (2019a) сконструировали путь биосинтеза таксифолина, состоящий из TAL, 4CL, CHS, CHI, F3’H, CPR и F3H из Solanum lycopersicum . Интеграция этого пути в геном Yarrowia lipolytica привела к 48.1 мг / л таксифолина (Lv et al., 2019a). Затем для увеличения титра таксифолина применяли несколько стратегий оптимизации метаболической инженерии, таких как улучшение снабжения предшественником, увеличение числа копий ограничивающего скорость фермента CHS и скрининг эффективной СЛР. Конечный сконструированный штамм генерировал таксифолин 110,5 мг / л с использованием глюкозы в качестве источника углерода (Lv et al., 2019b). Таксифолин можно использовать в качестве предшественника для синтеза других важных соединений. Совсем недавно Lv et al. (2019c) представили оксидазу ванилилового спирта ( PsVAO ) из ​​ Penicillium simplicissimum и аскорбатпероксидазу ( APX1 ) из ​​ расторопши в E.coli для создания ферментативного каскада, способного эффективно преобразовывать таксифолин и эвгенол в силибин и изозилибин. В наилучших условиях культивирования было получено общее количество силибина и изозилибина 2,58 г / л с молярной степенью конверсии 76,7% в 3-литровом ферментере (Lv et al., 2019c). Исходя из этого, Yang et al. (2020) впервые достигли биосинтеза силибина и изозилибина из глюкозы в S. cerevisiae (рис. 4). В этом исследовании биосинтетические пути производства кониферилового спирта и таксифолина были индивидуально реконструированы в двух разных штаммах.Систематическая оптимизация этих двух путей позволила штаммам-хозяевам синтезировать соответственно 201,1 мг / л кониферилового спирта и 336,8 мг / л таксифолина. Используя APX1 в качестве катализатора, из кониферилового спирта и таксифолина было произведено 104,9 мг / л силибина и 192,3 мг / л изозилибина с выходом 62,5% (Yang et al., 2020).

    Рис. 4. Микробное производство силибина и изозилибина в S. cerevisiae . (A) Биосинтез кониферилового спирта из кофейной кислоты; (B) биосинтез таксифолина из p -кумароил-КоА.HaTAL, тирозин-аммиаклиаза из H. aurantiacus ; PaHpaB, 4-гидроксифенилацетат-3-монооксигеназа из P. aeruginosa ; EcHpaC, флавинредуктаза из E. coli ; AtCOMT1, O -метилтрансфераза 1 из A. thaliana ; At4CL5, лигаза 4-кумарат-CoA 5 из A. thaliana ; AtCCR1, циннамоил-КоА редуктаза 1 из A. thaliana ; AtCAD5, дегидрогеназа коричного спирта 5 из A. thaliana ; At4CL1, лигаза 4-кумарат-CoA 1 из A.thaliana ; PhCHS, халконсинтаза из P. hybrida ; MsCHI, халкон-изомераза из M. sativa ; AtF3’H, флавоноид-3′-монооксигеназа из A. thaliana ; ATR1, цитохром Р450 редуктаза 1 из A. thaliana ; AtF3H, флаванон-3-гидроксилаза из A. thaliana ; APX1, аскорбатпероксидаза 1 из S. marianum . Сплошные линии указывают на один шаг, а пунктирные линии — на несколько шагов.

    Флаванолы, также известные как флаван-3-олы, в большом количестве содержатся в таких фруктах, как яблоко, персик и груша (Panche et al., 2016). Сообщалось, что в какао был обнаружен довольно высокий уровень флаванолов (Neukam et al., 2007). Подавляющее количество научных данных продемонстрировало, что регулярный прием флаванолов может предотвратить гипертонию, сердечно-сосудистые и цереброваскулярные заболевания (Schroeter et al., 2006). Биосинтез флаванолов может быть достигнут путем расширения пути биосинтеза флаванонов путем введения F3H, DFR и LAR. Афзелехин и катехин — важнейшие представители класса флаванолов.Афзелехин представляет собой типичный флаван-3-ол, который синтезируется с использованием нарингенина в качестве предшественника. Недавно впервые был достигнут биосинтез афцелехина de novo из глюкозы в микроорганизмах. В этом исследовании была разработана система поликультуры путем разделения всего пути биосинтеза на три части: глюкоза до p, -куаровая кислота, p -кумаровая кислота до нарингенина и нарингенин для афзелехина. Эти три части были индивидуально представлены в трех разных E.coli . Лучшая разработанная производственная система произвела 26,1 мг / л афзелехина в экспериментах с встряхиваемыми колбами (Jones et al., 2017). В другом примере, F3H из Camellia sinensis , DFR из Fragaria ananassa и LAR из Desmodium uncinatum коэкспрессировались в E. coli , создавая таким образом рекомбинантный штамм E. coli , способный синтезировать катехин. с использованием эриодиктиола в качестве предшественника. Повышение доступности NADPH, оптимизация количества копий гена пути и использование ряда каркасных белков позволило продуцировать 910.1 мг / л катехина из эриодиктиола со степенью конверсии 91% (Zhao et al., 2015).

    В качестве альтернативы, в соответствии со структурным сходством между катехином и афзелехином, считается, что биосинтез катехина также может быть достигнут путем гидроксилирования афзелехина по сайту C3 ‘. Джонс и др. использовали не-P450 гидроксилазу EcHpaBC для прямого гидроксилирования афзелехина с титром катехина 34,7 мг / л (Jones et al., 2016a).

    Антоцианы

    Антоцианы представляют собой класс флавоноидов, содержащих полигидрокси- или полиметоксипроизводные 2-фенилбензофириллия в своей химической структуре.Это природные пигменты, широко распространенные в зеленых цветах, овощах, фруктах и ​​зерновых злаках (Jackman et al., 1987; Wrolstad, 2004). Антоцианы имеют черный, синий, пурпурный или красный цвет, в зависимости от pH окружающей среды (Heredia et al., 1998; Torskangerpoll and Andersen, 2005). Антоцианы обладают прекрасным антиоксидантным (Miguel, 2011), противоопухолевым (Bowen-Forbes et al., 2010) и противодиабетическим (Mojica et al., 2017) действием, таким образом проявляя большой потенциал для укрепления здоровья. Путь биосинтеза антоцианов продолжился от пути биосинтеза флаванолов за счет сверхэкспрессии ANS и гликозилтрансфераз.Ян и др. (2005) сконструировали четырехэтапный путь биосинтеза для продукции антоциана в E. coli путем введения F3H, DFR, ANS из Malus domestica и 3- O -глюкозилтрансферазы (PGT8) из P Гибрид . В результате путем экзогенного добавления нарингенина и эриодиктиола в культуры получали 5,6 мкг / л пеларгонидин 3- O -глюкозид и 6,0 мкг / л цианидин 3- O -глюкозид (Yan et al., 2005). Дальнейшее усиление поставки UDP-глюкозы и конструирование слитого белка ANS-PGT8 значительно улучшило титры до 78.9 мг / л пеларгонидина 3− O − глюкозид и 70,7 мг / л цианидина 3− O − глюкозида (Yan et al., 2008). De novo Биосинтез пеларгонидина 3- O -глюкозида очень сложно осуществить, потому что процесс биосинтеза слишком сложен и включает слишком много ферментативных стадий. Недавно для решения этой проблемы была создана система поликультуры для улучшения титра пеларгонидина 3-O -глюкозида. В этой системе весь путь биосинтеза пеларгонидина 3-O -глюкозида, содержащий 15 ферментов и факторов транскрипции, был распределен в четыре независимых E.coli , что позволило распределить метаболическую нагрузку. При использовании глюкозы в качестве источника углерода лучшая система поликультуры продуцировала 9,5 мг / л пеларгонидина 3-O -глюкозида (Jones et al., 2017). Совсем недавно Shrestha et al. (2019) сконструировали путь биосинтеза цианидина 3- O -глюкозида в E. coli путем сверхэкспрессии ANS из P. hybrida и цианидин 3- O -глюкозилтрансферазы (At3GT) из A. thaliana .Чтобы уравновесить уровень экспрессии ANS и At3GT , была разработана синтетическая векторная система биоблока для экспрессии генов ANS, At3GT и генов пути биосинтеза UDP-глюкозы под разными промоторами. Результаты показали, что один сконструированный штамм, несущий At3GT и ANS, управляемый промотором P trc и генами пути биосинтеза UDP-глюкозы под промотором P T 7 , привел к наивысшему уровню цианидина 3- O -глюкозидный титр 439 мг / л при 36-часовом культивировании (Shrestha et al., 2019). В другом примере метилированный антоцианин, пеонидин 3- O -глюкозид, был получен в сконструированной клетке E.coli путем дополнительной экспрессии метилтрансферазы O . Скрининг ферментов эффективного метаболического пути и повышение доступности SAM с помощью системы CRISPRi повысили титр глюкозида пеонидина 3-O до 56 мг / л (Cress et al., 2017). Совсем недавно на штаммах E. coli были разработаны системы совместного культивирования для производства пираноантоцианов. В этой работе продуценты 4-винилфенола и 4-винилкатехола были отдельно совместно культивированы с клетками-продуцентами цианидин-3- O -глюкозида с образованием пираноцианидин-3- O -глюкозид-фенола и пираноцианидина-3- O -глюкозида. -катехол.После оптимизации условий совместного культивирования из глюкозы было синтезировано до 19,5 мг / л пираноцианидин-3- O -глюкозид-фенол и 13 мг / л пираноцианидин-3- O -глюкозид-катехол (Akdemir et al. ., 2019).

    На самом деле, E. coli не является предпочтительным хозяином для продукции антоцианов из-за слишком большого количества ферментов цитохрома P450, участвующих в пути биосинтеза. Таким образом, было приложено много усилий для создания пути биосинтеза антоцианов в S.cerevisiae . Например, Eichenberger et al. (2018) впервые сообщили о биосинтезе de novo пеларгонидин-3- O -глюкозида, цианидин-3-O -глюкозида и дельфинидин-3-O -глюкозида в сконструированных штаммах S. cerevisiae . Путем скрининга эффективной глюкозилтрансферазы, 0,85 мг / л пеларгонидин 3- O -глюкозид, 1,55 мг / л цианидин 3-O -глюкозид и 1,86 мг / л дельфинидин-3- O -глюкозид были произведены в лучшие инженерные штаммы (Eichenberger et al., 2018). В другом примере Levisson et al. (2018) сконструировали биосинтетический путь для производства пеларгонидина 3-O -глюкозида, исходя из глюкозы в S. cerevisiae. Штамм-хозяин был сконструирован так, чтобы предотвратить образование побочных продуктов и улучшить поставку предшественников, полученный штамм генерировал 0,01 мкмоль / г пеларгонидина CDW и 0,001 мкмоль / г пеларгонидина CDW 3- O -глюкозид в контролируемых аэробных условиях партии (Levisson и др., 2018). Кроме E.coli и S. cerevisiae , несколько других микроорганизмов также продемонстрировали способность синтезировать антоцианы. Zha et al. (2018) сконструировали рекомбинантный штамм C. glutamicum для получения цианидин-3- O -глюкозида из катехина путем сверхэкспрессии ANS из P. hybrida и 3GT из A. thaliana . Дальнейшая корректировка уровня экспрессии ANS и 3GT, оптимизация процесса и улучшение доступности UDP-глюкозы позволили получить 40 мг / л цианидин 3-O -глюкозид (Zha et al., 2018). В другом исследовании Lactococcus lactis был сконструирован для производства некоторых необычных антоцианов с использованием чая в качестве субстрата. К концу 16 ч продуцировались различные красно-пурпурные цианидин и дельфинидин, оранжевый и желтый пираноантоцианидины с общим титром 1,5 мг / л (Solopova et al., 2019).

    Обсуждение и перспективы

    За последние несколько лет, с увеличением знаний о естественных путях биосинтеза флавоноидов и быстрым развитием синтетической биологии и метаболической инженерии, все больше и больше фабрик микробных клеток было построено для производства флавоноидов из их прямых предшественников или из возобновляемых источников углерода. (Чжу и др., 2014; Wu et al., 2016b). Однако коммерческий и промышленный синтез этих химикатов еще не осуществлен из-за низкого титра продукта, выхода и производительности. Чтобы значительно улучшить титр флавоноидов у микроорганизмов, необходимо решить несколько проблем. Во-первых, ферменты, участвующие в пути биосинтеза флавоноидов, особенно цитохром P450 и ферменты постмодификации, обычно зависят от окислительно-восстановительного партнера и обладают более низкой ферментативной активностью и плохой селективностью (Stahlhut et al., 2015; Delmulle et al., 2018), что сильно ограничивало эффективность производства флавоноидов. В последнее время было разработано множество стратегий для улучшения их каталитической эффективности и специфичности, таких как рациональная белковая инженерия (Li et al., 2019), направленная эволюция (Pandey et al., 2016), субстратная инженерия (Li et al., 2020), а также разработка редокс-партнеров (Stahlhut et al., 2015). Однако эти усилия мало повлияли на решение проблемы. Мы считаем, что использование ряда эффективных бактериальных оксигеназ и гидроксилаз, не относящихся к P450, для замены ферментов цитохрома P450 растений является многообещающей альтернативой.Во-вторых, путь биосинтеза флавоноидов включает длительные стадии реакции и сложные правила, которые значительно ограничивают выход продукции. Чтобы преодолеть это препятствие, некоторые исследователи попытались создать систему сокультуры или поликультуры для распределения метаболической нагрузки путем разделения всего пути биосинтеза на несколько независимых штаммов хозяев (Ganesan et al., 2017; Thuan et al., 2018; Wang et al., 2020). ). Однако ограничение транспорта метаболитов и сложность поддержания стабильной и надежной системы сокультивирования являются основными проблемами для широкого применения этого подхода (Jones et al., 2016б, 2017). Следовательно, это очень важно для дальнейшей оптимизации существующих систем совместного выращивания или поиска новых стратегий для решения этой проблемы. В-третьих, эффективность продукции пути биосинтеза флавоноидов также ограничена недостаточным поступлением предшественников, особенно ароматических аминокислот и малонил-КоА (Koopman et al., 2012; Delmulle et al., 2018). Однако эти предшественники также служат важными промежуточными продуктами для поддержки роста клеток; таким образом, очень важно точно распределить поток углерода между центральными метаболическими путями и гетерологичными биосинтетическими путями.Недавно создание динамических регуляторных элементов для точной настройки потока углерода между ростом клеток и синтезом продуктов было показано как мощный инструмент для повышения эффективности микробного синтеза (Wu et al., 2014, 2016a; Zhou et al., 2019). Кроме того, штаммы маслянистых дрожжей, включая Yarrowia , Candida , Lipomyces и Rhodotorula , способны накапливать высокий уровень малонил-КоА (Lv et al., 2019b), которые служат многообещающими хозяевами для биосинтез флавоноидов.Ожидается, что быстрое и постоянное развитие передовых инструментов и технологий создаст новые захватывающие возможности в достижении эффективного и экономичного производства флавоноидов.

    Авторские взносы

    HS и JW составили рукопись. XSh, JW и XSu отредактировали рукопись. YY и QY контролировали эту работу. Все авторы внесли свой вклад в статью и одобрили представленную версию.

    Финансирование

    Эта работа была поддержана Национальным фондом естественных наук Китая (21

    3, 21636001 и 21776008), Национальной программой ключевых исследований и разработок Китая (2018YFA0

    0 и 2018YFA00) и Фондами фундаментальных исследований для центральных университетов (buctrc201911).

    Конфликт интересов

    Авторы заявляют, что исследование проводилось при отсутствии каких-либо коммерческих или финансовых отношений, которые могут быть истолкованы как потенциальный конфликт интересов.

    Благодарности

    Мы благодарны Пекинскому химико-технологическому университету.

    Список литературы

    Абари А. Х. и Тайеби М. (2019). Биоконверсия генистеина в оробол с помощью споры Bacillus subtilis показала тирозиназу и мониторинг противораковых эффектов оробола на раковые клетки молочной железы MCF-7. Biotechnol. Bioprocess Eng. 24, 507–512. DOI: 10.1007 / s12257-019-0067-9

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Акдемир, Х., Сильва, А., Жа, Дж., Загоревски, Д. В., и Коффас, М. А. Г. (2019). Производство пираноантоцианов с использованием совместных культур Escherichia coli . Metab. Англ. 55, 290–298. DOI: 10.1016 / j.ymben.2019.05.008

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Амор, И.Л.-Б., Хен, А., Гедон, Э., Гедира, К., Энгассер, Дж. М., Чекир-Гедрира, Л. и др. (2010). Биотрансформация нарингенина в эриодиктиол с помощью Saccharomyces cerevisiea , функционально экспрессирующей флавоноид-3′-гидроксилазу. Nat. Prod. Commun. 5, 1893–1898. DOI: 10.1177 / 1934578×1000501211

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Авереш, Н. Дж., И Кремер, Дж. О. (2018). Метаболическая инженерия пути шикимата для производства ароматических углеводородов и производных соединений — настоящие и будущие стратегии конструирования штаммов. Фронт. Bioeng. Biotechnol. 6:32. DOI: 10.3389 / fbioe.2018.00032

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Бано С., Джавед К., Ахмад С., Ратиш И., Сингх С., Чайтанья М. и др. (2013). Синтез некоторых новых халконов, флаванонов и флавонов и оценка их противовоспалительной активности. Eur. J. Med. Chem. 65, 51–59. DOI: 10.1016 / j.ejmech.2013.04.056

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Боуэн-Форбс, К.С., Чжан Ю., Наир М. Г. (2010). Содержание антоцианов, антиоксидантные, противовоспалительные и противоопухолевые свойства плодов ежевики и малины. J. Пищевой компост. Анальный. 23, 554–560. DOI: 10.1016 / j.jfca.2009.08.012

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Бритч Л. и Гризебах Х. (1986). Очистка и характеристика (2S) -флаванон-3-гидроксилазы из Petunia hybrida . Eur. J. Biochem. 156, 569–577. DOI: 10.1111 / j.1432-1033.1986.tb09616.x

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кальтаджироне С., Росси К., Погги А., Ранеллетти Ф. О., Натали П. Г., Брунетти М. и др. (2000). Флавоноиды, апигенин и кверцетин подавляют рост меланомы и метастатический потенциал. Int. J. Cancer 87, 595–600. DOI: 10.1002 / 1097-0215 ​​(20000815) 87: 4 <595 :: aid-ijc21 <3.0.co; 2-5

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Чанг, Т., Чао, С., и Чен, Ю.(2013). Получение производных орто -гидроксидаидзеина рекомбинантным штаммом Pichia pastoris , несущим слитый ген цитохрома P450. Process Biochem. 48, 426–429. DOI: 10.1016 / j.procbio.2013.02.014

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Чанг, К., Чанг, Ю., Ву, Дж., И Чанг, Т. (2017). Продукция и антимеланомная активность метоксиизофлавонов в результате биотрансформации генистеина двумя рекомбинантными штаммами Escherichia coli . Молекулы 22:87. DOI: 10.3390 / молекулы22010087

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Корреа, М. Дж. К., Нуньес, Ф. М., Битенкур, Х. Р., Борхес, Ф. К., Гильон, Г. М. С. П., Арруда, М. С. П. и др. (2011). Биотрансформация халконов эндофитным грибом Aspergillus flavus , выделенным из Paspalum maritimum trin . J. Braz. Chem. Soc. 22, 1333–1338. DOI: 10.1590 / S0103-50532011000700019

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кресс, Б.Ф., Лейтц, К. Д., Ким, Д. К., Аморе, Т. Д., Судзуки, Д. Ю., Линхардт, Р. Дж. И др. (2017). CRISPRi-опосредованная метаболическая инженерия E. coli для продукции O-метилированного антоциана. Microb. Cell Fact. 16:10. DOI: 10.1186 / s12934-016-0623-3

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кушни, Т. Т., и Лэмб, А. Дж. (2011). Последние достижения в понимании антибактериальных свойств флавоноидов. Int. J. Antimicrob. Агенты 38, 99–107.DOI: 10.1016 / j.ijantimicag.2011.02.014

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Дельмюлль, Т., Де Маеснейр, С. Л., и Де Мей, М. (2018). Проблемы микробного производства флавоноидов. Phytochem. Ред. 17, 229–247. DOI: 10.1007 / s11101-017-9515-3

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ди Майо, Д., Джамманко, М., Ла Гуардиа, М., Триполи, Э., Джамманко, С., и Финотти, Э. (2005). Флаваноны в цитрусовых: взаимосвязь между структурой и антиоксидантной активностью. Food Res. Int. 38, 1161–1166. DOI: 10.1016 / j.foodres.2005.05.001

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Дин, Х., Чанг, К., Цзэн, В., и Чанг, Т. (2015). Идентификация 3′-гидроксигенистеина как мощного ингибитора меланогенеза в результате биотрансформации генистеина рекомбинантным Pichia pastoris . Process Biochem. 50, 1614–1617. DOI: 10.1016 / j.procbio.2015.06.007

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Донг, Дж., и Цинь, Л. (2011). Потребление изофлавонов сои и риск заболеваемости или рецидива рака груди: метаанализ проспективных исследований. Breast Cancer Res. Относиться. 125, 315–323. DOI: 10.1007 / s10549-010-1270-8

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Эдвардс Р. и Диксон Р. А. (1991). Активность изофлавон-О-метилтрансферазы в обработанных элиситором клеточных суспензионных культурах Medicago sativa . Фитохимия 30, 2597–2606.DOI: 10.1016 / 0031-9422 (91) 85107-B

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Eichenberger, M., Hansson, A., Fischer, D., Dürr, L., and Naesby, M. (2018). Биосинтез de novo антоцианов в Saccharomyces cerevisiae . FEMS Yeast Res. 18:11. DOI: 10.1093 / femsyr / foy046

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Фальконе Феррейра, М. Л., Риус, С., и Касати, П. (2012). Флавоноиды: биосинтез, биологические функции и биотехнологические приложения. Фронт. Plant Sci. 3: 222. DOI: 10.3389 / fpls.2012.00222

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Фазель Набави, С., Брейди, Н., Хабтемариам, С., Суреда, А., Манайи, А., и Мохаммад Набави, С. (2016). Нейропротекторные эффекты физетина при болезнях Альцгеймера и Паркинсона: от химии к медицине. Curr. Верхний. Med. Chem. 16, 1910–1915. DOI: 10.2174/1568026616666160204121725

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Фаулер, З.Л., Гиканди, В. В., и Коффас, М. А. Г. (2009). Увеличение биосинтеза малонил-кофермента А за счет настройки метаболической сети Escherichia coli и его применения для производства флаванона. Заявл. Environ. Microbiol. 75, 5831–5839. DOI: 10.1128 / AEM.00270-09

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Фокс, Дж. Э., Старчевич, М., Ков, К. Ю., Буроу, М. Е., и Маклахлан, Дж. А. (2001). Фиксация азота: эндокринные разрушители и передача сигналов флавоноидов. Природа 413, 128–130. DOI: 10.1038 / 35093163

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ганесан В., Ли З., Ван Х. и Чжан Х. (2017). Гетерологический биосинтез натурального продукта нарингенина путем совместной культивирования. Synth. Syst. Biotechnol. 2, 236–242. DOI: 10.1016 / j.synbio.2017.08.003

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Гао, С., Лю, Ю., Цзэн, В., Ду, Г., Чжоу, Дж., И Чен, Дж.(2019). Эффективный биосинтез (2S) -нарингенина из п-кумаровой кислоты в Saccharomyces cerevisiae . J. Agric. Food Chem. 68, 1015–1021. DOI: 10.1021 / acs.jafc.9b05218

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хаджимехдипур, Х., Шахрестани Р. и Шекарчи М. (2014). Изучение синергических антиоксидантных эффектов некоторых флавоноидов и фенольных соединений. Res. J. Pharmacogn. 1, 35–40.

    Google Scholar

    He, X., Ли, У., Блаунт, Дж. У., и Диксон, Р. А. (2008). Региоселективный синтез растительных (изо) флавоновых гликозидов в Escherichia coli . Заявл. Microbiol. Biotechnol. 80, 253–260. DOI: 10.1007 / s00253-008-1554-7

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Эредиа, Ф. Дж., Франсия-Арича, Э. М., Ривас-Гонсало, Дж. К., Викарио, И. М. и Сантос-Буэлга, К. (1998). Хроматическая характеристика антоцианов красного винограда-I. Эффект pH. Food Chem. 63, 491–498. DOI: 10.1016 / S0308-8146 (98) 00051-X

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Hirvonen, T., Pietinen, P., Virtanen, M., Ovaskainen, M.-L., Häkkinen, S., Albanes, D., et al. (2001). Потребление флавонолов и флавонов и риск ишемической болезни сердца у курящих мужчин. Эпидемиология 12, 62–67. DOI: 10.1097 / 00001648-200101000-00011

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хоссейни-Абари, А., Ким, Б.-Г., Ли, С.-Х., Эмтиази, Г., Ким, В., и Ким, Ж.-Х. (2016). Поверхностное отображение бактериальной тирозиназы на спорах Bacillus subtilis с использованием CotE в качестве якорного белка. J. Basic Microbiol. 56, 1331–1337. DOI: 10.1002 / jobm.201600203

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хуанг, Ю., и Хо, С. (2010). Полиметоксифлавоны отвечают за противовоспалительную активность кожуры цитрусовых. Food Chem. 119, 868–873. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2009.09.092

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хван Э. И., Канеко М., Охниши Ю. и Хориноути С. (2003). Продукция растительных флаванонов с помощью Escherichia coli , содержащего искусственный кластер генов. Заявл. Environ. Microbiol. 69, 2699–2706. DOI: 10.1128 / AEM.69.5.2699-2706.2003

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Джекман, Р. Л., Яда, Р. Ю., Тунг, М. А., и Спирс, Р.А. (1987). Антоцианы как пищевые красители — обзор. J. Food Biochem. 11, 201–247. DOI: 10.1111 / j.1745-4514.1987.tb00123.x

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Цзян Х., Вуд К. В. и Морган Дж. А. (2005). Метаболическая инженерия фенилпропаноидного пути в Saccharomyces cerevisiae . Заявл. Environ. Microbiol. 71, 2962–2969. DOI: 10.1128 / AEM.71.6.2962-2969.2005

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Джонс, Дж.А., Коллинз, С. М., Вернаккио, В. Р., Лашанс, Д. М., и Коффас, М. А. Г. (2016a). Оптимизация гидроксилирования нарингенина и п-кумаровой кислоты с использованием нативного комплекса гидроксилазы E. coli . HpaBC. Biotechnol. Прог. 32, 21–25. DOI: 10.1002 / btpr.2185

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Джонс, Дж. А., Вернаккио, В. Р., Синко, А., Коллинз, С. М., Ибрагим, М. Х. А., Лашанс, Д. М. и др. (2016b). Экспериментальная и вычислительная оптимизация совместной культуры Escherichia coli для эффективного производства флавоноидов. Metab. Англ. 35, 55–63. DOI: 10.1016 / j.ymben.2016.01.006

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Джонс, Дж. А., Вернаккио, В. Р., Коллинз, С. М., Ширк, А. Н., Сю, Ю., Энглендер, Дж. А., и др. (2017). Полный биосинтез антоцианов с использованием поликультуры E. coli . мБИО 8: e00621-17. DOI: 10.1128 / mBio.00621-17

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кальшойер, Н., Фогт, М., Стензель, А., Гетгенс, Дж., Ботт, М., и Мариенхаген, Дж. (2016). Конструирование платформенного штамма Corynebacterium glutamicum для производства стильбенов и (2S) -флаванонов. Metab. Англ. 38, 47–55. DOI: 10.1016 / j.ymben.2016.06.003

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кацуяма Ю., Мияхиса И., Фуна Н. и Хориноути С. (2007). Синтез генистеина из тирозина в одном горшке путем совпадения генно-инженерных клеток Escherichia coli и Saccharomyces cerevisiae . Заявл. Microbiol. Biotechnol. 73, 1143–1149. DOI: 10.1007 / s00253-006-0568-2

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кауфман, П. Б., Дюк, Дж. А., Брилманн, Х., Бойк, Дж., И Хойт, Дж. Э. (1997). Сравнительный обзор зернобобовых растений как источников изофлавонов, генистеина и даидзеина: значение для питания и здоровья человека. J. Altern. Комплемент Мед. 3, 7–12. DOI: 10.1089 / acm.1997.3.7

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кей, К.Д., Хупер, Л., Крун, П. А., Римм, Э. Б., и Кэссиди, А. (2012). Относительное влияние состава, дозы и структуры флавоноидов на функцию сосудов: систематический обзор рандомизированных контролируемых испытаний пищевых продуктов, богатых флавоноидами. Мол. Nutr. Food Res. 56, 1605–1616. DOI: 10.1002 / mnfr.201200363

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кетабфоруш, С. Х., Хейроллахи, А., Сафави, М., Эсмати, Н., Ардестани, С. К., Эмами, С. и др. (2014).Синтез и оценка противораковой активности новых диметоксилированных аналогов халкона и флаванона. Arch. Pharm. 347, 853–860. DOI: 10.1002 / ardp.201400215

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Хан, М. К., Аберт-Виан, М., Фабиано-Тиксье, А.-С., Данглс, О., и Чемат, Ф. (2010). Экстракция полифенолов (флаваноновых гликозидов) из кожуры апельсина ( Citrus sinensis L.) с помощью ультразвука. Food Chem. 119, 851–858.DOI: 10.1016 / j.foodchem.2009.08.046

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ким, Д. Х., Ким, Б.-Г., Юнг, Н. Р., и Ан, Ж.-Х. (2009). Получение генистеина из нарингенина с использованием Escherichia coli , содержащего слитый белок изофлавон-синтаза-цитохром Р450-редуктаза. J. Microbiol. Biotechnol. 19, 1612–1616. DOI: 10.4014 / jmb.0905.05043

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ким, Х. П., Сын, К. Х., Чанг, Х. В., и Канг, С. С. (2004). Противовоспалительные растительные флавоноиды и механизмы клеточного действия. J. Pharmacol. Sci. 3, 229–245. DOI: 10.1254 / jphs.crj04003x

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Коирала, Н., Пандей, Р. П., Туан, Н. Х., Гимире, Г. П., Юнг, Х. Дж., О, Т. Дж. И др. (2019). Метаболическая инженерия Escherichia coli для производства изофлавоноид-4′-O-метоксидов и их биологической активности. Biotechnol.Прил. Biochem. 66, 484–493. DOI: 10.1002 / bab.1452

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Коирала Н., Туан Н. Х., Гимире Г. П., Ван Тханг Д. и Сонг Дж. К. (2016). Метилирование флавоноидов: химическая структура, биоактивность, прогресс и перспективы биотехнологического производства. Enzyme Microb. Technol. 86, 103–116. DOI: 10.1016 / j.enzmictec.2016.02.003

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Купман, Ф., Beekwilder, J., Crimi, B., van Houwelingen, A., Hall, R.D., Bosch, D., et al. (2012). Производство de novo флавоноида нарингенина в сконструированном Saccharomyces cerevisiae . Microb. Cell Fact. 11: 155. DOI: 10.1186 / 1475-2859-11-155

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Кумар, Н. Б., Кантор, А., Аллен, К., Риккарди, Д., Бестерман-Дахан, К., Сень, Дж. И др. (2004). Особая роль изофлавонов в снижении риска рака простаты. Простата 59, 141–147. DOI: 10.1002 / pros.10362

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ли, Х., Ким, Б. Г., Ким, М., и Ан, Ж.-Х. (2015). Биосинтез двух флавонов, апигенина и генкванина в Escherichia coli . J. Microbiol. Biotechnol. 25, 1442–1448. DOI: 10.4014 / jmb.1503.03011

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Леонард, Э., Хемлер, Дж., Лим, К. Х., и Коффас, М.А. Г. (2006). Экспрессия растворимой флавон-синтазы позволяет биосинтез производных фитоэстрогенов в Escherichia coli . Заявл. Microbiol. Biotechnol. 70, 85–91. DOI: 10.1007 / s00253-005-0059-x

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Леонард Э. и Коффас М. А. (2007). Разработка искусственных растительных ферментов цитохрома P450 для синтеза изофлавонов с помощью Escherichia coli . Заявл. Environ. Microbiol. 73, 7246–7251. DOI: 10.1128 / AEM.01411-07

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Леонард, Э., Лим, К. Х., Со, П. Н., и Коффас, М. А. Г. (2007). Разработка центральных метаболических путей для продукции высокого уровня флавоноидов в Escherichia coli . Заявл. Environ. Microbiol. 73, 3877–3886. DOI: 10.1128 / AEM.00200-07

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Леонард, Э., Ян, Ю., Фаулер, З.Л., Ли, З., Лим, Ч.-Г., Лим, К. Х. и др. (2008). Улучшение штамма рекомбинантной Escherichia coli для эффективного производства растительных флавоноидов. Мол. Pharm. 5, 257–265. DOI: 10.1021 / mp7001472

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Левиссон, М., Патиниос, К., Хейн, С., де Гроот, П. А., Даран, Ж.-М., Холл, Р. Д. и др. (2018). Инжиниринг de novo Производство антоцианов в Saccharomyces cerevisiae . Microb. Cell Fact. 17: 103. DOI: 10.1186 / s12934-018-0951-6

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ли, Дж., Тиан, К., Ся, Ю., Мутанда, И., Ван, К., и Ван, Ю. (2019). Производство специфичных для растений флавонов байкалеина и скутеллареина в сконструированной клетке E. coli из доступного фенилаланина и тирозина. Metab. Англ. 52, 124–133. DOI: 10.1016 / j.ymben.2018.11.008

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ли, З., Jiang, Y., Guengerich, F. P., Ma, L., Li, S., and Zhang, W. (2020). Разработка ферментных систем цитохрома P450 для биомедицинских и биотехнологических приложений. J. Biol. Chem. 295, 833–849. DOI: 10.1074 / jbc.REV119.008758

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Лю X., Cheng, J., Zhang, G., Ding, W., Duan, L., Yang, J., et al. (2018). Инженерные дрожжи для производства бревискапина методами геномного анализа и синтетической биологии. Nat. Commun. 9, 1–10. DOI: 10.1038 / s41467-018-02883-z

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ли-Вебер, М. (2009). Новые терапевтические аспекты флавонов: противораковые свойства Scutellaria и его основных активных компонентов вогонин, байкалеин и байкалин. Лечение рака. Ред. 35, 57–68. DOI: 10.1016 / j.ctrv.2008.09.005

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Лв, Ю., Эдвардс, Х., Чжоу, Дж., и Сюй П. (2019a). Комбинирование 26s рДНК и системы Cre-loxP для итеративной интеграции генов и эффективного курирования маркеров в Yarrowia lipolytica . ACS Synth. Биол. 8, 568–576. DOI: 10.1021 / acssynbio.8b00535

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Lv, Y., Marsafari, M., Koffas, M.A.G., Zhou, J., and Xu, P. (2019b). Оптимизация фабрик масляных дрожжевых клеток для биосинтеза флавоноидов и гидроксилированных флавоноидов. ACS Synth.Биол. 8, 2514–2523. DOI: 10.1101 / 614099

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Lv, Y., Xu, S., Lyu, Y., Zhou, S., Du, G., Chen, J., et al. (2019c). Разработка ферментных каскадов для эффективной биотрансформации эвгенола и таксифолина в силибин и изозилибин. Green Chem. 21, 1660–1667. DOI: 10.1039 / C8GC03728K

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Лю, X., Нг, К. Р., Ли, Дж., Марк, Р., и Чен, В. (2017). Усиление биосинтеза нарингенина из тирозина путем метаболической инженерии Saccharomyces cerevisiae . J. Agric. Food Chem. 65, 6638–6646. DOI: 10.1021 / acs.jafc.7b02507

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Лю X., Чжао Г., Нг, К. Р., Марк, Р. и Чен, В. (2019). Метаболическая инженерия Saccharomyces cerevisiae для производства кемпферола de novo . J. Agric. Food Chem. 67, 5596–5606. DOI: 10.1021 / acs.jafc.9b01329

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Марин, Л., Гутьеррес-дель-Рио, И., Энтриальго-Кадьерно, Р., Вильяр, К. Дж. И Ломбо, Ф. (2018). Биосинтез de novo мирицетина, кемпферола и кверцетина в Streptomyces albus и Streptomyces coelicolor . PLoS One 13: e0207278. DOI: 10.1371 / journal.pone.0207278

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Марин, Л., Гутьеррес-дель-Рио, И., Ягуэ, П., Мантека, А., Вильяр, К. Дж., И Ломбо, Ф. (2017). De novo Биосинтез апигенина, лютеолина и эриодиктиола в актиномицете. Streptomyces albus и повышение продуктивности путем кормления и кондиционирования спор. Фронт. Microbiol. 8: 921. DOI: 10.3389 / fmicb.2017.00921

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Мигель М. Г. (2011). Антоцианы: антиоксидантное и / или противовоспалительное действие. J. Appl. Pharm. Sci. 1, 7–15.

    Google Scholar

    Миранда, К. Л., Стивенс, Дж. Ф., Иванов, В., МакКолл, М., Фрей, Б., Дейнзер, М. Л. и др. (2000). Антиоксидантное и прооксидантное действие пренилированных и непренилированных халконов и флаванонов in vitro . J. Agric. Food Chem. 48, 3876–3884. DOI: 10.1021 / jf0002995

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Mojica, L., Berhow, M. A., and De Mejia, E. G. (2017). Богатые антоцианином экстракты черной фасоли в качестве пищевых красителей: физико-химическая стабильность и антидиабетический потенциал. Food Chem. 229, 628–639. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2017.02.124

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Набави, С. М., Шамец, Д., Tomczyk, M., Milella, L., Russo, D., Habtemariam, S., et al. (2020). Пути биосинтеза флавоноидов в растениях: универсальные мишени для метаболической инженерии. Biotechnol. Adv. 38: 107316. DOI: 10.1016 / j.biotechadv.2018.11.005

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Надери Г. А., Асгари С., Сарраф-Задеган Г. Н. и Ширвани Х. (2003). «Антиоксидантный эффект флавоноидов на восприимчивость к окислению ЛПНП», в Vascular Biochemistry , eds G.Н. Пирс, Дж. Вигл и П. Заградка (Берлин: Springer), 193–196. DOI: 10.1007 / 978-1-4615-0298-2_27

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Накаяма Т., Ёнекура-Сакакибара К., Сато Т., Кикучи С., Фукуи Ю., Фукути-Мизутани М. и др. (2000). Ауреузидинсинтаза: гомолог полифенолоксидазы, отвечающий за окраску цветов. Наука 290, 1163–1166. DOI: 10.1126 / science.290.5494.1163

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Нойкам, К., Шталь В., Тронье Х., Сиес Х. и Генрих У. (2007). Употребление какао, богатого флаванолами, резко увеличивает микроциркуляцию в коже человека. Eur. J. Nutr. 46, 53–56. DOI: 10.1007 / s00394-006-0627-6

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Панди, Р. П., Параджули, П., Коффас, М. А. Г. и Сонг, Дж. К. (2016). Микробиологическое производство природных и неприродных флавоноидов: разработка путей, направленная эволюция и системы / синтетическая биология. Biotechnol. Adv. 34, 634–662. DOI: 10.1016 / j.biotechadv.2016.02.012

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Пей, Дж., Сун, К., Гу, Н., Чжао, Л., Фанг, X., Тан, Ф. и др. (2020). Производство изоориентина и изовитексина из лютеолина и апигенина с использованием сочетанного катализа гликозилтрансферазы и сахарозосинтазы. Заявл. Biochem. Biotechnol. 190, 601–615. DOI: 10.1007 / s12010-019-03112-z

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Петерсон, Дж.Дж., Бичер, Г. Р., Бхагват, С. А., Дуайер, Дж. Т., Гебхард, С. Е., Хайтовиц, Д. Б. и др. (2006). Флаваноны в грейпфруте, лимонах и лаймах: сборник и обзор данных из аналитической литературы. J. Пищевой компост. Анальный. 19, S74 – S80. DOI: 10.1016 / j.jfca.2005.12.009

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Равишанкар Д., Раджора А. К., Греко Ф. и Осборн Х. М. (2013). Флавоноиды как перспективные соединения для противораковой терапии. Int.J. Biochem. Cell Biol. 45, 2821–2831. DOI: 10.1016 / j.biocel.2013.10.004

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Родригес, А., Струко, Т., Штальхут, С. Г., Кристенсен, М., Свенссен, Д. К., Форстер, Дж. И др. (2017). Метаболическая инженерия дрожжей для ферментативного производства флавоноидов. Биоресурсы. Technol. 245, 1645–1654. DOI: 10.1016 / j.biortech.2017.06.043

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Сантос, К.Н.С., Коффас, М.А.Г., и Стефанопулос, Г. (2011). Оптимизация гетерологичного пути производства флавоноидов из глюкозы. Metab. Англ. 13, 392–400. DOI: 10.1016 / j.ymben.2011.02.002

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Schroeter, H., Heiss, C., Balzer, J., Kleinbongard, P., Keen, C.L., Hollenberg, N.K., et al. (2006). (-) — Эпикатехин опосредует благотворное влияние какао, богатого флаванолами, на функцию сосудов человека. Proc.Natl. Акад. Sci. США 103, 1024–1029. DOI: 10.1073 / pnas.0510168103

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Шах, Ф. Л. А., Рамзи, А. Б., Бахарум, С. Н., Нур, Н. М., Го, Х.-Х., Леоу, Т. К. и др. (2019). Последние достижения в области инженерных микробов-хозяев для биотехнологического производства флавоноидов. Мол. Биол. Rep. 46, 6647–6659. DOI: 10.1007 / s11033-019-05066-1

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Шарма, Б., Balomajumder, C., and Roy, P. (2008). Гипогликемические и гиполипидемические эффекты экстракта, богатого флавоноидами из семян Eugenia jambolana , на крыс с диабетом, индуцированным стрептозотоцином. Food Chem. Toxicol. 46, 2376–2383. DOI: 10.1016 / j.fct.2008.03.020

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Шреста Б., Пандей Р. П., Дарсандхари С., Параджули П. и Сонг Дж. К. (2019). Комбинаторный подход для улучшения продукции цианидин-3-O-глюкозида в Escherichia coli . Microb. Cell Fact. 18: 7. DOI: 10.1186 / s12934-019-1056-6

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Шкергет, М., Котник, П., Хадолин, М., Граш, А. Р., Симонич, М., и Кнез, Ž (2005). Фенолы, проантоцианидины, флавоны и флавонолы в некоторых растительных материалах и их антиоксидантная активность. Food Chem. 89, 191–198. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2004.02.025

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Солопова, А., Ван Тилбург, А.Y., Foito, A., Allwood, J. W., Stewart, D., Kulakauskas, S., et al. (2019). Разработка Lactococcus lactis для производства необычных антоцианов с использованием чая в качестве субстрата. Metab. Англ. 54, 160–169. DOI: 10.1016 / j.ymben.2019.04.002

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Штальхут, С. Г., Зидлер, С., Малла, С., Харрисон, С. Дж., Мори, Дж., Невес, А. Р. и др. (2015). Сборка нового биосинтетического пути для производства растительного флавоноида физетина в Escherichia coli . Metab. Англ. 31, 84–93. DOI: 10.1016 / j.ymben.2015.07.002

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Тахара, С., Ингам, Дж. Л., Ханава, Ф., и Мизутани, Дж. (1991). Значение химического сдвига 1H ЯМР протона 5-гидроксила изофлавона в качестве удобного индикатора 6-замещения или 2′-гидроксилирования. Фитохимия 30, 1683–1689. DOI: 10.1016 / 0031-9422 (91) 84234-J

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Такамура, Ю.и Номура Г. (1988). Изменения внутриклеточной концентрации ацетил-КоА и малонил-КоА в зависимости от углеродного и энергетического метаболизма Escherichia coli K12. Микробиология 134, 2249–2253. DOI: 10.1099 / 00221287-134-8-2249

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Таку К., Мелби М. К., Ниши Н., Омори Т. и Курзер М. С. (2011). Изофлавоны сои при остеопорозе: научно обоснованный подход. Maturitas 70, 333–338.DOI: 10.1016 / j.maturitas.2011.09.001

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Туан Н. Х., Чаудхари А. К., Ван Куонг Д. и Куонг Н. Х. (2018). Инженерная система совместного культивирования для производства апигетрина в Escherichia coli . J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 45, 175–185. DOI: 10.1007 / s10295-018-2012-x

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Tohge, T., de Souza, L.P., и Fernie, A.Р. (2017). Современное понимание путей биосинтеза флавоноидов у модельных и сельскохозяйственных растений. J. Exp. Бот. 68, 4013–4028. DOI: 10.1093 / jxb / erx177

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Torskangerpoll, K., and Andersen, ØM. (2005). Цветоустойчивость антоцианов в водных растворах при различных значениях pH. Food Chem. 89, 427–440. DOI: 10.1016 / j.foodchem.2004.03.002

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Трантас, Э., Панопулос, Н., и Верверидис, Ф. (2009). Метаболическая инженерия полного пути, ведущего к гетерологичному биосинтезу различных флавоноидов и стильбеноидов в Saccharomyces cerevisiae . Metab. Англ. 11, 355–366. DOI: 10.1016 / j.ymben.2009.07.004

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    ван Саммерен-Везенхаген, П. В., и Мариенхаген, Дж. (2015). Метаболическая инженерия Escherichia coli для синтеза растительного полифенола пиносилвина. Заявл. Environ. Microbiol. 81, 840–849. DOI: 10.1128 / AEM.02966-14

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ван Р., Чжао С., Ван З. и Коффас М. А. Г. (2020). Последние достижения в модульной инженерии совместного культивирования для синтеза натуральных продуктов. Curr. Opin. Biotechnol. 62, 65–71. DOI: 10.1016 / j.copbio.2019.09.004

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ван Т., Цай Ю., Юй И., и Чанг, Т. (2016). Улучшение продуцирования 3′-гидроксиенистеина в рекомбинантном Pichia pastoris с использованием стратегии периодического шока перекисью водорода. J. Microbiol. Biotechnol. 26, 498–502. DOI: 10.4014 / jmb.1509.09013

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ватанабэ С., Уэсуги С. и Кикучи Ю. (2002). Изофлавоны для профилактики рака, сердечно-сосудистых заболеваний, гинекологических проблем и возможного повышения иммунитета. Biomed.Фармакотер. 56, 302–312. DOI: 10.1016 / S0753-3322 (02) 00182-8

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Рольстад Р. Э. (2004). Антоциановые пигменты — Биоактивность и красящие свойства. J. Food Sci. 69, C419 – C425. DOI: 10.1111 / j.1365-2621.2004.tb10709.x

    CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ву, Дж., Ду, Г., Чен, Дж., И Чжоу, Дж. (2015). Повышение выработки флавоноидов путем систематической настройки центральных метаболических путей на основе системы интерференции CRISPR в Escherichia coli . Sci. Отчет 5: 13477. DOI: 10.1038 / srep13477

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ву, Дж., Ю, О., Ду, Г., Чжоу, Дж., И Чен, Дж. (2014). Тонкая настройка пути жирных кислот с помощью синтетической антисмысловой РНК для увеличения продукции (2S) -нарингенина из L-тирозина в Escherichia coli . Заявл. Environ. Microbiol. 80, 7283–7292. DOI: 10.1128 / AEM.02411-14

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ву, Дж., Чжан, X., Донг, М., и Чжоу, Дж. (2016a). Поэтапная модульная разработка пути Escherichia coli для эффективного одностадийного производства (2S) -пиноцембрина. J. Biotechnol. 231, 183–192. DOI: 10.1016 / j.jbiotec.2016.06.007

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ву Дж., Чжан Х., Чжоу Дж. И Дун М. (2016b). Эффективный биосинтез (2S) -пиноцембрина из d -глюкозы путем интеграции инженерных центральных метаболических путей со стратегией контроля pH-сдвига. Биоресурсы. Technol. 218, 999–1007. DOI: 10.1016 / j.biortech.2016.07.066

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ян Ю., Хемлер Дж., Хуанг Л., Мартенс С. и Коффас М. А. Г. (2005). Метаболическая инженерия биосинтеза антоцианов у Escherichia coli . Заявл. Environ. Microbiol. 71, 3617–3623. DOI: 10.1128 / AEM.71.7.3617-3623.2005

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Ян Дж., Лян, Дж., Шао, Л., Лю, Л., Гао, К., Чжан, Дж., И др. (2020). Экологичное производство силибина и изосилибина путем объединения методов метаболической инженерии и ферментативного катализа. Metab. Англ. 59, 44–52. DOI: 10.1016 / j.ymben.2020.01.007

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Чжа Дж., Занг Й., Маттоцци М., Плассмайер Дж. И Коффас М. А. Г. (2018). Метаболическая инженерия Corynebacterium glutamicum для производства антоцианов. Microb. Cell Fact. 17: 143. DOI: 10.1186 / s12934-018-0990-z

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Zhang, J., Zhao, L., Cheng, Q., Ji, B., Yang, M., Sanidad, K. Z., et al. (2018). Структурно различные подклассы флавоноидов ослабляют метаболический синдром, индуцированный диетой с высоким содержанием жиров и фруктозы у крыс. J. Agric. Food Chem. 66, 12412–12420. DOI: 10.1021 / acs.jafc.8b03574

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Чжао, С., Джонс, Дж. А., Лашанс, Д. М., Бхан, Н., Халиди, О., Венкатараман, С. и др. (2015). Улучшение производства катехинов в Escherichia coli посредством комбинаторной метаболической инженерии. Metab. Англ. 28, 43–53. DOI: 10.1016 / j.ymben.2014.12.002

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Чжун, Х., Дэн, Ю., Ван, X., и Ян, Б. (2005). Состав мультивезикулярных липосом для длительной доставки бревискапина. Int. Дж.Pharm. 301, 15–24. DOI: 10.1016 / j.ijpharm.2005.04.001

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Чжоу, С., Лю, Ю., Ли, Х., Коффас, М. А. Г., и Чжоу, Дж. (2019). Тонкая настройка пути синтеза (2S) -нарингенина с использованием итеративной стратегии балансировки с высокой пропускной способностью. Biotechnol. Bioeng. 116, 1392–1404. DOI: 10.1002 / bit.26941

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Чжу, С., Ву, Дж., Ду, Г., Чжоу, Дж., и Чен, Дж. (2014). Эффективный синтез эриодиктиола из L-тирозина в Escherichia coli . Заявл. Environ. Microbiol. 80, 3072–3080. DOI: 10.1128 / AEM.03986-13

    PubMed Аннотация | CrossRef Полный текст | Google Scholar

    Разработка технологий производства продуктов на биологической основе из углеводов биопереработки — повторный просмотр «10 лучших» Министерства энергетики США

    Разработка технологий производства продуктов на биологической основе из углеводов биопереработки — повторный просмотр «10 лучших» министерств энергетики США

    Завод по биопереработке, который дополняет производство недорогого биотоплива высокоценными химическими веществами на биопереработке, может способствовать сокращению потребления невозобновляемого топлива, одновременно обеспечивая необходимый финансовый стимул для стимулирования расширения отрасли биопереработки.Однако выбор подходящих продуктов для добавления в портфель биоперерабатывающих заводов затруднен из-за отсутствия широкой технологии конверсии в сочетании с множеством потенциальных целей. В 2004 году Министерство энергетики США решило эти проблемы, описав процесс выбора химических продуктов, который сочетал идентификацию небольшой группы соединений, полученных из углеводов биопереработки, с исследованиями и технологическими потребностями, необходимыми для их производства. Цель отчета состояла в том, чтобы стимулировать исследовательские усилия по синтезу нескольких членов этой группы или, в идеале, структур, еще не включенных в список.За шесть лет, прошедших со времени выхода первоначального отчета Министерства энергетики, был достигнут значительный прогресс в использовании углеводов в качестве исходного сырья для химического производства. В этом обзоре представлена ​​обновленная оценка потенциальных целевых структур с использованием аналогичной методологии выбора и обзор технологических разработок, которые привели к включению данного соединения. Список представляет собой динамическое руководство по развитию технологий, которые могут обеспечить коммерческий успех за счет надлежащей интеграции биотоплива с продуктами на биопродукции.

    У вас есть доступ к этой статье

    Подождите, пока мы загрузим ваш контент… Что-то пошло не так. Попробуйте снова?

    Обзор производственного процесса — Управление цепочкой поставок | Динамика 365

    • Читать 9 минут

    В этой статье

    В этом разделе дается обзор производственных процессов.В нем описаны различные этапы производственных заказов, пакетных заказов и канбанов, от создания заказа до закрытия финансового периода.

    Производство продуктов, процесс, который также известен как жизненный цикл производства, следует за определенными шагами, которые требуются для завершения производства элемента. Жизненный цикл начинается с создания производственного заказа, заказа партии или канбана. Он заканчивается готовым произведенным изделием, готовым либо к заказчику, либо к другому этапу производства.Каждый этап жизненного цикла требует разного рода информации для завершения процесса. По мере завершения каждого шага производственный заказ, заказ партии или канбан показывает изменение производственного статуса. Для разных типов продуктов требуются разные производственные процессы.

    Модуль Контроль производства связан с другими модулями, такими как Управление информацией о продукте , Управление запасами , Главная книга , Управление складом , Учет проектов и Управление организацией .Эта интеграция поддерживает информационный поток, необходимый для завершения производства готового изделия.

    На производственный процесс обычно влияют методы учета затрат и оценки запасов, которые выбираются для конкретного производственного процесса. Supply Chain Management поддерживает методы фактических затрат (первый пришел — первый ушел [FIFO]; последний пришел — первый ушел [LIFO]; скользящее среднее и периодическое средневзвешенное значение) и методы стандартных затрат. Бережливое производство реализуется на основе принципа обратной калькуляции затрат.

    Выбор методов измерения затрат также определяет требования к отчетности о потреблении материалов и ресурсов в процессе производства. Как правило, методы фактических затрат требуют точной отчетности на уровне работ, тогда как методы периодической калькуляции позволяют создавать менее подробные отчеты о потреблении материалов и ресурсов.

    Производство в смешанном режиме

    Различные продукты и топологии производства требуют применения разных типов заказов.Supply Chain Management может применять различные типы заказов в смешанном режиме. Другими словами, все типы заказов могут выполняться в течение непрерывного процесса производства одного готового продукта.

    • Производственный заказ — это классический вид заказа для производства определенного продукта или варианта продукта в заданном количестве в определенную дату. Производственные заказы основаны на спецификациях материалов (BOM) и маршрутах.
    • Пакетный заказ — Этот тип заказа используется для обрабатывающих производств и дискретных процессов, где производственное преобразование основано на формуле или где побочные и побочные продукты могут быть конечными продуктами, либо в дополнение к основной, либо вместо нее. продукт.В пакетных заказах используются спецификации и маршруты типа Formula .
    • Канбан — Канбан используется для обозначения повторяющихся процессов бережливого производства, основанных на производственных потоках, правилах канбана и спецификациях.
    • Проект — производственный проект объединяет продукты и услуги с заданным графиком и бюджетом. Производственная часть проекта может быть доставлена ​​любым другим типом заказа.

    Принципы производства

    Чтобы выбрать принцип производства, который лучше всего применим к конкретному продукту и соответствующему рынку, вы должны учитывать требования производства и логистики, а также ожидания клиентов в отношении сроков доставки.

    • Сделать на склад — это классический принцип производства, при котором продукты производятся на склад на основе прогноза или минимального пополнения запасов (последнее обычно рассчитывается на основе прогноза или исторического потребления).
    • Изготовление на заказ — Стандартные изделия изготавливаются на заказ или готовятся к заказу. Хотя предварительное производство может быть выполнено с использованием принципа «Сделать на склад», дорогостоящие этапы цепочки создания стоимости или этапы, создающие варианты, инициируются заказом на продажу или заказом на перемещение.
    • Настроить на заказ — Что касается принципа изготовления на заказ, заключительные операции цепочки создания стоимости выполняются на заказ. Фактический производимый вариант продукта не определен заранее, но создается во время ввода заказа на основе модели конфигурации продукта продажи. Принцип «Настроить на заказ» требует определенного уровня унификации процессов для данной линейки продуктов.
    • Инженер по заказу — Процессы инженера по заказу обычно рассматриваются в проекте и обычно начинаются с этапа проектирования.На этапе проектирования разрабатываются и описываются фактические продукты, необходимые для выполнения заказа. Затем для производства продуктов могут быть созданы производственные заказы, серийные заказы или канбаны.

    Обзор жизненного цикла продукции

    Следующие этапы жизненного цикла производства могут происходить для всех типов заказов в смешанном режиме производства. Однако не все они представлены в виде явного статуса заказа.

    1. Создано — Вы можете создать производственный заказ, пакетный заказ или канбан вручную, или вы можете настроить систему для их генерации на основе различных сигналов спроса.Сводное планирование создает производственные заказы, серийные заказы или канбаны путем подтверждения плановых заказов. Другими сигналами спроса являются заказы на продажу или сигналы привязки предложения от других производственных заказов или канбанов. Для канбанов с фиксированным количеством сигналы спроса генерируются, когда канбаны регистрируются как пустые.

    2. Оценка — Вы можете рассчитать оценки потребления материалов и ресурсов. При оценке создаются складские проводки для сырья со статусом По заказу .Поступления для основных продуктов, сопутствующих продуктов и побочных продуктов создаются при оценке производственных заказов или заказов партии. Если спецификация содержит строки типа Обособленная поставка , создаются заказы на поставку материалов или субподрядных операционных услуг, которые привязаны к производственному заказу или заказу партии. Позиции или заказы резервируются в соответствии со стратегией резервирования производственного заказа, а цена готовой продукции рассчитывается на основе настроек параметров.

    3. Запланировано — Вы можете запланировать производство на основе операций, отдельных заданий или того и другого.

      • Планирование операций — этот метод планирования обеспечивает приблизительный долгосрочный план. Используя этот метод, вы можете назначать даты начала и окончания производственным заказам. Если производственные заказы прикреплены к операциям маршрута, вы можете назначить их группам МВЗ.
      • Планирование заданий — Этот метод планирования предоставляет подробный план. Каждая операция разбита на отдельные задания с определенными датами, временем и назначенными операционными ресурсами.Если используется ограниченная емкость, задания назначаются операционным ресурсам в зависимости от доступности. Вы можете просматривать и изменять расписание на диаграмме Ганта.
      • График Канбана — Задания Канбана планируются на доске расписания Канбана или автоматически планируются на основе конфигурации автоматического планирования правил Канбана.
    4. Выпущено — Вы можете деблокировать производственный заказ или заказ партии, когда график завершен и материал доступен для комплектования или подготовки.Проверка доступности материала помогает начальнику цеха оценить доступность материала для производственных или пакетных заказов. Вы также можете распечатать документы производственного заказа, такие как списки выбора, карточку задания, маршрутную карту и маршрутное задание. Когда производственный заказ деблокирован, статус заказа изменяется, показывая, что производство может быть начато. Когда используется управление складом, деблокирование производственного заказа или заказа партии передает строки производственной спецификации в управление складом.Затем в соответствии с настройками склада генерируются волны складирования и складские работы.

    5. Подготовлено / Отобрано — Когда все материалы и ресурсы размещены на производственном участке, строки производственной спецификации или строки канбана обновляются до статуса Отобрано . Привязанные заказы на поставку и соответствующие складские работы обычно завершаются на этом этапе. Канбан-карты или карты заданий, необходимые для отчета о ходе производства, должны быть назначены и распечатаны.

    6. Запущено — Когда запускается производственный заказ, заказ партии или канбан, вы можете сообщить о потреблении материалов и ресурсов по заказу. Систему можно настроить на автоматическую проводку расхода материалов и ресурсов, которые назначаются заказу при его запуске. Это распределение известно как предварительная очистка, прямая очистка или автопотребление. Вы можете вручную распределить материалы по производственным заказам или пакетным заказам, создав дополнительные журналы списков комплектации.Вы также можете вручную распределить трудозатраты и другие затраты на маршрут для заказа. Если вы используете планирование операций, вы можете распределить эти затраты, создав журнал маршрутных карт. Если вы используете планирование заданий, вы можете распределить затраты, создав журнал карточек вакансий. Производственные заказы или заказы партии могут быть запущены партиями запрошенного окончательного количества. В рамках производственного заказа, пакетного заказа или канбана созданные задания можно запускать и сообщать отдельно через журналы, производственный терминал (MES Terminal) или доски канбана.

    7. Отчет о ходе выполнения / Завершение заданий — используйте терминал MES, производственные журналы, доски канбан или возможности мобильного сканирования, чтобы сообщать о ходе производства по заданиям или ресурсам. Будет проводиться расход материалов и ресурсов, а статус связанных канбанов, производственных и пакетных заказов может быть обновлен до Получено или Отмечено как завершенное . Работа по размещению на складе может быть создана в зависимости от конфигурации склада.

    8. Отмечено как готовое (поступление продукта) — Когда производственный заказ или заказ партии сообщается как завершенный, количество готовой продукции, которая была завершена, обновляется в запасах. Это количество включает количество соответствующих побочных продуктов и побочных продуктов. Если вы используете учет незавершенного производства (НЗП), создается журнал бухгалтерской книги, чтобы уменьшить счета НЗП и увеличить запасы готовой продукции. Когда рассчитывается стоимость производственного заказа, проводится фактическая стоимость производства.Если затраты на материалы и труд, связанные с производством, еще не распределены в журнале или предварительной промывкой, они могут быть автоматически распределены посредством обратной промывки. Распределение посредством обратной промывки включает пост-вычет процессов складских операций. Если производственный заказ выполнен, установите флажок Завершить задание , чтобы изменить оставшийся статус на Завершено . В противном случае оставьте поле пустым, чтобы включить отчет о дополнительных объемах производства.

    9. Оценка качества — Поступление продукта может инициировать создание заказов на качество в зависимости от конфигурации процессов тестирования и правил качества, установленных для конкретных продуктов. Поскольку заказ качества может обновлять статус запасов или атрибуты партии тестируемых продуктов, оценка качества является обязательным процессом во многих отраслях.

    10. Размещение на складе и Отгрузка по заказу — После получения продукта и оценки качества дополнительная работа по размещению направляет полученные продукты в следующую точку потребления, на склад готовой продукции или в зону отгрузки, если таковые имеются. требования к отгрузке на заказ.

    11. Окончание — Перед окончанием производства фактические затраты рассчитываются для произведенного количества. Все предполагаемые затраты на материалы, рабочую силу и накладные расходы сторнируются и заменяются фактическими затратами. Если вы установите флажок Завершить задание при выполнении расчета стоимости, статус производственного заказа изменится на Завершено . Этот статус предотвращает разноску любых дополнительных затрат по выполненному производственному заказу.

    12. Закрытие периода — Некоторые принципы учета затрат, такие как периодическая средняя, ​​обратная калькуляция, FIFO или LIFO, требуют периодических действий для закрытия запасов или финансового периода.Обычно система пытается сообщить обо всем потреблении материалов и ресурсов, а также о корректировках запасов и брака до закрытия периодов. Эта отчетность обычно выполняется с использованием журналов движения запасов или журналов корректировки. Цель состоит в том, чтобы оценить экономические показатели операционных подразделений за период. В некоторых случаях, когда используются долгосрочные производственные заказы, охватывающие периоды финансовой отчетности, производственные журналы используются для отчета о ходе производства и потреблении ресурсов к концу периода.

    Дополнительные ресурсы

    Отзывы о производстве

    Обзор моделей конфигурации продукта

    Обзор бережливого производства

    ProductionFor | Видеопроизводство и анимация

    «Мы не перестаем играть, потому что стареем, мы стареем, потому что перестаем играть» — Джордж Бернард Шоу

    В детстве Клинту сказали, что у него был «дар болтливости». ‘, внутренняя способность взаимодействовать и находить точки соприкосновения с людьми самых разных типов и возрастов.Сегодня он по-прежнему заинтересован, любознателен и жаждет узнать, что другие люди и что ими движет. Вдумчивое общение принесло ему лучшие отношения, это величайшее защитное оружие, которое он носит, и движущая сила его успеха.

    Он на собственном примере убедился, что в характере есть сила, терпимость, принятие, вежливость и внимательность. Гордится терпением, вниманием к деталям и решимостью никогда не сдаваться, применяет эту стойкость ко всему, что он делает, и свой дар болтливости ко всем, кого встречает.

    Коммуникация всегда играла важную роль в выборе его карьеры, открывая возможности и помогая ему преодолевать жизненные сюрпризы. В колледже он специализировался на массовых коммуникациях. То, к чему он или его профессора в то время не могли подготовиться, так это к приближению технологического цунами, которое ликвидирует пробелы, соединит культуры и изменит способ нашего общения.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован. Обязательные поля помечены *